WO2018123619A1 - フィルタ付き細胞用バッグ、及びその製造方法 - Google Patents
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Classifications
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
- C12M1/12—Apparatus for enzymology or microbiology with sterilisation, filtration or dialysis means
-
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- C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
- C12M3/06—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus with filtration, ultrafiltration, inverse osmosis or dialysis means
Definitions
- the present invention relates to a cell bag with a filter for easily and efficiently performing various operations such as cell and medium fractionation, filtration, and washing performed during cell culture, and a method for producing the same.
- the present applicant has repeatedly studied a cell culture system capable of performing cell culture efficiently while constructing a closed system environment to reduce the risk of contamination.
- Patent Document 1 a culture container for culturing cells, a medium storage container for storing a medium and the like, a cell injection container for injecting cells, and a cell suspension after culture
- a cell culture kit is proposed in which a cell collection container to be collected is connected by a conduit to construct a closed system environment. According to such a cell culture kit, it is possible to carry out from cell injection to medium addition, sampling, and collection while maintaining a closed system in the kit.
- Patent Document 1 in recovering cultured cells, the culture vessel is allowed to stand to settle the cells in the cell suspension, and then the supernatant of the cell suspension is discharged, An example is shown in which the concentrated cell suspension is transferred from the culture vessel to the cell collection vessel after being reduced.
- cell culture usually takes a period of several days to several weeks, so that cell growth is not inhibited by the depletion of medium components or accumulation of cell metabolites,
- the medium may be changed as necessary.
- the cells in the cell suspension must be allowed to settle by allowing the culture vessel to stand before draining the cell suspension supernatant. It takes time to settle the cells.
- cells may be mixed into the supernatant by the discharge operation, and the cells may be discharged together with the supernatant.
- it is desirable to remove as much of the old medium as possible, and to add more new medium.
- cell contamination is avoided. It will not be possible.
- the flow path diameter of the port is usually about 1 to 10 mm, and the area of the filter is relatively small. Therefore, the trapped cells are likely to be clogged, and the old medium may be prevented from being discharged. is there. Furthermore, there is a possibility that the cells captured by the filter do not return to the culture container and die while being captured by the filter.
- the present applicant partitions the inside of the container body with a filter member, so that, for example, when exchanging the medium, the cells in culture remain in one partition. In view of this, only the old medium can be discharged from the other compartment, and various studies have been made to realize this.
- the present invention provides a filter for partitioning the inside of a container body with a filter member in order to easily and efficiently perform various operations such as cell and medium fractionation, filtration, and washing performed during cell culture.
- An object of the present invention is to provide a cell bag with a filter whose seal strength with a member is increased, and a method for producing the same.
- the cell bag with a filter includes a container main body and an injecting / extracting port, the inside of the container main body is partitioned by a filter member, and an injecting / extracting port is provided in at least one section.
- the filter member comprises a main mesh made of polyester or polyamide having a mesh opening of 20 to 300 ⁇ m, and a polyethylene sub-mesh having a mesh opening of 100 to 4000 ⁇ m arranged on both front and back surfaces thereof, and the container body has at least Between the flexible film containing a polyethylene layer, the said polyethylene layer is made to oppose, and the peripheral part is heat-sealed on both sides of the said filter member, and the heat-fusion part formed in the peripheral part of the said container main body In the above, the polyethylene sub-mesh is melted and fused to each other while entering the gap of the main mesh Both are configured to be fused to the polyethylene layer of the flexible film.
- the method for producing a cell bag with a filter according to the present invention comprises a container main body and an injection port, and the inside of the container main body is partitioned by a filter member, and the injection port is provided in at least one partition.
- the method of manufacturing a cell bag with a filter provided with a sub mesh made of polyethylene having an opening of 100 to 4000 ⁇ m is provided on both sides of a main mesh made of polyester or polyamide having an opening of 20 to 300 ⁇ m.
- the filter member is prepared, the polyethylene layer is opposed between at least a flexible film including a polyethylene layer, the filter member is sandwiched, and the peripheral portions thereof are heat-sealed.
- the present invention it is possible to provide a cell bag with a filter in which the sealing strength between the flexible film forming the container body and the filter member is increased and the bag breaking strength is improved.
- FIG. 1 is an explanatory view showing an example of a cell bag with a filter according to the present embodiment
- FIG. 1 (a) is a plan view of the cell bag with filter 1
- FIG. 1 (b) is a filter.
- FIG. 1C is a cross-sectional view taken along the line AA of FIG.
- a cell bag with filter 1 shown in FIG. 1 includes a container body 2 and injection ports 3a and 3b. And the inside of the container main body 2 is divided into two chambers by the filter member 4, and injection ports 3a and 3b are provided in the respective compartments (first compartment 1st and second compartment 2nd).
