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WO2018151258A1 - 薬物送達用担体及び薬物送達システム - Google Patents

薬物送達用担体及び薬物送達システム Download PDF

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WO2018151258A1
WO2018151258A1 PCT/JP2018/005505 JP2018005505W WO2018151258A1 WO 2018151258 A1 WO2018151258 A1 WO 2018151258A1 JP 2018005505 W JP2018005505 W JP 2018005505W WO 2018151258 A1 WO2018151258 A1 WO 2018151258A1
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WO
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drug
drug delivery
formula
delivery system
bond
Prior art date
Application number
PCT/JP2018/005505
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English (en)
French (fr)
Inventor
西山　伸宏
宏泰 武元
高徳 稲葉
貴大 野本
誠 松井
敬士郎 友田
暁夢 劉
Original Assignee
国立大学法人東京工業大学
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Publication date
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    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents

Definitions

  • the present invention relates to a drug delivery carrier and a drug delivery system.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2017-029264 filed in Japan on February 20, 2017, the contents of which are incorporated herein by reference.
  • antimetabolites such as gemcitabine and doxyfluridine are mainly used as anticancer agents.
  • gemcitabine is treated as a first-line drug for pancreatic cancer.
  • these drugs have a molecular weight as low as 500 or less, they are rapidly eliminated from the blood due to excretion from the kidney or liver when administered to a patient, and the accumulation efficiency in the tumor tissue, which is an affected area, is low. There is a tendency.
  • Non-Patent Document 1 As a method for controlling the pharmacokinetics of a drug, for example, a method such as encapsulating a drug in a polymer micelle or liposome, or binding a drug to a polymer compound has been studied (for example, see Non-Patent Document 1). ).
  • encapsulating drugs in polymer micelles or liposomes is often applicable only to hydrophobic drugs with high encapsulation efficiency, and it may be difficult to apply to highly hydrophilic drugs such as gemcitabine.
  • the structure of the drug itself is modified in order to facilitate the binding of the drug to the polymer compound, or a chemical bond is used to efficiently release the drug in the affected area. Is being considered.
  • problems such as a decrease in the pharmacological activity of the drug may occur due to structural modification of the drug itself.
  • the present invention overcomes the problems of the technology for binding a drug to a polymer compound described above, and provides a drug delivery technology that can efficiently deliver a drug to tumor tissue without reducing the pharmacological activity of the drug.
  • the purpose is to provide.
  • the present invention includes the following aspects.
  • m and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • [In Formula (2), m and n represent the same values as m and n in Formula (1), respectively, and * represents a bond.
  • the drug delivery carrier according to [1], wherein the group capable of forming an acetal bond is a group represented by the following formula (3).
  • R 1 and R 2 each independently represents an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms, and * represents a bond. R 1 and R 2 may be linked to form a ring.
  • [3] The drug delivery carrier according to [1] or [2], wherein the biocompatible polymer is biodegradable.
  • [5] The drug delivery carrier according to any one of [1] to [4], wherein 5 to 500 mol of the group capable of forming an acetal bond is bonded to 1 mol of the biocompatible polymer.
  • the drug delivery carrier according to any one of [1] to [5] and the drug having a diol structure represented by the following formula (1) are bound by an acetal bond represented by the following formula (2):
  • Drug delivery system [In the formula (1), m and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond. ]
  • [In Formula (2), m and n represent the same values as m and n in Formula (1), respectively, and * represents a bond. ]
  • [7] The method according to [6], wherein the acetal bond is cleaved in an acidic environment, the diol structure represented by the formula (1) of the drug is regenerated, and the drug is released from the drug delivery system. Drug delivery system.
  • the present invention it is possible to provide a drug delivery technique capable of efficiently delivering a drug to a tumor tissue without reducing the pharmacological activity of the drug.
  • FIG. 10 is a graph showing the results of Experimental Example 4.
  • (A) And (b) is a graph which shows the result of Experimental example 5.
  • FIG. (A) And (b) is a graph which shows the result of Experimental example 6.
  • FIG. (A) And (b) is a graph which shows the result of Experimental example 6.
  • FIG. 10 is a graph showing the results of Experimental Example 7.
  • it is a graph which shows the time-dependent change of the body weight of the mouse
  • it is a graph which shows the measurement result of the total food intake of the mouse
  • (A) to (c) are representative photomicrographs showing the results of hematoxylin / eosin (HE) staining of the small intestine specimens of each group of mice in Experimental Example 8.
  • HE hematoxylin / eosin
  • the present invention provides a biocompatible polymer in which the diol structure of a drug having a diol structure represented by the following formula (1) is bonded to a group capable of forming an acetal bond represented by the following formula (2)
  • a drug delivery carrier comprising:
  • n and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • the drug delivery carrier of this embodiment can also form an acetal bond with the diol structure of a drug having a diol structure represented by the following formula (6).
  • the acetal bond represented by the following formula (7) Is formed.
