RU2431890C1 - Method of modelling infected skin wound - Google Patents
Method of modelling infected skin wound Download PDFInfo
- Publication number
- RU2431890C1 RU2431890C1 RU2010114127/14A RU2010114127A RU2431890C1 RU 2431890 C1 RU2431890 C1 RU 2431890C1 RU 2010114127/14 A RU2010114127/14 A RU 2010114127/14A RU 2010114127 A RU2010114127 A RU 2010114127A RU 2431890 C1 RU2431890 C1 RU 2431890C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- wound
- skin
- tissues
- scab
- infected
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 32
- 206010072170 Skin wound Diseases 0.000 title claims abstract description 11
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 claims abstract description 83
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 claims abstract description 83
- 206010039509 Scab Diseases 0.000 claims abstract description 15
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims abstract description 12
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 12
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 claims abstract description 11
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 8
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 claims abstract description 7
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 3
- 230000001338 necrotic effect Effects 0.000 claims description 12
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 20
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 18
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 12
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 12
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 7
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 7
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 5
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 4
- 238000011161 development Methods 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 4
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 3
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 3
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 3
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 3
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 3
- 206010063560 Excessive granulation tissue Diseases 0.000 description 2
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 description 2
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 description 2
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin monomer Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 2
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 2
- 229950003499 fibrin Drugs 0.000 description 2
- 210000001126 granulation tissue Anatomy 0.000 description 2
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 2
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 2
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 230000029663 wound healing Effects 0.000 description 2
- 241000222120 Candida <Saccharomycetales> Species 0.000 description 1
- 208000009043 Chemical Burns Diseases 0.000 description 1
- 208000018380 Chemical injury Diseases 0.000 description 1
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 description 1
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 description 1
- 241000194032 Enterococcus faecalis Species 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 241000588749 Klebsiella oxytoca Species 0.000 description 1
- OKIBNKKYNPBDRS-UHFFFAOYSA-N Mefluidide Chemical compound CC(=O)NC1=CC(NS(=O)(=O)C(F)(F)F)=C(C)C=C1C OKIBNKKYNPBDRS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 241000588769 Proteus <enterobacteria> Species 0.000 description 1
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 1
- 241000191963 Staphylococcus epidermidis Species 0.000 description 1
- 206010068796 Wound contamination Diseases 0.000 description 1
- 206010048038 Wound infection Diseases 0.000 description 1
- 229940124350 antibacterial drug Drugs 0.000 description 1
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 1
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 1
- 244000309464 bull Species 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 1
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 description 1
- 238000010835 comparative analysis Methods 0.000 description 1
- 230000008602 contraction Effects 0.000 description 1
- 230000001276 controlling effect Effects 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 229940032049 enterococcus faecalis Drugs 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 210000000630 fibrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000005469 granulation Methods 0.000 description 1
- 230000003179 granulation Effects 0.000 description 1
- 244000144993 groups of animals Species 0.000 description 1
- 238000009957 hemming Methods 0.000 description 1
- 230000002055 immunohistochemical effect Effects 0.000 description 1
- 238000005470 impregnation Methods 0.000 description 1
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 description 1
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 238000005304 joining Methods 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 238000009629 microbiological culture Methods 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000004660 morphological change Effects 0.000 description 1
- 238000011206 morphological examination Methods 0.000 description 1
- 230000017074 necrotic cell death Effects 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007310 pathophysiology Effects 0.000 description 1
- 230000002028 premature Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000007665 sagging Methods 0.000 description 1
- 210000002027 skeletal muscle Anatomy 0.000 description 1
- 238000002791 soaking Methods 0.000 description 1
- 210000002784 stomach Anatomy 0.000 description 1
- 210000004003 subcutaneous fat Anatomy 0.000 description 1
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Medicinal Preparation (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной хирургии и патофизиологии.The invention relates to medicine, namely to experimental surgery and pathophysiology.