- the injection ports 3a and 3b are portions that serve as entrances and exits when injecting and discharging culture media and cells.
- the injection ports 3a and 3b are provided by attaching a tubular member through which the culture media or cells can flow to the container body 2.
- the tubular members forming the injection ports 3a and 3b are formed into a predetermined shape by injection molding, extrusion molding, or the like using a thermoplastic resin such as polyethylene, polypropylene, vinyl chloride, polystyrene elastomer, FEP, etc. Can be molded.
- the filter member 4 is configured using two types of meshes having different mesh sizes, and includes a main mesh 4a having a relatively small mesh size and a sub-mesh 4b having a relatively large mesh size disposed on both front and back surfaces. It has become.
- a polyester mesh woven from a polyester resin fiber such as polyethylene terephthalate or a polyamide mesh woven from a polyamide resin fiber such as nylon is used.
- a polyethylene mesh formed by weaving polyethylene resin fibers is used for the sub-mesh 4b.
- the polyethylene-type resin fiber which forms the submesh 4b consists of the same kind of polyethylene-type resin as the polyethylene layer 20a of the flexible film 20 mentioned later.
- the mesh size of these meshes 4a and 4b can be appropriately selected according to the usage mode of the filter-equipped cell bag 1.
- the main mesh 4a has an opening of 20 to 300 ⁇ m
- the submesh 4b has a mesh size of 20 to 300 ⁇ m.
- These mesh sizes are selected in the range of 100 to 4000 ⁇ m. At this time, it is preferable to select from the above range so that the opening of the sub-mesh 4b is 2 to 10 times larger than the opening of the main mesh 4a.
- the usage example of the cell bag 1 with a filter is mentioned later.
- the container body 2 is formed by making the flexible film 20 into a bag shape.
- a flexible film 20 including at least a polyethylene layer 20 a is used as the flexible film 20 forming the container body 2.
- a flexible film 20 includes, for example, polypropylene, ethylene-vinyl acetate copolymer, polyester, polyamide, silicone elastomer, polystyrene elastomer, tetrafluoroethylene, in addition to a polyethylene resin film including a polyethylene layer 20a as a single layer.
- the -It may be a laminated film in which the polyethylene layer 20a is laminated on one or more layers made of a thermoplastic resin such as hexafluoropropylene copolymer (FEP) so that the polyethylene layer 20a is located on the surface layer.
- FEP hexafluoropropylene copolymer
- the flexible film 20 which forms the container main body 2 has transparency to such an extent that the progress of cell culture, the state of internal cells, the color of the medium, and the like can be confirmed.
- the container body 2 has two flexible films 20 cut to a desired size, and the two layers of the flexible films 20 are aligned and overlapped, with the polyethylene layer 20a facing each other between the two flexible films 20. Then, these peripheral portions can be formed by heat-sealing with the filter member 4 sandwiched therebetween.
- the peripheral part of the container body 2 What is necessary is just to heat-seal
- FIG. 2 is an explanatory diagram schematically showing a production example of the cell bag 1 with a filter, and shows the arrangement of the flexible film 20, the filter member 4, and the injection ports 3a and 3b.
- the sub-mesh 4b (specifically, the sub-mesh) disposed on both the front and back surfaces of the main mesh 4a in the heat-sealing portion 5 formed at the peripheral portion thereof. 4b forming polyethylene-based resin fibers) are melted and are fused to each other while penetrating into the gaps of the main mesh 4a, and are also fused to the polyethylene layer 20a of the flexible film 20. As a result, the sealing strength between the flexible film 20 forming the container body 2 and the filter member 4 is increased, and the bag breaking strength of the cell bag with filter 1 is improved.
- the filter member 4 In the state in which the filter member 4 is sandwiched between the flexible films 20, these peripheral portions are heat-sealed to form the container body 2, and the filter member 4 is also cut into a desired size.
- melting part 5 it is preferable to align so that the edge of the main mesh 4a may be located inside a container rather than the edge of the submesh 4b. Furthermore, it is more preferable to trim the sub-mesh 4b so that the edge of the sub-mesh 4b is positioned inside the container rather than the edge of the flexible film 20 that forms the container body 2. 3 corresponds to the BB cross section of FIG.
- An end edge of the flexible film 20 is indicated by a one-dot chain line ⁇
- an end edge of the main mesh 4a is indicated by a one-dot chain line ⁇
- an end edge of the sub-mesh 4b is indicated by a one-dot chain line ⁇ .
- the polyethylene layers 20a of the flexible film 20 are melted and fused directly or via the sub-mesh 4b. .
- the outermost edge portion of the container body 2 is more strongly heat-sealed, and the bag breaking strength of the cell bag with filter 1 is further improved.
- FIG. 4 shows an example in which the filter-equipped cell bag 1 shown in FIG. 1 is used as a culture bag in which operations such as medium replacement can be performed simply and efficiently.