  • n and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • the inventors focused on the fact that most drugs containing antimetabolites have a sugar skeleton and that many of the sugar skeletons have a diol structure, and this diol structure is used as a drug delivery carrier by acetal bonding.
  • the present invention was completed with the idea of combining drugs.
  • the drug bound to the drug delivery carrier of the present embodiment improves in blood retention and tumor accumulation with increasing molecular weight.
  • the acetal structure is cleaved in an acidic organelle environment having a pH of about 4.0 to 6.0, and the drug is released inside the cell.
  • the drug can exhibit its original pharmacological activity.
  • the low molecular weight drug means a drug having a molecular weight of about 1000 or less.
  • the drug bound to the drug delivery carrier of the present embodiment is released from the drug delivery carrier depending on the intracellular environment such as acidic conditions. For this reason, only the accumulation of the drug in the tumor tissue can be improved without inducing the accumulation of the drug in the normal tissue having a high transporter expression level. As a result, according to the drug delivery carrier of this embodiment, high drug efficacy and low side effects can be achieved.
  • examples of the group capable of forming an acetal bond with the diol structure of the drug include a group represented by the following formula (3).
  • R 1 and R 2 each independently represents an alkyl group having 1 to 3 carbon atoms, and * represents a bond. R 1 and R 2 may be linked to form a ring. ]
  • examples of the group represented by the above formula (3) include groups represented by the following formulas (8) to (10).
  • the drug having a diol structure represented by the above formula (1) or the above formula (6) is not particularly limited as long as it is a drug capable of forming an acetal bond with the group represented by the above formula (3),
  • examples include antimetabolites such as gemcitabine, doxyfluridine, cytarabine, fludarabine and pentostatin; antiviral drugs such as ganciclovir, idoxuridine, trifluridine, ribavirin and entecavir.
  • said antiviral agent has an anticancer effect when delivered to tumor tissue.
  • the biocompatible polymer means a polymer that does not easily exert a bad influence such as a strong inflammatory reaction when administered to a living body.
  • the biocompatible polymer is not particularly limited as long as the effect of the present invention is obtained, and examples thereof include polyethylene glycol (PEG), polyamino acid, polyacrylamide, polyether, polyester, polyurethane, polysaccharide, and copolymers thereof. It is done.
  • the biocompatible polymer may have any group introduced in part in the synthesis process. Examples of such a group include a part of a polymerization initiator.
  • the biocompatible polymer is preferably biodegradable.
  • Biodegradability means a property that can be absorbed or decomposed in vivo.
  • the biocompatible polymer that is biodegradable is not particularly limited as long as the effects of the present invention are obtained, and examples thereof include polyamino acids, polyesters, polynucleotides, polysaccharides, and the like.
  • biocompatible polymer being biodegradable means that at least a part of the biocompatible polymer is biodegradable.
  • biodegradable biocompatible polymers that can be used for the drug delivery carrier of the present embodiment include polyamino acids, polyesters, polynucleotides, polysaccharides, PEG, polyacrylamide, polyethers, polyesters, polyurethanes, Block copolymers with polysaccharides and the like can also be suitably used.
  • Conventional polymers sometimes have a problem of accumulation in a living body when administered to a living body.
  • a biodegradable polymer by using a biodegradable polymer, accumulation in the living body can be suppressed, and side effects can be reduced.
  • the drug delivery carrier of this embodiment preferably has a weight average molecular weight of 2,000 to 200,000, for example, 5,000 to 100,000, such as 10,000 to 50,000. There may be.
  • the drug delivery carrier is produced by combining the drug with the weight average molecular weight of the drug delivery carrier within the above range, the retention of the drug in the blood and the accumulation in the tumor tissue are appropriately improved, In addition, accumulation in normal tissues such as the liver can be prevented. As a result, the drug can be efficiently delivered to the tumor tissue.
  • the weight average molecular weight of the drug delivery carrier a value measured by size exclusion chromatography (SEC) analysis can be used. Specifically, after dissolving or dispersing a drug delivery carrier in a solvent, the drug delivery carrier is passed through a column using a filler having many pores, and the molecular weight is increased or decreased in the column. It is detected by using a differential refractometer, an ultraviolet-visible spectrophotometer, a viscometer, a light scattering detector or the like as a detector. SEC-dedicated devices are widely available on the market and are generally measured by standard polyethylene glycol conversion. The weight average molecular weight in this specification is measured by this standard polyethylene glycol conversion.
  • the drug delivery carrier of this embodiment it is preferable that 5 to 500 mol of the group capable of forming the acetal bond is bonded to 1 mol of the biocompatible polymer described above, for example, 12 to 250 mol. For example, it may be 25 to 125 mol.
  • the present invention provides a drug delivery system in which the above-described drug delivery carrier and a drug having a diol structure represented by the following formula (1) are bound by an acetal bond represented by the following formula (2). I will provide a.
  • n and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • the drug delivery system of the present embodiment is a drug delivery system in which the above-mentioned drug delivery carrier and a drug having a diol structure represented by the following formula (4) are bound by an acetal bond represented by the following formula (5). It may be.