Известны различные способы моделирования гнойных ран. Так известен способ моделирования инфицированной раны мягких тканей. Для этого половозрелым кроликам (массой 3-4 кг) на спину накладывают пластину, внутри которой выполнено отверстие диаметром 2,0 см. Под общим обезболиванием в отверстие вытягивают шкуру в виде конуса высотой 0,9-1,1 см и его иссекают. Очаг некроза формируют наложением на рану на 3-5 секунд марлевого тампона, смоченного в 70% растворе уксусной кислоты. Через 3-5 суток некротический струп удаляют. Затем рану орошают культурой St.aureus в концентрации 5×105 КОЕ (Способ моделирования инфицированной раны мягких тканей /Суховей Ю.Г., Цирятьева С.Б., Минин А.С., Самусев Р.С., Сыч А.С., Костоломова Е.Г. // патент РФ №2321898 от 10.04.2008 г., опубл. Бюл. №1).There are various methods for modeling purulent wounds. So known is a method of modeling an infected soft tissue wound. For this purpose, a rabbit (3-4 kg in weight) is laid on the back with a plate inside which a hole with a diameter of 2.0 cm is made. Under general anesthesia, a skin in the form of a cone 0.9-1.1 cm high is pulled out and excised. The focus of necrosis is formed by applying a gauze swab dipped in 70% acetic acid solution to the wound for 3-5 seconds. After 3-5 days, the necrotic scab is removed. Then, the wound is irrigated with St.aureus culture at a concentration of 5 × 10 5 CFU (Method for modeling an infected soft tissue wound / Sukhovey Yu.G., Tsiryatyeva S.B., Minin A.S., Samusev R.S., Sych A.S. ., Kostolomova EG // RF patent №2321898 from 04/10/2008, publ. Bull. No. 1).
К недостаткам данного способа следует отнести получение модели раны, имеющей смешанный характер повреждения, т.е. химический ожог с бактериальной обсемененностью. Кроме этого к недостаткам известного способа следует также отнести и раннее закрытие раневой поверхности, за счет отсутствия фиксации краев раны. Указанные недостатки не позволяют стандартизировать течение и процесс заживления раны.The disadvantages of this method include obtaining a model of a wound that has a mixed nature of damage, i.e. chemical burn with bacterial contamination. In addition to the disadvantages of this method should also include early closure of the wound surface, due to the lack of fixation of the edges of the wound. These disadvantages do not allow to standardize the course and healing process of the wound.
Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому является способ моделирования инфицированной кожно-мышечной раны, включающий иссечение кожного покрова, удаление струпа через 3-е суток после нанесения кожного дефекта и введение бактериальной взвеси в рану.The closest in technical essence to the proposed one is a method for modeling an infected musculoskeletal wound, including excision of the skin,
Известный способ осуществляют следующим образом. На спине лабораторного животного (крысы) иссекают участок кожи размером 2×2 см. Для образования грануляционной ткани кожный дефект оставляют без повязки - «под корочкой». Через 3-е суток корочку удаляют, дно раны надсекают лезвием, после чего в рану вносят 1 млрд микробных тел суточной культуры St.aureus. На рану с инфектом накладывают окклюзирующую повязку (Иммунногистохимическое изучение гнойных ран у крыс после аппликации коллагеназы краба / И.Ю.Сахаров, Б.М.Шехонин, С.П.Глянцев, Ф.Е.Литвин // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1993, - №4, - с.267).The known method is as follows. A 2 × 2 cm skin area is excised on the back of a laboratory animal (rat). To form granulation tissue, the skin defect is left without a bandage - “under the crust”. After 3 days, the crust is removed, the bottom of the wound is incised with a blade, after which 1 billion microbial bodies of the daily culture of St.aureus are introduced into the wound. An occlusive dressing is applied to the wound with an infect (Immunohistochemical study of purulent wounds in rats after application of crab collagenase / I.Yu. Sakharov, B.M.Shekhonin, S.P. Gligos, F.E. Litvin // Bulletin of experimental biology and medicine. - 1993, - No. 4, - p.267).
К недостаткам известного способа следует отнести:The disadvantages of this method include:
- невозможность получения «стандартной» раны, необходимой для изучения течения и процессов заживления раны под воздействием антибактериальных препаратов;- the impossibility of obtaining a "standard" wound necessary to study the course and healing processes of the wound under the influence of antibacterial drugs;
- невозможность динамического контроля за количественным содержанием штаммов инфекта, внесенного в рану;- the impossibility of dynamic control over the quantitative content of strains of infect introduced into the wound;
- присоединение инфекции, так как перед внесением инфекта рана инфицирована, как собственной микрофлорой, так и микрофлорой окружающей среды;- joining the infection, since before the introduction of the infect, the wound is infected with both its own microflora and the microflora of the environment;
- неконтролируемая глубина поражения, за счет выполнения насечек дна раны лезвием;- uncontrolled depth of the lesion, due to the implementation of notches of the bottom of the wound with a blade;
- неконтролируемая площадь раны, за счет отсутствия фиксации краев раны.- uncontrolled area of the wound due to the lack of fixation of the edges of the wound.