- the cells C to be cultured are injected into the container body 2 filled with the medium from the injection port 3b provided in the second section 2nd, and the culture is performed.
- a main mesh 4a of the filter member 4 having a mesh size that does not allow the cell C to pass through is selected.
- the mesh size of the submesh 4b of the filter member 4 should just be larger than the mesh size of the main mesh 4a, and can be suitably selected irrespective of the magnitude
- the old medium When exchanging the medium during the culture period, the old medium is discharged from the inlet / outlet port 3a provided in the first section 1st (see FIG. 4B). At this time, since the cells C being cultured can remain in the second compartment 2nd, it can be prevented from being discharged together with the old medium, and more of the old medium can be discharged. After discharging the old medium, the same amount of new medium is injected from the injection port 3a provided in the first section 1st (see FIG. 4C), and the culture is continued.
- the medium exchange during the culture period in particular, the operation of discharging the old medium can be performed easily and efficiently.
- the cell bag with filter 1 in this use example discharges the content liquid in the container from the injection port 3a provided in the first section 1st in a state where the cells C remain in the second section 2nd. Therefore, for example, when used as a culture container for the cell culture kit of Patent Document 1, the cell recovery operation exemplified in Patent Document 1 is also simple and efficient without taking time for cell sedimentation. Can be done well.
- the washing / recovery mechanism can be introduced into the cell culture kit of Patent Document 1 by repeating the injection and discharge of the washing liquid to perform the washing operation of the cells.
- a mesh size that does not allow passage of the cells C to be cultured is selected, and the cells are placed in one partition 2nd partitioned by the filter member 4.
- a medium, a washing solution, and the like are supplied from the injection port 3a provided in the other section 1st partitioned by the filter member 4. Can be injected.
- This use example is one use example of the cell bag 1 with a filter according to the present embodiment, and the cells performed during cell culture by using the bag 1 with a filter cell according to the present embodiment for cell culture.