  • the drug delivery system of the present embodiment stably holds a drug at pH 7.4 corresponding to pH in blood, and has a pH of about 4. corresponding to an intracellular acidic organelle environment. In the range of 0 to 6.0, the drug can be released efficiently.
  • the retention of the drug in the blood and the accumulation in the tumor tissue can be improved moderately, and the accumulation in the normal tissue such as the liver can be prevented.
  • the dose of the drug can be reduced, and furthermore, higher pharmacological activity can be exhibited than when the drug is administered with a carrier.
  • the toxicity of the drug can be reduced.
  • the drug having a diol structure represented by the formula (1) or the formula (6) can form an acetal bond with the group represented by the formula (3). If it is a drug, it will not specifically limit, The drug similar to what was mentioned above is mentioned.
  • the drug having the diol structure may be an antimetabolite.
  • Many antimetabolite drugs have a sugar skeleton and often have a diol structure. For this reason, it is easy to apply to the drug delivery system of this embodiment.
  • the acetal bond is cleaved in an acidic environment and the diol structure represented by the formula (1) or the formula (4) of the drug is regenerated.
  • the drug is released.
  • “In an acidic environment” means an intracellular acidic organelle environment, and is an environment having a pH of about 4.0 to 6.0.
  • the drug delivery system according to the present embodiment releases a drug when taken into a cell and placed in an acidic environment. At this time, since the original diol structure of the drug is regenerated, the drug can exhibit its original pharmacological activity.
  • the invention comprises a method of treating a disease comprising administering an effective amount of a drug delivery system to a patient in need of treatment, said drug delivery system comprising a biocompatible polymer,
  • a therapeutic method comprising a drug having a diol structure represented by the following formula (1), wherein the biocompatible polymer and the drug are bonded by an acetal bond represented by the following formula (2).
  • n and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • the disease includes cancer.
  • the biocompatible polymer and the drug having a diol structure represented by the formula (1) are the same as those described above.
  • the invention comprises a method of treating a disease comprising administering an effective amount of a drug delivery system to a patient in need of treatment, said drug delivery system comprising a biocompatible polymer,
  • a therapeutic method comprising a drug having a diol structure represented by the following formula (4), wherein the biocompatible polymer and the drug are bonded by an acetal bond represented by the following formula (5).
  • the disease includes cancer.
  • the biocompatible polymer and the drug having a diol structure represented by the formula (1) are the same as those described above.
  • the present invention is a drug delivery system for treatment of a disease, the drug delivery system comprising a biocompatible polymer and a drug having a diol structure represented by the following formula (1).
  • a drug delivery system is provided in which the biocompatible polymer and the drug are bound by an acetal bond represented by the following formula (2).
  • n and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • the disease includes cancer.
  • the biocompatible polymer and the drug having a diol structure represented by the formula (1) are the same as those described above.
  • the present invention is a drug delivery system for treatment of a disease, the drug delivery system comprising a biocompatible polymer and a drug having a diol structure represented by the following formula (4).
  • a drug delivery system is provided in which the biocompatible polymer and the drug are bound by an acetal bond represented by the following formula (5).
  • the disease includes cancer.
  • the biocompatible polymer and the drug having a diol structure represented by the formula (1) are the same as those described above.
  • the present invention is the use of a drug delivery system for producing a therapeutic agent for a disease, wherein the drug delivery system comprises a biocompatible polymer and a diol structure represented by the following formula (1): The biocompatible polymer and the drug are combined with an acetal bond represented by the following formula (2).
  • n and n each represent an integer of 0 or 1, and * represents a bond.
  • the disease includes cancer.
  • the biocompatible polymer and the drug having a diol structure represented by the formula (1) are the same as those described above.
  • the present invention is the use of a drug delivery system for producing a therapeutic agent for a disease, wherein the drug delivery system comprises a biocompatible polymer and a diol structure represented by the following formula (4): The biocompatible polymer and the drug are bound by an acetal bond represented by the following formula (5).
  • the disease includes cancer.
  • the biocompatible polymer and the drug having a diol structure represented by the formula (1) are the same as those described above.
  • MeO-PEG-poly ( ⁇ -benzyl L-aspartate) (MeO-PEG-PBLA), which is a diblock copolymer of PEG-polyamino acids, was synthesized. Specifically, first, 720 mg of BLA-N-carbohydrate (BLA-NCA) was dissolved in 10 mL of dimethylformamide (DMF). Subsequently, 600 mg of MeO-PEG-NH 2 dissolved in 40 mL of dichloromethane (DCM) was added as a polymerization initiator to the obtained solution, and the mixture was stirred at 35 ° C. for 2 days. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • BLA-NCA BLA-N-carbohydrate
  • DCM dichloromethane
  • reaction solution was added dropwise to an excess amount (about 30 times volume) of diethyl ether, and the precipitate was suction filtered and dried under reduced pressure to obtain PEG-PBLA as a white solid (1. 02g, 83.8%).
  • the resulting white solid was analyzed by 1 H NMR and gel filtration chromatography to confirm the chemical structure and molecular weight distribution of the product.