Следовательно, известный способ не позволяет получить модель инфицированной кожной раны с контролируемым микробным пейзажем и контролируемой площадью и глубиной раны.Therefore, the known method does not allow to obtain a model of an infected skin wound with a controlled microbial landscape and a controlled area and depth of the wound.
Задачей заявляемого изобретения является разработка способа моделирования инфицированной кожной раны с заданным микробным пейзажем, а также с контролируемой глубиной и площадью повреждения.The task of the invention is to develop a method for modeling an infected skin wound with a given microbial landscape, as well as with a controlled depth and area of damage.
Техническим результатом предлагаемого способа является обеспечение возможности получения инфицированной кожной раны с заданной бактериальной обсемененностью раны, а также обеспечение контролируемой глубины и площади поражения раны.The technical result of the proposed method is the possibility of obtaining an infected skin wound with a given bacterial contamination of the wound, as well as providing a controlled depth and area of the wound.
Технический результат достигается тем, что способ моделирования инфицированной кожной раны включает иссечение кожного покрова, удаление струпа и введение инфекта в рану.The technical result is achieved by the fact that the method of modeling an infected skin wound includes excision of the skin, removal of the scab and the introduction of infect into the wound.
Отличительными приемами предлагаемого способа являются:Distinctive techniques of the proposed method are:
- подшивание краев раны к подлежащим тканям после иссечения кожного покрова,- hemming the edges of the wound to the underlying tissues after excision of the skin,
- каждый угол раны дополнительно прошивают отдельным диагональным швом,- each corner of the wound is additionally stitched with a separate diagonal suture,
- иссечение струпа и некротизированных тканей в пределах здоровых тканей,- excision of the scab and necrotic tissue within healthy tissue,
- обработка раны антисептиком с последующим промыванием ее физиологическим раствором,- treatment of a wound with an antiseptic followed by washing it with physiological saline,
- закрытие обработанной поверхности раны полупроницаемой мембраной, концы которой вставляют под угловые диагональные швы,- closing the treated surface of the wound with a semipermeable membrane, the ends of which are inserted under the corner diagonal seams,
- введение под полупроницаемую мембрану бактериальной взвеси, содержащей 0,5 мл E.coli 109 и 0,5 мл Ps.aeraginosa 109.- the introduction under a semi-permeable membrane of bacterial suspension containing 0.5 ml of E. coli 10 9 and 0.5 ml of Ps.aeraginosa 10 9 .
Проведенный сопоставительный анализ с прототипом показал, что предлагаемый способ отличается от известного вышеперечисленными приемами и, следовательно, соответствует критерию изобретения «новизна».A comparative analysis with the prototype showed that the proposed method differs from the known above methods and, therefore, meets the criteria of the invention of "novelty."
Сравнение заявляемого технического решения не только с прототипом, но и другими техническими решениями в экспериментальной медицине не позволило выявить в них признаки, отличающие заявленное решение от прототипа.Comparison of the claimed technical solution not only with the prototype, but also with other technical solutions in experimental medicine did not allow us to identify signs that distinguish the claimed solution from the prototype.
Использование вышеперечисленных приемов заявляемого способа позволяет получить модель инфицированной кожной раны с заданным микробным пейзажем, а также с контролируемой глубиной и площадью повреждения.Using the above methods of the proposed method allows to obtain a model of an infected skin wound with a given microbial landscape, as well as with a controlled depth and area of damage.
Так, фиксация краев раны путем их подшивания к подлежащим тканям позволяет предупредить преждевременное стягивание краев раны, что дает возможность «стандартизировать» площадь раны, независимо от индивидуальных особенностей процесса заживления у экспериментального животного, а также оценить воздействие изучаемого препарата.Thus, fixing the edges of the wound by suturing them to the underlying tissues prevents premature contraction of the edges of the wound, which makes it possible to "standardize" the area of the wound, regardless of the individual characteristics of the healing process in the experimental animal, and to evaluate the effect of the studied drug.
Иссечение струпа и некротизированных тканей в пределах здоровых тканей обеспечивает контролируемую глубину и площадь повреждения.Excision of the scab and necrotic tissue within healthy tissue provides a controlled depth and area of damage.