- the various operations such as fractionation, filtration, washing, and filtration of the medium can be carried out simply and efficiently.
- the inside of the container body 2 is partitioned into two chambers
- a plurality of similar filter members 4 may be used to partition into three or more chambers.
- the pouring port may be provided in at least one section, and there may be a section in which the pouring port is not provided.
- the present invention can be used as a technique for efficiently culturing cells in the fields of pharmaceutical science and biochemistry.
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Abstract
少なくともポリエチレン層20aを含む可撓性フィルム20の間に、ポリエチレン層20aを対向させて、目開き20~300μmのポリエステル製又はポリアミド製のメインメッシュ4aと、その表裏両面に配された目開き100~4000μmのポリエチレン製のサブメッシュ4bとからなるフィルタ部材4を挟んで周縁部を熱融着して容器本体2を形成し、容器本体2の周縁部に形成される熱融着部5において、サブメッシュ4bが溶融して、メインメッシュ4aの空隙部に侵入しつつ互いに融着されているともに、可撓性フィルム20のポリエチレン層20aと融着させる。これにより、細胞培養に際して行われる細胞の分画、ろ過、洗浄などの種々の操作を簡便、かつ、効率良く行うために、容器本体の内部をフィルタ部材によって区画するにあたり、フィルタ部材とのシール強度が高めることができる。
Description
本発明は、細胞培養に際して行われる細胞や培地の分画、ろ過、洗浄などの種々の操作を簡便、かつ、効率良く行うためのフィルタ付き細胞用バッグ、及びその製造方法に関する。
近年、医薬品の生産、遺伝子治療、再生医療、免疫療法などの医薬学・生化学分野において、細胞(組織、微生物、ウイルスなどを含む)を人工的な環境下で効率良く大量に培養することが求められている。
このような要求に応えるべく、本出願人は、閉鎖系の環境を構築してコンタミネーションのリスクを低減しつつ、効率的に細胞培養を行うことができる細胞培養システムについて検討を重ねてきた。
例えば、特許文献1において、細胞を培養するための培養容器と、培地等を貯蔵しておくための培地貯蔵容器と、細胞を注入するための細胞注入容器と、培養後の細胞懸濁液を回収する細胞回収容器とを導管によって連結し、閉鎖系の環境を構築してなる細胞培養用キットを提案している。このような細胞培養用キットによれば、細胞注入から培地追加、サンプリング、回収までをキット内で閉鎖系を維持しながら行うことが可能となる。
ところで、特許文献1には、培養された細胞を回収するにあたり、培養容器を静置して細胞懸濁液中の細胞を沈降させた後に、細胞懸濁液の上澄みを排出し、液量を低減させてから、濃縮された細胞懸濁液を培養容器から細胞回収容器に移送する例が示されている。
また、細胞の培養には、通常、数日~数週間の期間を要するため、培地成分の枯渇や細胞の代謝物の蓄積によって細胞の成長が阻害されてしまわないように、培養期間中に、必要に応じて培地交換を行うことがある。培地交換を行うに際しては、細胞懸濁液の上澄みを排出することによって古い培地を取り除くとともに、それに代えて新しい培地を追加することが考えられる。
しかしながら、このようにして細胞の回収や培地交換を行うには、細胞懸濁液の上澄みを排出するに先立って、培養容器を静置して細胞懸濁液中の細胞を沈降させておかなければならず、細胞を沈降させるまでに時間を要してしまう。一方、十分な時間をかけて細胞懸濁液中の細胞を沈降させても、排出操作によって上澄みに細胞が混入し、上澄みと一緒に細胞が排出されてしまう虞もある。特に、培地交換を行うにあたっては、古い培地ができるだけ多く取り除かれるようにして、新しい培地がより多く追加されるようにすることが望まれるが、上澄みの排出量が多くなるほど、細胞の混入が避けられなくなってしまう。
また、培地交換を行う際に、古い培地と一緒に細胞が排出されてしまうのを防ぐには、培養容器に設けられたポートの流路にフィルタを取り付けることも考えられる。
しかしながら、ポートの流路径は、通常、1~10mm程度であり、フィルタの面積も比較的小さくなるため、捕捉された細胞によってフィルタに目詰まりが生じ易く、古い培地の排出を妨げてしまう虞がある。さらに、フィルタに捕捉された細胞が培養容器内に戻らずに、フィルタに捕捉されたまま死滅してしまう虞もある。
しかしながら、ポートの流路径は、通常、1~10mm程度であり、フィルタの面積も比較的小さくなるため、捕捉された細胞によってフィルタに目詰まりが生じ易く、古い培地の排出を妨げてしまう虞がある。さらに、フィルタに捕捉された細胞が培養容器内に戻らずに、フィルタに捕捉されたまま死滅してしまう虞もある。