  • Mw weight average molecular weight
  • Mn number average molecular weight
  • the polymerization degree of PBLA calculated by 1 H NMR measurement was about 44.
  • MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetate), which is a drug delivery carrier represented by the following formula (11), was synthesized by utilizing an aminolysis reaction of the side chain of MeO-PEG-PBLA to the benzyl group. Specifically, first, 500 mg of PEG-PBLA was dissolved in 8 mL of N-methylpyrrolidone (NMP), and 50-fold molar amount of aminoacetaldehydrate dimethylacetal was transferred to another container with respect to the benzyl group of PEG-PBLA. It was. Subsequently, the aminoacetaldehydrate dimethylacetal solution was added dropwise to the PEG-PBLA solution and allowed to react overnight at room temperature. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • NMP N-methylpyrrolidone
  • MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal) has a dimethylylacetal group possessed by dimethylethylacetal and a diol group possessed by gemcitabine, and is represented by the following formula (13).
  • MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal)
  • gemcitabine hydrochloride relative to the dimethylacetal group of MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal)
  • MeO-PEG- as a reaction catalyst
  • a 1-fold molar amount of paratoluenesulfonic acid monohydrate with respect to the dimethylacetal group of PAsp (dimethylacetal) was dissolved in 10 mL of NMP and reacted at 50 ° C. overnight.
  • MeO-PEG-PAsp (dimethyl ocetal) is a drug delivery system represented by the following formula (13) by a transacetalization reaction between the dimethylacetal group possessed by dimethylacetal and the diol group possessed by gemcitabine. dimethyl (acetal-gemcitabine) was generated. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • reaction solution was dropped into an excess amount of an aqueous sodium hydrogen carbonate solution to neutralize paratoluenesulfonic acid monohydrate in the system.
  • unreacted gemcitabine hydrochloride in the aqueous solution was removed by ultrafiltration, and lyophilized to obtain a product, MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetate-gemcitabine) as a white yellow solid ( 187 mg, 87.4%).
  • the amount of gemcitabine introduced into the product was confirmed by 1 H NMR measurement and calculated to be about 10% by mass.
  • MeO-PEG-PAsp dimethylacetal
  • dimethylacetal which is the drug delivery carrier synthesized in Experimental Example 1
  • the diol group of doxyfluridine the following formula ( The drug delivery system shown in 15), MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetic-doxifluridine), was obtained.
  • MeO-PEG-PAsp dimethylacetal
  • MeO-PEG-PAsp dimethylethyl
  • a 1-fold molar amount of paratoluenesulfonic acid monohydrate was dissolved in 4 mL of NMP and reacted at 50 ° C. overnight. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • reaction solution was dropped into an excess amount of an aqueous sodium hydrogen carbonate solution to neutralize paratoluenesulfonic acid monohydrate in the system.
  • unreacted doxyfluridine in the aqueous solution was removed by ultrafiltration, and lyophilized to obtain MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetate-doxifluridine) as a white solid (20.5 mg, 98.4%).
  • the amount of doxyfluridine introduced into the product was confirmed by 1 H NMR measurement and calculated to be about 4% by mass.
  • Example 4 (Drug release test) A drug release test was performed using the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2. Specifically, the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 was added to a buffer solution adjusted to pH 7.4 corresponding to blood pH, pH 5.5 corresponding to intracellular acidic organelle environment, and pH 4.2. And incubated at 37 ° C. Subsequently, sampling was performed over time, and gemcitabine released by high performance liquid chromatography (HPLC) was quantified.
  • HPLC high performance liquid chromatography
  • FIG. 1 is a graph showing the results of measuring the amount of gemcitabine released. As a result, it was revealed that the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 is stable at pH 7.4 corresponding to the pH in blood. On the other hand, it was revealed that gemcitabine was efficiently released from the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 at pH 5.5 and pH 4.2 corresponding to the intracellular acidic organelle environment.
  • FIG. 2A is a graph showing the measurement results of the tumor growth rate.
  • “*” indicates that there is a significant difference when the correlation coefficient (p value) is less than 0.05
  • “**” indicates that there is a significant difference when the p value is less than 0.005.
  • "***” indicates that there is a significant difference when the p value is less than 0.001
  • “***” indicates that there is a significant difference when the p value is less than 0.0001.
  • FIG.2 (b) is a graph which shows the measurement result of a weight change rate. In FIG. 2 (a) and (b), the arrow shows the time when the drug was administered.
  • gemcitabine hydrochloride and the drug delivery system were dissolved in 10 mM phosphate buffer so as to be 1 mg / mL and 10 mg / mL, respectively.
  • 5 ⁇ L of Iodine-125 (Perkin Elmer) and 100 ⁇ L of chloramine T aqueous solution (10 mg / mL) were added to 100 ⁇ L of gemcitabine aqueous solution or 100 ⁇ L of drug delivery system aqueous solution and allowed to stand at room temperature for reaction.
  • the reaction time of gemcitabine was 30 minutes, and the reaction time of the drug delivery system was 1 hour.