Обработка раны антисептиком, после удаления некротизированных тканей, позволяет исключить развитие в ране как собственной микрофлоры животного, так и микрофлоры окружающей среды. Этим приемом создаются оптимальные условия для развития микрофлоры внесенного инфекта - госпитальных штаммов E.coli и Ps.aeraginosa.Treatment of a wound with an antiseptic, after removal of necrotic tissue, eliminates the development of both the animal’s own microflora and the environment’s microflora in the wound. This technique creates optimal conditions for the development of microflora of the introduced infection - hospital strains of E. coli and Ps.aeraginosa.
Последующее промывание физиологическим раствором позволяет исключить негативное влияние оставшегося в ране антисептика на вносимую микрофлору.Subsequent washing with physiological saline eliminates the negative effect of the antiseptic remaining in the wound on the introduced microflora.
Введение и размещение в ране полупроницаемой мембраны (для мембранно-сорбирующих дренажных комплексов) предупреждает вытекание бактериальной взвеси из раны, исключает загрязнение раны в раннем послеоперационном периоде и создает оптимальные условия для развития внесенной микрофлоры.The introduction and placement of a semipermeable membrane in the wound (for membrane-absorbing drainage complexes) prevents the bacterial suspension from flowing out of the wound, eliminates wound contamination in the early postoperative period and creates optimal conditions for the development of introduced microflora.
Введение бактериальной суспензии, содержащей микробные культуры E.coli 109 и Ps.aeraginosa 109 по 0,5 мл каждой, под полупроницаемую мембрану создает оптимальные условия для развития внесенного инфекта в раннем послеоперационном периоде. Кроме этого полупроницаемая мембрана препятствует попаданию в рану микрофлоры окружающей среды. Использование культур E.coli и Ps.aeraginosa обусловлено их распространенностью в гнойных ранах.The introduction of a bacterial suspension containing microbial cultures of E. coli 10 9 and Ps.aeraginosa 10 9 of 0.5 ml each, under a semi-permeable membrane creates optimal conditions for the development of introduced infection in the early postoperative period. In addition, a semi-permeable membrane prevents environmental microflora from entering the wound. The use of E.coli and Ps.aeraginosa cultures is due to their prevalence in purulent wounds.
При анализе известных способов моделирования гнойных ран было выявлено в них отсутствие сведений о влиянии отличительных признаков заявляемого способа на достижение технического результата. Изложенное позволяет установить соответствие критерию «изобретательский уровень».When analyzing known methods for modeling purulent wounds, they revealed a lack of information about the influence of the distinguishing features of the proposed method on the achievement of a technical result. The above allows you to establish compliance with the criterion of "inventive step".
Способ, составляющий заявляемое изобретение, предназначен для использования в экспериментальной медицине. Возможность его осуществления подтверждена описанными в заявке приемами и средствами. Из вышеизложенного следует, что заявляемое изобретение соответствует условию патентоспособности «промышленная применимость».The method comprising the claimed invention is intended for use in experimental medicine. The possibility of its implementation is confirmed by the methods and means described in the application. From the foregoing, it follows that the claimed invention meets the condition of patentability "industrial applicability".
Заявляемый способ осуществляют следующим образом. Экспериментальному животному - крысе под общим обезболиванием проводят иссечение кожного лоскута 2×2 см (фиг.1). По квадрату дефекта края раны подшивают непрерывным швом к подлежащим тканям (атравматикой 4/0) (фиг.2). При этом каждый угол раны дополнительно прошивают отдельным диагональным швом.The inventive method is as follows. Experimental animal rat under general anesthesia spend excision of the skin flap 2 × 2 cm (figure 1). On the square of the defect, the edges of the wound are sutured with a continuous suture to the underlying tissues (atraumatic 4/0) (figure 2). Moreover, each corner of the wound is additionally stitched with a separate diagonal suture.
Через 3-е суток под общим обезболиванием выполняют иссечение струпа и некротизированных тканей в пределах здоровых тканей (фиг.3). Санацию раны проводят раствором антисептика (0,02% «Анавидин»), промывают физиологическим раствором, после чего на обработанную поверхность раны с размещением под угловые диагональные швы устанавливают полупроницаемую мембрану для мембранно-сорбирующих дренажных комплексов. Под полупроницаемую мембрану вводят бактериальную суспензию, содержащую 0,5 мл E.coli 109 и 0,5 мл Ps.aeraginosa After 3 days under general anesthesia, the scab and necrotic tissues are excised within healthy tissues (Fig. 3). Wound sanitation is carried out with an antiseptic solution (0.02% Anavidin), washed with physiological saline, after which a semipermeable membrane for membrane-sorbing drainage complexes is installed on the treated surface of the wound with placement under angular diagonal seams. A bacterial suspension containing 0.5 ml of E. coli 10 9 and 0.5 ml of Ps.aeraginosa is introduced under a semipermeable membrane
109 (фиг.4).10 9 (Fig. 4).