このような背景技術に鑑みて、本出願人は、容器本体の内部をフィルタ部材によって区画することで、例えば、培地交換を行う際には、培養中の細胞を一方の区画に留まらせておいて、他方の区画から古い培地のみを排出させることができると考え、これを実現するために種々の検討を重ねてきた。
しかしながら、フィルタ部材として用いるには、細胞の通過を許容しない程度にメッシュサイズの小さいものが容易に入手できるポリエステル製又はポリアミド製のメッシュが好適であるところ、このようなメッシュを、特許文献1の培養容器ように、ポリエチレン系樹脂を材料とする可撓性素材を用いて形成した容器に取り付けるには、シール強度が弱いという問題があった。
そこで、かかる問題点に着眼して、本出願人が、さらなる鋭意検討を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
そこで、かかる問題点に着眼して、本出願人が、さらなる鋭意検討を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、細胞培養に際して行われる細胞や培地の分画、ろ過、洗浄などの種々の操作を簡便、かつ、効率良く行うために、容器本体の内部をフィルタ部材によって区画するにあたり、フィルタ部材とのシール強度が高められたフィルタ付き細胞用バッグ、及びその製造方法の提供を目的とする。
本発明に係るフィルタ付き細胞用バッグは、容器本体と注入出用ポートとを備え、前記容器本体の内部が、フィルタ部材によって区画されて、少なくとも一つの区画に注入出用ポートが設けられており、前記フィルタ部材が、目開き20~300μmのポリエステル製又はポリアミド製のメインメッシュと、その表裏両面に配された目開き100~4000μmのポリエチレン製のサブメッシュとからなり、前記容器本体が、少なくともポリエチレン層を含む可撓性フィルムの間に、前記ポリエチレン層を対向させて、前記フィルタ部材を挟んで周縁部を熱融着してなり、前記容器本体の周縁部に形成される熱融着部において、前記ポリエチレン製のサブメッシュが溶融して、前記メインメッシュの空隙部に侵入しつつ互いに融着されているともに、前記可撓性フィルムの前記ポリエチレン層と融着している構成としてある。
また、本発明に係るフィルタ付き細胞用バッグの製造方法は、容器本体と注入出用ポートとを備え、前記容器本体の内部が、フィルタ部材によって区画されて、少なくとも一つの区画に注入出用ポートが設けられたフィルタ付き細胞用バッグの製造方法であって、目開き20~300μmのポリエステル製又はポリアミド製のメインメッシュの表裏両面に、目開き100~4000μmのポリエチレン製のサブメッシュを配して前記フィルタ部材を用意し、少なくともポリエチレン層を含む可撓性フィルムの間に、前記ポリエチレン層を対向させて、前記フィルタ部材を挟み、これらの周縁部を熱融着する方法としてある。
本発明によれば、容器本体を形成する可撓性フィルムとフィルタ部材とのシール強度が高められ、破袋強度が向上したフィルタ付き細胞用バッグを提供することができる。
以下、本発明の好ましい実施形態について、図面を参照しつつ説明する。
なお、図1は、本実施形態に係るフィルタ付き細胞用バッグの一例を示す説明図であり、図1(a)は、フィルタ付き細胞用バッグ1の平面図、図1(b)は、フィルタ付き細胞用バッグ1の側面図、図1(c)は、図1(a)のA-A断面図である。
なお、図1は、本実施形態に係るフィルタ付き細胞用バッグの一例を示す説明図であり、図1(a)は、フィルタ付き細胞用バッグ1の平面図、図1(b)は、フィルタ付き細胞用バッグ1の側面図、図1(c)は、図1(a)のA-A断面図である。
本実施形態の一例として図1に示すフィルタ付き細胞用バッグ1は、容器本体2と注入出用ポート3a,3bとを備えている。そして、容器本体2の内部は、フィルタ部材4によって二室に区画されており、それぞれの区画(第一区画1st及び第二区画2nd)に注入出用ポート3a,3bが設けられている。
注入出用ポート3a,3bは、培地や細胞を注入、排出などする際の出入り口となる部位であり、例えば、培地や細胞などが流通可能な管状の部材を容器本体2に取り付けることによって設けることができる。注入出用ポート3a,3bを形成する管状の部材は、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、塩化ビニル、ポリスチレン系エラストマー、FEPなどの熱可塑性樹脂を用いて、射出成形、押出成形などにより、所定の形状に成形することができる。
フィルタ部材4は、メッシュサイズが異なる二種類のメッシュを用いて構成され、メッシュサイズが相対的に小さいメインメッシュ4aと、その表裏両面に配されたメッシュサイズが相対的に大きいサブメッシュ4bとからなっている。
メインメッシュ4aには、ポリエチレンテレフタレート等のポリエステル系樹脂繊維を織製したポリエステル製メッシュ、又はナイロン等のポリアミド系樹脂繊維を織製してなるポリアミド製メッシュが用いられる。サブメッシュ4bには、ポリエチレン系樹脂繊維を織製してなるポリエチレン製メッシュが用いられる。
なお、サブメッシュ4bを形成するポリエチレン系樹脂繊維は、後述する可撓性フィルム20のポリエチレン層20aと同種のポリエチレン系樹脂からなるのが好ましい。
メインメッシュ4aには、ポリエチレンテレフタレート等のポリエステル系樹脂繊維を織製したポリエステル製メッシュ、又はナイロン等のポリアミド系樹脂繊維を織製してなるポリアミド製メッシュが用いられる。サブメッシュ4bには、ポリエチレン系樹脂繊維を織製してなるポリエチレン製メッシュが用いられる。
なお、サブメッシュ4bを形成するポリエチレン系樹脂繊維は、後述する可撓性フィルム20のポリエチレン層20aと同種のポリエチレン系樹脂からなるのが好ましい。