  • reaction was terminated by adding 100 ⁇ L of a sodium disulfite aqueous solution (20 mg / mL) to each reaction solution.
  • a sodium disulfite aqueous solution (20 mg / mL)
  • 125 I-labeled gemcitabine was purified by an anion exchange column
  • 125 I-labeled drug delivery system was purified by a PD-10 column (manufactured by GE Healthcare).
  • 125 I-labeled gemcitabine and a drug delivery system were each administered to a tumor-bearing model mouse by tail vein injection.
  • the dose of 125 I-labeled gemcitabine was 80 mg / kg, which is the amount used for treatment.
  • the dose of the 125 I-labeled drug delivery system was 20 mg / kg in terms of gemcitabine.
  • each mouse was killed 30 minutes, 2 hours, and 24 hours after administration of the drug.
  • blood and each organ (heart, lung, liver, kidney, spleen, pancreas, stomach, intestine, tumor) were collected.
  • the radioactivity of the collected blood was quantified with a gamma counter to evaluate the retention of gemcitabine in the blood.
  • the radioactivity of each collected organ was quantified with a gamma counter, and the amount of gemcitabine accumulated in each organ was evaluated.
  • FIG. 3 (a) is a graph showing the measurement results of the remaining amount of gemcitabine in the blood.
  • 95% disappeared from the blood in 2 hours after the administration and only 5% remained whereas in the administration of the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2, it was about 4 times. It was revealed that 20% of gemcitabine remained in the blood.
  • FIG. 3 (b) is a graph showing the measurement results of the amount of gemcitabine tumor tissue accumulated. As a result, it was revealed that about 3 times as much gemcitabine was accumulated in the tumor tissue as compared with the administration of gemcitabine by administration of the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 at 2 hours after administration. On the other hand, in the administration of the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2, no noticeable accumulation of gemcitabine in the liver or the like was confirmed.
  • FIG. 4 (a) is a graph showing the results of measuring the amount of gemcitabine accumulated in each organ when gemcitabine is administered alone.
  • FIG.4 (b) is a graph which shows the result of having measured the accumulation amount to each organ of the gemcitabine administered with the form of the drug delivery system.
  • Example 7 (Toxicity test 1) 4-week-old BALB / c mice were bred for 1 week, then gemcitabine and the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 were administered, and toxicity was evaluated.
  • the dose of gemcitabine was 80 mg / kg.
  • the dose of the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 was 20 mg / kg in terms of gemcitabine.
  • Each drug was administered by daily tail vein administration once a day after the start of the experiment, and changes in the body weight of the mice were observed. Weight loss is one indicator of toxicity.
  • FIG. 5 is a graph showing the results of measuring the weight change rate of each group of mice.
  • the arrow indicates the time when the drug was administered.
  • the weights of all the mice (3 animals) were decreased, and all mice died on the third day from the start of the experiment.
  • weight loss was not confirmed, and no dead mice were confirmed.
  • Example 8 (Toxicity test 2) 4-week-old BALB / c mice were bred for 1 week, then gemcitabine and the drug delivery system synthesized in Experimental Example 2 were administered, and toxicity was evaluated.
  • the concentration of the gemcitabine aqueous solution was 2 mg / mL.
  • the concentration of the aqueous solution in the drug delivery system was 20 mg / mL.
  • the dose of drug in each group was 200 ⁇ L per dose. As a result, the dose per administration was 20 mg / kg body weight in terms of gemcitabine in both the gemcitabine administration group and the drug delivery system administration group.
  • mouth which administered physiological saline was made into the control group.
  • mice After the start of the experiment, the body weight was measured with an electronic balance every time the drug was administered. In addition, the total food intake of mice was measured. Subsequently, the small intestine and spleen were collected on the 3rd day, starting on the 0th day. The collected small intestine was prepared as a specimen by the paraffin embedding method and observed with a microscope after staining with hematoxylin / eosin (HE). In addition, the mass of the spleen was measured.
  • HE hematoxylin / eosin
  • FIG. 6 is a graph showing changes in body weight of mice in each group over time. Statistical significance was calculated by one-way ANOVA (Tukey's multiple comparisons test). As a result, weight loss was not observed in the mice of the control group and the drug delivery system administration group. In contrast, significant weight loss was observed in the mice in the gemcitabine administration group.
  • FIG. 7 is a graph showing the measurement results of the total food intake of mice in each group. Statistical significance was calculated by one-way ANOVA (Tukey's multiple comparisons test). As a result, it was clarified that the total food intake of the mice in the gemcitabine administration group was significantly reduced as compared with the mice in the other groups.
  • FIGS. 8A to 8C are representative photomicrographs showing the results of staining the small intestine of each group of mice with hematoxylin / eosin (HE).
  • 8 (a) is a histological image of the small intestine of the control group
  • FIG. 8 (b) is a histological image of the small intestine of the mouse of the drug delivery system administration group
  • FIG. 8 (c) is a mouse of the gemcitabine administration group. It is a histological image of the small intestine.