Предлагаемый способ поясняется примером конкретного выполнения.The proposed method is illustrated by an example of a specific implementation.
Исследование проводилось на белых крысах-самцах породы «Вистар» 6-месячного возраста с массой тела 200-250 г. Животных содержали в условиях вивария при свободном доступе к воде и пище, что соответствует нормативам ГОСТа «Содержание экспериментальных животных в питомниках НИИ» (виварий I категории, вет. удостоверение 238 №0015220 от 25 марта 2009 г., служба ветеринарии Иркутской области). Опыты на животных выполняли в соответствии с правилами гуманного обращения с животными, регламентированными «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных», утвержденными Приказом МЗ СССР №742 от 13.11.84 г. «Об утверждении правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» и №48 от 23.01.85 г. «О контроле за проведением работ с использованием экспериментальных животных». Все оперативные вмешательства проводили в стерильных условиях под общим обезболиванием.The study was conducted on white Vistar male rats of 6 months of age with a body weight of 200-250 g. The animals were kept in vivarium with free access to water and food, which meets the standards of GOST "The content of experimental animals in the nurseries of the research institute" (vivarium I category, vet certificate 238 No. 0015220 dated March 25, 2009, the Veterinary Service of the Irkutsk Region). Animal experiments were carried out in accordance with the rules for the humane treatment of animals, regulated by the "Rules for the use of experimental animals", approved by Order of the Ministry of Health of the USSR No. 742 of 11/13/84, "On the approval of the rules for working with experimental animals" and No. 48 from 01/23/85, "On the control of work using experimental animals." All surgical interventions were performed under sterile conditions under general anesthesia.
В асептических условиях и под общей анестезией животное фиксировали на столике А.И.Сеченова в положении на животе. После подготовки операционного поля в области спины выполняли иссечение кожи и подкожно-жировой клетчатки площадью 4 см2. Края раны подшивали к подлежащим тканям атравматичной иглой с рассасывающейся лигатурой 4/0, с шагом 5 мм. Дополнительно каждый угол раны был прошит отдельным диагональным швом.Under aseptic conditions and under general anesthesia, the animal was fixed on the table of A.I.Sechenov in the position on the stomach. After preparation of the surgical field in the back, excision of the skin and subcutaneous fat was performed with an area of 4 cm 2 . The edges of the wound were sutured to the underlying tissues with an atraumatic needle with
У каждого животного основной группы, состоящей из 40 животных, через 3-е суток иссекали струп и некротизированные ткани. Иссечение некротизированных тканей проводили в пределах здоровых тканей, на глубину 0,3 см. Каждому животному этой группы рану обрабатывали антисептиком «Анавидин», после чего промывали физиологическим раствором. Затем в рану устанавливали полупроницаемую мембрану (для дренажных композиций). Фиксация полупроницаемой мембраны на ране достигалась размещением ее углов под угловыми диагональными швами. Под полупроницаемую мембрану, т.е. в рану, вносили 1 мл суточной бактериальной взвеси, содержащей 0,5 мл E.coli 109 КОЕ/мли 0,5 мл P.aeruginosa 109 КОЕ/мл.In each animal of the main group consisting of 40 animals, after 3 days, the scab and necrotic tissues were excised. Necrotic tissues were excised within healthy tissues to a depth of 0.3 cm. Each animal of this group was treated with the Anavidin antiseptic and then washed with saline. Then, a semipermeable membrane was installed in the wound (for drainage compositions). The fixation of the semipermeable membrane on the wound was achieved by placing its corners under the corner diagonal seams. Under a semipermeable membrane, i.e. 1 ml of daily bacterial suspension containing 0.5 ml of E. coli 10 9 CFU / ml 0.5 ml of P. aeruginosa 10 9 CFU / ml was introduced into the wound.
Контрольную группу составили животные, которым моделирование раны проводили по способу-прототипу. Количество животных в этой группе равнялось 10.The control group consisted of animals that were modeling wounds by the prototype method. The number of animals in this group was 10.
Отправной точкой эксперимента по суткам во всех группах было принято время инфицирования раны.The starting point of the day experiment in all groups was the time of wound infection.