これらのメッシュ4a,4bのメッシュサイズは、フィルタ付き細胞用バッグ1の使用態様に応じて適宜選定することができるが、メインメッシュ4aについては目開き20~300μmの範囲で、サブメッシュ4bについては目開き100~4000μmの範囲で、これらのメッシュサイズを選定する。このとき、サブメッシュ4bの目開きが、メインメッシュ4aの目開きに対して2~10倍の大きさとなるように、上記範囲から選定するのが好ましい。
なお、フィルタ付き細胞用バッグ1の使用例については後述する。
なお、フィルタ付き細胞用バッグ1の使用例については後述する。
容器本体2は、可撓性フィルム20をバッグ状に製袋することによって形成される。
容器本体2を形成する可撓性フィルム20としては、少なくともポリエチレン層20aを含む可撓性フィルム20が用いられる。かかる可撓性フィルム20は、ポリエチレン層20aを単層で含むポリエチレン系樹脂フィルムの他、例えば、ポリプロピレン、エチレン-酢酸ビニル共重合体、ポリエステル、ポリアミド、シリコーン系エラストマー、ポリスチレン系エラストマー、テトラフルオロエチレン-ヘキサフルオロプロピレン共重合体(FEP)などの熱可塑性樹脂からなる一種又は二種以上の層に、ポリエチレン層20aが表層に位置するように積層された積層フィルムであってもよい。
なお、容器本体2を形成する可撓性フィルム20は、細胞培養の進行状況や内部の細胞の状態又は培地の色などを確認できる程度の透明性を有しているのが好ましい。
容器本体2を形成する可撓性フィルム20としては、少なくともポリエチレン層20aを含む可撓性フィルム20が用いられる。かかる可撓性フィルム20は、ポリエチレン層20aを単層で含むポリエチレン系樹脂フィルムの他、例えば、ポリプロピレン、エチレン-酢酸ビニル共重合体、ポリエステル、ポリアミド、シリコーン系エラストマー、ポリスチレン系エラストマー、テトラフルオロエチレン-ヘキサフルオロプロピレン共重合体(FEP)などの熱可塑性樹脂からなる一種又は二種以上の層に、ポリエチレン層20aが表層に位置するように積層された積層フィルムであってもよい。
なお、容器本体2を形成する可撓性フィルム20は、細胞培養の進行状況や内部の細胞の状態又は培地の色などを確認できる程度の透明性を有しているのが好ましい。
容器本体2は、例えば、所望のサイズに裁断された二枚の可撓性フィルム20を揃えて重ね合せ、その際、二枚の可撓性フィルム20の間に、そのポリエチレン層20aを対向させて、フィルタ部材4を挟み込んだ状態で、これらの周縁部を熱融着することによって形成することができる。
このとき、フィルタ部材4によって区画された、それぞれの区画1st,2ndに注入出用ポート3a,3bを設けるには、容器本体2の周縁部を熱融着する際に、容器本体2の周縁部における可撓性フィルム20とフィルタ部材4との間の所定の位置に、注入出用ポート3a,3bを形成する管状の部材を挟んで熱融着するようにすればよい。
また、熱融着に際しては、その温度は、サブメッシュ4bに用いたポリエチレン系樹脂の融点以上、メインメッシュ4aに用いたポリエステル系樹脂又はポリアミド系樹脂の融点未満の温度とする。
なお、図2は、フィルタ付き細胞用バッグ1の製造例を模式的に示す説明図であり、可撓性フィルム20、フィルタ部材4、注入出用ポート3a,3bの配置を示している。
このとき、フィルタ部材4によって区画された、それぞれの区画1st,2ndに注入出用ポート3a,3bを設けるには、容器本体2の周縁部を熱融着する際に、容器本体2の周縁部における可撓性フィルム20とフィルタ部材4との間の所定の位置に、注入出用ポート3a,3bを形成する管状の部材を挟んで熱融着するようにすればよい。
また、熱融着に際しては、その温度は、サブメッシュ4bに用いたポリエチレン系樹脂の融点以上、メインメッシュ4aに用いたポリエステル系樹脂又はポリアミド系樹脂の融点未満の温度とする。
なお、図2は、フィルタ付き細胞用バッグ1の製造例を模式的に示す説明図であり、可撓性フィルム20、フィルタ部材4、注入出用ポート3a,3bの配置を示している。
このようにして形成された容器本体2にあっては、その周縁部に形成される熱融着部5において、メインメッシュ4aの表裏両面に配されたサブメッシュ4b(具体的には、サブメッシュ4bを形成するポリエチレン系樹脂繊維)が溶融して、メインメッシュ4aの空隙部に侵入しつつ互いに融着されているとともに、可撓性フィルム20のポリエチレン層20aと融着している。その結果、容器本体2を形成する可撓性フィルム20とフィルタ部材4とのシール強度が高まり、フィルタ付き細胞用バッグ1の破袋強度が向上する。
可撓性フィルム20の間にフィルタ部材4を挟み込んだ状態で、これらの周縁部を熱融着して容器本体2を製袋するにあたり、フィルタ部材4についても所望のサイズに裁断するが、熱融着部5において、メインメッシュ4aの端縁が、サブメッシュ4bの端縁よりも容器内方に位置するように切り揃えておくことが好ましい。さらに、サブメッシュ4bの端縁が、容器本体2を形成する可撓性フィルム20の端縁よりも容器内方に位置するように切り揃えておくのがより好ましい。
なお、図3は、図1(a)のB-B断面に相当し、熱融着部5における可撓性フィルム20、メインメッシュ4a、サブメッシュ4bのそれぞれの端縁の位置関係を示し、可撓性フィルム20の端縁を一点鎖線αで示し、メインメッシュ4aの端縁を一点鎖線βで示し、サブメッシュ4bの端縁を一点鎖線γで示している。