  • the scale bar indicates 100 ⁇ m.
  • the part enclosed with a square shows the intestinal crypt of the villi bottom.
  • the intestinal crypt is known as the intestinal gland that contributes to the secretion of various enzymes.
  • FIG. 9 is a graph showing the results of measuring villi length in the small intestine of each group of mice. Statistical significance was calculated by one-way ANOVA (Tukey's multiple comparisons test). As a result, it was revealed that the villi length was significantly decreased in the small intestine of the mice in the gemcitabine administration group compared with the mice in the other groups.
  • mice in the gemcitabine administration group were damaged in the small intestine.
  • the digestive organs especially in the small intestine
  • FIG. 10 is a graph showing the measurement results of the spleen mass of each group of mice. Statistical significance was calculated by one-way ANOVA (Tukey's multiple comparisons test).
  • mice of the gemcitabine administration group had a significantly reduced spleen mass compared to the mice of the other groups.
  • the mass of the spleen is one index for evaluating immunotoxicity. Therefore, this result indicates that immunotoxicity is observed in mice in the gemcitabine administration group.
  • the concentration of the gemcitabine aqueous solution was 2 mg / mL.
  • the concentration of the aqueous solution in the drug delivery system was 20 mg / mL.
  • the dose of drug in each group was 200 ⁇ L per dose. As a result, the dose per administration was 20 mg / kg body weight in terms of gemcitabine in both the gemcitabine administration group and the drug delivery system administration group.
  • mouth which administered physiological saline was made into the control group.
  • the blood was collected on the third day, starting from the experiment start day.
  • the concentration of the gemcitabine aqueous solution was 2 mg / mL.
  • the concentration of the aqueous solution in the drug delivery system was 20 mg / mL.
  • the dose of drug in each group was 200 ⁇ L per dose. As a result, the dose per administration was 20 mg / kg body weight in terms of gemcitabine in both the gemcitabine administration group and the drug delivery system administration group.
  • mouth which administered physiological saline was made into the control group.
  • MeO-PEG-PAsp is a drug delivery system represented by the above formula (13) by a transacetalization reaction between a dimethylacetal group of MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal) and a diol group of gemcitabine. dimethyl (acetal-gemcitabine) was generated. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • reaction solution was added dropwise to 900 mL of a 0.1 M aqueous sodium hydrogen carbonate solution under ice cooling to neutralize paratoluenesulfonic acid monohydrate in the system.
  • unreacted gemcitabine hydrochloride in the aqueous solution was removed by ultrafiltration, and lyophilized to obtain a product, MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetate-gemcitabine) as a white yellow solid ( 1400 mg, 55.3%).
  • the amount of gemcitabine introduced into the product was confirmed by 1 H NMR measurement and calculated to be about 27% by mass.
  • MeO-PEG-poly ( ⁇ -benzyl L-aspartate) (MeO-PEG-PBLA), which is a diblock copolymer of PEG-polyamino acids, was synthesized. Specifically, first, 1500 mg of BLA-N-carbohydrate (BLA-NCA) was dissolved in 10 mL of dimethylformamide (DMF). Subsequently, 600 mg of MeO-PEG-NH 2 dissolved in 40 mL of dichloromethane (DCM) was added as a polymerization initiator to the obtained solution, and the mixture was stirred at 35 ° C. for 3 days. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • BLA-NCA BLA-N-carbohydrate
  • DCM dichloromethane
  • reaction solution was added dropwise to an excess amount (about 30 times volume) of diethyl ether, and the precipitate was suction filtered and dried under reduced pressure to obtain PEG-PBLA as a white solid (1. 42g, 78.8%).
  • the resulting white solid was analyzed by 1 H NMR and gel filtration chromatography to confirm the chemical structure and molecular weight distribution of the product.
  • Mw weight average molecular weight
  • Mn number average molecular weight
  • the polymerization degree of PBLA calculated by 1 H NMR measurement was about 98.
  • MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetal), which is a drug delivery carrier represented by the above formula (11), was utilized in Experimental Example 1 by utilizing an aminolysis reaction to the benzyl group of the side chain of MeO-PEG-PBLA. It was synthesized by the same method. Specifically, first, 200 mg of PEG-PBLA was dissolved in 4 mL of N-methylpyrrolidone (NMP), and 50-fold molar amount of aminoacetaldehydrate dimethylacetal was transferred to another container with respect to the benzyl group of PEG-PBLA. It was. Subsequently, the aminoacetaldehydrate dimethylacetal solution was added dropwise to the PEG-PBLA solution and allowed to react overnight at room temperature. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • NMP N-methylpyrrolidone
  • MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal)
  • 10 times molar amount of gemcitabine hydrochloride with respect to the dimethylacetal group of MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal)
  • MeO-PEG- as a reaction catalyst
  • a 1-fold molar amount of paratoluenesulfonic acid monohydrate with respect to the dimethylacetal group of PAsp (dimethylacetal) was dissolved in 8 mL of DMF and reacted at 50 ° C. overnight.