У всех животных основной и контрольной групп изучали микрофлору ран, площадь раневой поверхности, морфологические изменения в ране в динамике эксперимента на 1, 3, 7, 9, 11, 19 сутки.Wound microflora, wound surface area, morphological changes in the wound in the dynamics of the experiment on
Клиническая картина ран в обеих группах животных на 1-е сутки была одинаковой. Раны характеризовались подрытыми, рубцово-фибринозными краями, вялыми и тусклыми грануляциями, очагами некротических изменений.The clinical picture of wounds in both groups of animals on the 1st day was the same. The wounds were characterized by sagging, scar-fibrinous edges, sluggish and dull granulations, foci of necrotic changes.
Динамика микробной обсемененности инфицированной раны животных основной группы представлена в таблице 1 (Lg КОЕ/см2, медиана и квартили).The dynamics of microbial contamination of the infected wounds of animals of the main group are presented in table 1 (Lg CFU / cm 2 , median and quartile).
У всех животных основной группы на 1-е сутки была выявлена высокая микробная обсемененность ран ассоциацией внесенной микробной флоры с ростом более 107 КОЕ (E.Coli+P. Aeruginosa), с преобладанием Р. aeruginosa. In all animals of the main group, on day 1, a high microbial contamination of the wounds was revealed by the association of the introduced microbial flora with growth of more than 10 7 CFU (E. Coli + P. Aeruginosa), with a predominance of P. aeruginosa.
Через 3-е суток отмечены положительные клинические изменения, заключающиеся в отторжении части некротических очагов, в усилении роста островков здоровой грануляционной ткани. При контрольном микробиологическом исследовании уровень обсемененности оставался высоким 105-6 КОЕ (E.Coli и P.aeruginosa), с преобладанием P. Aeruginosa, но был существенно ниже по сравнению с 1-ми сутками (Pw=0,007).After 3 days, positive clinical changes were noted, consisting in the rejection of part of the necrotic foci, in increased growth of islands of healthy granulation tissue. In the control microbiological study, the seeding rate remained high 10 5-6 CFU (E. Coli and P. aeruginosa), with the predominance of P. Aeruginosa, but was significantly lower compared with 1 day (P w = 0.007).
Выявленный уровень микробной обсемененности сохранялся без изменений до 11-х суток. Существенное снижение зарегистрировано к 19-м суткам (Pw=0,0002).The revealed level of microbial contamination remained unchanged up to 11 days. A significant decrease was recorded by the 19th day (P w = 0,0002).
Оценку течения заживления ран проводили по двум критериям: по сроку начала эпителизации (в сутках) и по времени полузаживления - уменьшение площади раны в 2 раза (в сутках). Измерение площади раны проводили взвешиванием бумажного шаблона на торсионных весах. Результаты приведены в таблице 2.The assessment of the course of wound healing was carried out according to two criteria: by the start of epithelization (in days) and by half-healing time - a 2-fold reduction in the area of the wound (in days). The measurement of the area of the wound was carried out by weighing a paper template on a torsion balance. The results are shown in table 2.
При морфологическом исследовании животных основной группы в области раны на 1-е сутки выявлено: поверхностно колонии микробов, некротизированная ткань, лейкоциты, дейтрит, фибрин (Фиг.5, позиция 1). В подлежащей ткани: отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани (Фиг.5, позиция 2).A morphological study of the animals of the main group in the wound area on the 1st day revealed: superficially microbial colonies, necrotic tissue, white blood cells, deuteritis, fibrin (Figure 5, position 1). In the underlying tissue: edema, plasma soaking, diffusely distributed white blood cells in the underlying connective tissue (Figure 5, position 2).
К 19-м суткам в области раны поверхностно расположен струп из клеточного дейтрита (Фиг.6, позиция 3). Под струпом новообразованная соединительная ткань с фибробластами и фиброцитами (Фиг.6, позиция 4). Рана поверхностная с морфологией заживления раны к 19-м суткам под струпом.By the 19th day in the wound area, a scab of cell deuteritis is superficially located (Fig.6, position 3). Under the scab, newly formed connective tissue with fibroblasts and fibrocytes (Fig.6, position 4). The wound is superficial with the morphology of wound healing by the 19th day under the scab.
Динамика микробного пейзажа инфицированной раны кожи животных контрольной группы представлена в таблице 3 (Lg КОЕ/см2, медиана и квартили).The dynamics of the microbial landscape of the infected wounds of the skin of animals of the control group are presented in table 3 (Lg CFU / cm 2 , median and quartile).