なお、図3は、図1(a)のB-B断面に相当し、熱融着部5における可撓性フィルム20、メインメッシュ4a、サブメッシュ4bのそれぞれの端縁の位置関係を示し、可撓性フィルム20の端縁を一点鎖線αで示し、メインメッシュ4aの端縁を一点鎖線βで示し、サブメッシュ4bの端縁を一点鎖線γで示している。
このようにすることで、熱融着部5の最外縁部では、可撓性フィルム20のポリエチレン層20aどうしが直接、又はサブメッシュ4bを介して、これらが溶融して融着するようになる。その結果、容器本体2の最外縁部がより強固に熱融着されて、フィルタ付き細胞用バッグ1の破袋強度がより一層向上する。
次に、本実施形態の一例として図1に示すフィルタ付き細胞用バッグ1の使用例について説明する。
図4は、図1に示すフィルタ付き細胞用バッグ1を、培地交換などの操作を簡便、かつ、効率良く行うことができる培養バッグとして使用する例を示している。
図4は、図1に示すフィルタ付き細胞用バッグ1を、培地交換などの操作を簡便、かつ、効率良く行うことができる培養バッグとして使用する例を示している。
本使用例では、培地で満たされた容器本体2内に、第二区画2ndに設けた注入出用ポート3bから、培養対象の細胞Cを注入して培養を行う。このとき、培養対象の細胞Cの大きさを考慮して、フィルタ部材4のメインメッシュ4aとして、かかる細胞Cの通過を許容しないメッシュサイズのものを選択する。これにより、培養中の細胞Cは、第二区画2ndに留まり、第一区画1stには移動しないようにすることができる(図4(a)参照)。
なお、フィルタ部材4のサブメッシュ4bのメッシュサイズは、メインメッシュ4aのメッシュサイズよりも大きければよく、培養対象の細胞Cの大きさによらずに適宜選択できる。
なお、フィルタ部材4のサブメッシュ4bのメッシュサイズは、メインメッシュ4aのメッシュサイズよりも大きければよく、培養対象の細胞Cの大きさによらずに適宜選択できる。
培養期間中に培地交換を行う際には、第一区画1stに設けた注入出用ポート3aから、古い培地を排出する(図4(b)参照)。このとき、培養中の細胞Cを第二区画2ndに留まらせることができるため、古い培地と一緒に排出されないようにすることができ、古い培地をより多く排出させることが可能になる。古い培地を排出した後は、それと同量の新しい培地を第一区画1stに設けた注入出用ポート3aから注入し(図4(c)参照)、培養を継続する。
このように、本使用例にあっては、培養期間中の培地交換、特に、古い培地の排出操作を簡便、かつ、効率良く行うことができる。
また、本使用例におけるフィルタ付き細胞用バッグ1は、第二区画2ndに細胞Cを留まらせた状態で、第一区画1stに設けた注入出用ポート3aから、容器内の内容液を排出することができるため、例えば、特許文献1の細胞培養用キットの培養容器として使用すれば、特許文献1が例示する細胞の回収操作も、細胞の沈降に時間をかけずに、簡便、かつ、効率良く行うことができる。さらに、特許文献1の細胞培養用キットの細胞回収容器として使用し、培養容器から回収された細胞懸濁液を第二区画2ndに移送して、第一区画1stに設けた注入出用ポート3aから、洗浄液の注入、排出を繰り替えして細胞の洗浄操作が行われるようにすることで、特許文献1の細胞培養用キットに洗浄回収機構を導入することができる。
このように、本使用例では、フィルタ部材4のメインメッシュ4aとして、培養対象の細胞Cの通過を許容しないメッシュサイズのものを選択して、フィルタ部材4によって区画された一方の区画2ndに細胞Cを注入して培養を行うことで、当該区画2ndに細胞Cを留まらせた状態で、フィルタ部材4によって区画された他方の区画1stに設けた注入出用ポート3aから、培地や洗浄液などを注入出することができる。
本使用例は、本実施形態に係るフィルタ付き細胞用バッグ1の一使用例であり、本実施形態に係るフィルタ付き細胞用バッグ1を細胞培養の用途に供することで、細胞培養に際して行われる細胞の分画、ろ過、洗浄、又は培地のろ過などの種々の操作を簡便、かつ、効率良く行うことができる。
以上、本発明について、好ましい実施形態を示して説明したが、本発明は、前述した実施形態に限定されるものではなく、本発明の範囲で種々の変更実施が可能であることはいうまでもない。
例えば、前述した実施形態では、容器本体2の内部を二室に区画した例を示したが、同様のフィルタ部材4を複数用いて、三室以上に区画することもできる。また、それぞれの区画に、注入出用ポート3a,3bを一つずつ設けた例を示したが、必要に応じて、二以上の注出入用ポートを設けてもよい。また、注出入用ポートは、少なくとも一つの区画に設けられていればよく、注出入用ポートが設けられていない区画があってもよい。
この明細書に記載の文献及び本願のパリ優先権の基礎となる日本出願明細書の内容を全てここに援用する。
本発明は、医薬学・生化学分野において、細胞を効率良く培養する技術として利用できる。
1 フィルタ付き細胞用バッグ
2 容器本体
20 可撓性フィルム
20a ポリエチレン層
3a,3b 注入出用ポート
4 フィルタ部材
4a メインメッシュ
4b サブメッシュ
5 熱融着部
1st 第一区画
2nd 第二区画
2 容器本体
20 可撓性フィルム
20a ポリエチレン層
3a,3b 注入出用ポート
4 フィルタ部材
4a メインメッシュ
4b サブメッシュ
5 熱融着部
1st 第一区画
2nd 第二区画
Claims (3)
- 容器本体と注入出用ポートとを備え、
前記容器本体の内部が、フィルタ部材によって区画されて、少なくとも一つの区画に注入出用ポートが設けられており、
前記フィルタ部材が、目開き20~300μmのポリエステル製又はポリアミド製のメインメッシュと、その表裏両面に配された目開き100~4000μmのポリエチレン製のサブメッシュとからなり、