  • MeO-PEG-PAsp (dimethyl) is a drug delivery system represented by formula (13) by transacetalization reaction between the dimethylacetal group of MeO-PEG-PAsp (dimethylacetal) and the diol group of gemcitabine. acetal-gemcitabine) was generated. All the above operations were performed in an argon atmosphere.
  • reaction solution was dropped into an excess amount of an aqueous sodium hydrogen carbonate solution to neutralize paratoluenesulfonic acid monohydrate in the system.
  • unreacted gemcitabine hydrochloride in the aqueous solution was removed by ultrafiltration, and lyophilized to obtain a product, MeO-PEG-PAsp (dimethyl acetate-gemcitabine) as a white yellow solid ( 82 mg, 72.5%).
  • the amount of gemcitabine introduced into the product was confirmed by 1 H NMR measurement and calculated to be about 14% by mass.
  • the present invention it is possible to provide a drug delivery technique capable of efficiently delivering a drug to a tumor tissue without reducing the pharmacological activity of the drug.

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Abstract

下記式（１）（式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。）で表わされるジオール構造を有する薬物の前記ジオール構造と下記式（２）（式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。）で表わされるアセタール結合を形成し得る基が結合した、生体適合性ポリマーからなる、薬物送達用担体。

Description

薬物送達用担体及び薬物送達システム
　本発明は、薬物送達用担体及び薬物送達システムに関する。本願は、２０１７年２月２０日に、日本に出願された特願２０１７－０２９２６４号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　例えば、ゲムシタビン、ドキシフルリジン等の代謝拮抗剤は、主に制癌剤として利用されている。特に、ゲムシタビンは膵臓癌の第一選択薬として取り扱われている。しかしながら、これらの薬物は分子量が５００以下と小さいこと等から、患者に投与した場合に腎臓や肝臓からの排泄により血液中から速やかに消失してしまい、患部である腫瘍組織への集積効率が低い傾向にある。
　従来、薬物の体内動態を制御する手法として、例えば、高分子ミセルやリポソームへの薬物の内包、高分子化合物への薬物の結合等の手法が検討されてきた（例えば、非特許文献１を参照）。
Knop K., et al., Poly(ethylene glycol) in drug delivery: pros and cons as well as potential alterations.,Angew. Chem. Int. Ed., 49, 6288-6208, 2010.
　しかしながら、高分子ミセルやリポソームへの薬物の内包は、内包効率が高い疎水性の薬物にしか適用できない場合が多く、例えばゲムシタビン等の親水性の高い薬物への適用は困難な場合がある。
　また、高分子ミセルやリポソームへの薬物の内包により、腎臓からの薬物の排泄を低減することができるものの、薬物を内包した高分子ミセルやリポソームが、肝臓等の正常組織に集積することが問題となる場合がある。
　一方、高分子化合物への薬物の結合においては、高分子化合物への薬物の結合を容易にするために薬物自体の構造を改変することや、患部で効率的に薬物を放出するための化学結合が検討されている。しかしながら、薬物自体の構造改変等により、薬物の薬理活性が低下してしまう等の問題が生じる場合がある。
　そこで、本発明は、上述した高分子化合物への薬物の結合技術の問題点を克服し、薬物の薬理活性を低下させることなく、効率よく腫瘍組織に薬物を送達することができる薬物送達技術を提供することを目的とする。
　本発明は、以下の態様を含む。
［１］下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物の前記ジオール構造と下記式（２）で表わされるアセタール結合を形成し得る基が結合した、生体適合性ポリマーからなる、薬物送達用担体。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
［２］前記アセタール結合を形成し得る基が下記式（３）で表わされる基である、［１］に記載の薬物送達用担体。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
 ［式（３）中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立に炭素数１～３のアルキル基を表し、＊は結合手を表す。Ｒ１及びＲ２は連結して環を形成していてもよい。］
［３］前記生体適合性ポリマーが生体分解性である、［１］又は［２］に記載の薬物送達用担体。
［４］重量平均分子量が２，０００～２００，０００である、［１］～［３］のいずれかに記載の薬物送達用担体。
［５］前記生体適合性ポリマー１モルあたり、前記アセタール結合を形成し得る基が５～５００モル結合した、［１］～［４］のいずれかに記載の薬物送達用担体。
［６］［１］～［５］のいずれかに記載の薬物送達用担体と、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物とが、下記式（２）で表わされるアセタール結合で結合した、薬物送達システム。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
［７］酸性環境下で前記アセタール結合が切断されるとともに前記薬物の前記式（１）で表わされるジオール構造が再生され、前記薬物送達システムから前記薬物が放出される、［６］に記載の薬物送達システム。