При оценке микрофлоры ран контрольных животных, кроме внесенной микрофлоры (St.aureus), было выявлено наличие дополнительных штаммов микроорганизмов.When evaluating the microflora of the wounds of control animals, in addition to the introduced microflora (St.aureus), the presence of additional strains of microorganisms was revealed.
Присоединение посторонней микрофлоры затрудняет динамическое и количественное исследование микробной обсемененности раны внесенным штаммом.The addition of extraneous microflora complicates the dynamic and quantitative study of microbial contamination of the wound by the introduced strain.
При морфологическом исследовании инфицированных ран контрольных животных на 1-е сутки поверхностно в области раны выявлено: колонии микробов, некротизированная ткань, лейкоциты, дейтрит, фибрин (Фиг.7, позиция 1). Апоневроз (Фиг.7, позиция 2) в подлежащей ткани, между апоневрозом и прилежащими волокнами скелетной мышцы отек, плазматическое пропитывание и умеренная лейкоцитарная инфильтрация. Рана стратефицирована, апоневроз отделяет воспаление поверхностных и глубоких отделов тканей до мышечного слоя. При морфологической оценке препаратов этой группы обнаружены микроабсцессы как поверхностные, так и в глубоких отделах тканей до мышц, в зоне насечек нанесенных скальпелем на дно раны. Все полученные данные подтверждают невозможность контроля глубины и площади поражения.When morphological examination of infected wounds of control animals on the 1st day superficially in the wound area revealed: microbial colonies, necrotic tissue, white blood cells, deuteritis, fibrin (Fig.7, position 1). Aponeurosis (Fig. 7, position 2) in the underlying tissue, between the aponeurosis and adjacent fibers of the skeletal muscle, edema, plasma impregnation and moderate leukocyte infiltration. The wound is stratified, the aponeurosis separates the inflammation of the superficial and deep parts of the tissues to the muscle layer. A morphological evaluation of the preparations of this group revealed microabscesses, both superficial and in the deep parts of the tissues to the muscles, in the area of the notches applied with a scalpel to the bottom of the wound. All data obtained confirm the impossibility of controlling the depth and area of the lesion.
Анализ бактериологического и морфологического исследований подтвердил возможность получения модели инфицированной кожной раны с заданными параметрами.An analysis of bacteriological and morphological studies confirmed the possibility of obtaining a model of an infected skin wound with specified parameters.
Таким образом, предложенный способ позволяет получить модель инфицированной кожной раны, по своим характеристикам максимально приближенную к реальному клиническому течению раневого процесса. Воспроизводимость модели составляет 100%.Thus, the proposed method allows to obtain a model of an infected skin wound, in its characteristics as close as possible to the real clinical course of the wound process. The reproducibility of the model is 100%.
Модель может быть использована в хроническом эксперименте для получения инфицированной кожной раны с контролируемыми параметрами, включающими как бактериальную обсемененность раны, так и глубину и площадь повреждения.The model can be used in a chronic experiment to obtain an infected skin wound with controlled parameters, including both bacterial contamination of the wound and the depth and area of damage.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010114127/14A RU2431890C1 (en) | 2010-04-09 | 2010-04-09 | Method of modelling infected skin wound |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010114127/14A RU2431890C1 (en) | 2010-04-09 | 2010-04-09 | Method of modelling infected skin wound |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2431890C1 true RU2431890C1 (en) | 2011-10-20 |
Family
ID=44999291
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2010114127/14A RU2431890C1 (en) | 2010-04-09 | 2010-04-09 | Method of modelling infected skin wound |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2431890C1 (en) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2548820C2 (en) * | 2013-02-26 | 2015-04-20 | Муниципальное бюджетное учреждение здравоохранения "Клиническая поликлиника N 5" г. Кемерово | Method for simulating bite wound |
| RU2703709C1 (en) * | 2018-08-23 | 2019-10-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach |
| RU2746435C1 (en) * | 2020-04-03 | 2021-04-14 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for simulating infected wound in spf rats |
| RU2753955C1 (en) * | 2021-01-26 | 2021-08-24 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Method for modeling trophic purulent wounds in experiment |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2016889C1 (en) * | 1991-02-11 | 1994-07-30 | Донецкий государственный медицинский институт им.М.Горького | Method of controlling traumatic process |