前記容器本体が、少なくともポリエチレン層を含む可撓性フィルムの間に、前記ポリエチレン層を対向させて、前記フィルタ部材を挟んで周縁部を熱融着してなり、
前記容器本体の周縁部に形成される熱融着部において、前記ポリエチレン製のサブメッシュが溶融して、前記メインメッシュの空隙部に侵入しつつ互いに融着されているともに、前記可撓性フィルムの前記ポリエチレン層と融着していることを特徴とするフィルタ付き細胞用バッグ。 - 前記熱融着部において、前記メインメッシュの端縁が、前記サブメッシュの端縁よりも容器内方に位置し、前記熱融着部の最外縁部では、前記可撓性フィルムの前記ポリエチレン層どうしが直接、又は前記サブメッシュを介して、これらが溶融して融着している請求項1に記載のフィルタ付き細胞用バッグ。
- 容器本体と注入出用ポートとを備え、前記容器本体の内部が、フィルタ部材によって区画されて、少なくとも一つの区画に注入出用ポートが設けられたフィルタ付き細胞用バッグの製造方法であって、
目開き20~300μmのポリエステル製又はポリアミド製のメインメッシュの表裏両面に、目開き100~4000μmのポリエチレン製のサブメッシュを配して前記フィルタ部材を用意し、
少なくともポリエチレン層を含む可撓性フィルムの間に、前記ポリエチレン層を対向させて、前記フィルタ部材を挟み、
これらの周縁部を熱融着することを特徴とするフィルタ付き細胞用バッグの製造方法。
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2020085301A1 (ja) * | 2018-10-23 | 2020-04-30 | 帝人株式会社 | ろ過用フィルター、フィルター付容器、及び細胞懸濁液中の異物除去方法 |
CN112996901A (zh) * | 2018-09-11 | 2021-06-18 | 日产化学株式会社 | 分离装置及使用该分离装置对分离对象物进行分离的方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20110189772A1 (en) * | 2008-05-26 | 2011-08-04 | Marc Benbunan | Bioreactor with dual compartment |
WO2011142667A1 (en) * | 2010-05-12 | 2011-11-17 | Xpand Biotechnology B.V. | Cell - culture - bag |
CN205710773U (zh) * | 2016-04-12 | 2016-11-23 | 福建三一造血技术有限公司 | 高效细胞培养袋 |
-
2016
- 2016-12-26 JP JP2016250528A patent/JP6803221B2/ja active Active
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Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20110189772A1 (en) * | 2008-05-26 | 2011-08-04 | Marc Benbunan | Bioreactor with dual compartment |
WO2011142667A1 (en) * | 2010-05-12 | 2011-11-17 | Xpand Biotechnology B.V. | Cell - culture - bag |
CN205710773U (zh) * | 2016-04-12 | 2016-11-23 | 福建三一造血技术有限公司 | 高效细胞培养袋 |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112996901A (zh) * | 2018-09-11 | 2021-06-18 | 日产化学株式会社 | 分离装置及使用该分离装置对分离对象物进行分离的方法 |
WO2020085301A1 (ja) * | 2018-10-23 | 2020-04-30 | 帝人株式会社 | ろ過用フィルター、フィルター付容器、及び細胞懸濁液中の異物除去方法 |
CN113164844A (zh) * | 2018-10-23 | 2021-07-23 | 帝人株式会社 | 过滤用过滤器、带过滤器的容器和细胞悬浮液中的异物去除方法 |
JPWO2020085301A1 (ja) * | 2018-10-23 | 2021-12-16 | 帝人株式会社 | ろ過用フィルター、フィルター付容器、及び細胞懸濁液中の異物除去方法 |
EP3871748A4 (en) * | 2018-10-23 | 2022-08-03 | Teijin Limited | FILTER FOR FILTERING, CONTAINER WITH THE FILTER AND METHOD FOR REMOVING FOREIGN SUBSTANCES IN A CELL SUSPENSION |
CN113164844B (zh) * | 2018-10-23 | 2022-11-22 | Jcr制药股份有限公司 | 过滤用过滤器、带过滤器的容器和细胞悬浮液中的异物去除方法 |
JP7291152B2 (ja) | 2018-10-23 | 2023-06-14 | Jcrファーマ株式会社 | ろ過用フィルター、フィルター付容器、及び細胞懸濁液中の異物除去方法 |
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