| CN2613239Y (en) * | 2003-04-11 | 2004-04-28 | 俞智慧 | Adhesive stick strip for closing skin wound |
| RU2321898C1 (en) * | 2006-06-23 | 2008-04-10 | Тюменский филиал ГУ научно-исследовательский институт клинической иммунологии СО РАМН | Method for modeling infected wound of soft tissues |
-
2010
- 2010-04-09 RU RU2010114127/14A patent/RU2431890C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2016889C1 (en) * | 1991-02-11 | 1994-07-30 | Донецкий государственный медицинский институт им.М.Горького | Method of controlling traumatic process |
| CN2613239Y (en) * | 2003-04-11 | 2004-04-28 | 俞智慧 | Adhesive stick strip for closing skin wound |
| RU2321898C1 (en) * | 2006-06-23 | 2008-04-10 | Тюменский филиал ГУ научно-исследовательский институт клинической иммунологии СО РАМН | Method for modeling infected wound of soft tissues |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| реферат. САХАРОВ И.Ю. и др. Иммуногистохимическое изучение гнойных ран у крыс после аппликации коллагеназы краба PARALITHODES CAMTSHATICA, Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, №9. - М.: Медицина, 1993, с.267-270. STEINSTRAESSER L, et al., A novel human skin chamber model to study wound infection ex vivo., Arch Dermatol Res. 2010 Jul; 302(5):357-65. Epub 2009 Dec 3. * |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2548820C2 (en) * | 2013-02-26 | 2015-04-20 | Муниципальное бюджетное учреждение здравоохранения "Клиническая поликлиника N 5" г. Кемерово | Method for simulating bite wound |
| RU2703709C1 (en) * | 2018-08-23 | 2019-10-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach |
| RU2746435C1 (en) * | 2020-04-03 | 2021-04-14 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for simulating infected wound in spf rats |
| RU2753955C1 (en) * | 2021-01-26 | 2021-08-24 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Method for modeling trophic purulent wounds in experiment |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US10383971B2 (en) | Hemostatic compositions and therapeutic regimens | |
| RU2431890C1 (en) | Method of modelling infected skin wound | |
| Albanese et al. | Use of a barbed knotless suture for laparoscopic ablation of the nephrosplenic space in 8 horses | |
| RU2321898C1 (en) | Method for modeling infected wound of soft tissues | |
| Martins et al. | Use of derived adipose stem cells to reduce complications of cutaneous scarring in smokers. An experimental model in rats | |
| Shih et al. | 3D-Printed proangiogenic patches of photo-crosslinked gelatin and polyurethane hydrogels laden with vascular cells for treating vascular ischemic diseases | |
| Nolff et al. | Treatment of a perforating thoracic bite wound in a dog with negative pressure wound therapy | |
| Kumar et al. | Classification and management of acute wounds | |
| RU2703709C1 (en) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach | |
| Gandini et al. | Pectin-honey hydrogel to prevent laparotomy surgical site infection in horses: A pilot study | |
| CN106729958A (en) | The method that internal bleeding-stopping dressing is prepared by programmed cooling | |
| CN114425102A (en) | Hydrophilic electrostatic spinning implant for inducing skin tissue regeneration | |
| Brown et al. | Single, large, meshed full-thickness free skin graft for reconstruction of a dorsal lumbosacral wound defect in a dog | |
| RU2796871C1 (en) | Method of regeneration of plane wounds in rats | |
| RU2789497C1 (en) | Method for preparation of biological tissue for transplantation | |
| CN104195030A (en) | Micro-fluidic chip and method for evaluating wound dressing by using micro-fluidic chip | |
| RU2831963C1 (en) | Method for stimulating wound healing | |
| Uyan et al. | Comparison of endoloop and Hem-o-lok clip for stump closure in laparoscopic appendectomy: which one is more cost-effective. A retrospective study | |
| RU2803946C1 (en) | Method of treatment of long-term non-healing wounds | |
| RU2335281C1 (en) | Method of treatment of infected wounds in animals | |
| CN108982769A (en) | A kind of biocompatibility detection method of collagen protein sponge | |
| Muhammad et al. | Clinical and biochemical (PH level) effects of platelet-rich fibrin on skin pedicle graft healing | |
| Aksamitiene et al. | Novel, standardized pre-clinical surgical animal model to investigate the cellular and molecular mechanisms of ischemic flap healing | |
| RU2302041C1 (en) | Method for modeling acute cholecystitis in dogs | |
| Chen et al. | Disruption Of Mechanotransduction Signaling Preserves Fibroblast Heterogeneity And Promotes Tissue Regeneration In Healing Wounds |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120410 |