［８］［１］～［５］のいずれかに記載の薬物送達用担体と、下記式（４）で表わされるジオール構造を有する薬物とが、下記式（５）で表わされるアセタール結合で結合した、薬物送達システム。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
 ［式（４）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
 ［式（５）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（４）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
［９］酸性環境下で前記アセタール結合が切断されるとともに前記薬物の前記式（４）で表わされるジオール構造が再生され、前記薬物送達システムから前記薬物が放出される、［８］に記載の薬物送達システム。
［１０］ジオール構造を有する前記薬物が代謝拮抗剤である、［６］～［９］のいずれかに記載の薬物送達システム。
　本発明によれば、薬物の薬理活性を低下させることなく、効率よく腫瘍組織に薬物を送達することができる薬物送達技術を提供することができる。
実験例４の結果を示すグラフである。 （ａ）及び（ｂ）は、実験例５の結果を示すグラフである。 （ａ）及び（ｂ）は、実験例６の結果を示すグラフである。 （ａ）及び（ｂ）は、実験例６の結果を示すグラフである。 実験例７の結果を示すグラフである。 実験例８において、各群のマウスの体重の経時変化を示すグラフである。 実験例８において、各群のマウスの総摂食量の測定結果を示すグラフである。 （ａ）～（ｃ）は、実験例８において、各群のマウスの小腸の標本をヘマトキシリン／エオジン（ＨＥ）染色した結果を示す代表的な顕微鏡写真である。 実験例８において、各群のマウスの小腸における絨毛長を測定した結果を示すグラフである。 実験例８において、各群のマウスの脾臓の質量の測定結果を示すグラフである。
［薬物送達用担体］
　１実施形態において、本発明は、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物の前記ジオール構造と下記式（２）で表わされるアセタール結合を形成し得る基が結合した、生体適合性ポリマーからなる、薬物送達用担体を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000015
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000016
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態の薬物送達用担体は、下記式（６）で表わされるジオール構造を有する薬物の前記ジオール構造ともアセタール結合を形成することができ、その場合、下記式（７）で表わされるアセタール結合が形成される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000017
 ［式（６）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000018
 ［式（７）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（６）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　発明者らは、代謝拮抗剤を含む薬物の多くが糖骨格を有すること、及び糖骨格の多くがジオール構造を有することに着目し、このジオール構造を利用してアセタール結合により薬物送達用担体に薬物を結合することに着想し本発明を完成させた。
　実施例において後述するように、本実施形態の薬物送達用担体に結合した薬物は、分子量増大に伴って血中滞留性及び腫瘍集積性が向上する。
　更に、患部である腫瘍組織内の細胞に取り込まれた後は、ｐＨ約４．０～６．０の酸性オルガネラ環境でアセタール構造が切断され、薬物が細胞内で放出される。この時、薬物の本来のジオール構造が再生されるため、薬物は本来の薬理活性を発揮することができる。
　ところで、低分子の薬物は、その薬物に特異的なトランスポーター等を介して細胞へ取り込まれることがあることが知られている。このため、そのような低分子の薬物は、その薬物に特異的なトランスポーターの発現量が高い正常な臓器に集積することが懸念される。例えば、ゲムシタビンは、胃腸に発現量が高いヌクレオシドトランスポーターに取り込まれやすい傾向がある。このため、例えば、ゲムシタビンは、消化器官に対する毒性を示す場合があり、食欲減衰や、これに起因する体重減少を引き起こす場合がある。なお、本明細書において、低分子の薬物とは分子量が約１０００以下である薬物を意味する。
　これに対し、本実施形態の薬物送達用担体に結合させた薬物は、酸性条件等の細胞内環境に依存して薬物送達用担体から放出される。このため、トランスポーターの発現量が高い正常組織への薬物の集積を誘導することなく、腫瘍組織への薬物の集積のみを向上させることができる。この結果、本実施形態の薬物送達用担体によれば、高い薬効と低い副作用を達成することができる。
　本実施形態の薬物送達用担体において、薬物のジオール構造とアセタール結合を形成し得る基としては、下記式（３）で表わされる基が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000019
 ［式（３）中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立に炭素数１～３のアルキル基を表し、＊は結合手を表す。Ｒ１及びＲ２は連結して環を形成していてもよい。］
　上記式（３）で表される基としては、より具体的には、下記式（８）～（１０）で表される基が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000020
 ［式（８）中、ｚ及びｗはそれぞれ１～３の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000021
 ［式（９）中、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000022
 ［式（１０）中、＊は結合手を表す。］
　上記式（１）又は上記式（６）で表わされるジオール構造を有する薬物としては、上記式（３）で表される基とアセタール結合を形成することができる薬物であれば特に限定されず、例えば、ゲムシタビン、ドキシフルリジン、シタラビン、フルダラビン、ペントスタチン等の代謝拮抗剤；ガンシクロビル、イドクスウリジン、トリフルリジン、リバビリン、エンテカビル等の抗ウイルス薬等が挙げられる。なお、上記の抗ウイルス薬は、腫瘍組織に送達した場合には制癌効果を奏するものである。
　本実施形態の薬物送達用担体において、生体適合性ポリマーとは、生体に投与した場合に、強い炎症反応等の悪影響を及ぼしにくいポリマーを意味する。
　生体適合性ポリマーとしては、本発明の効果が得られる限り特に制限されず、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリアミノ酸、ポリアクリルアミド、ポリエーテル、ポリエステル、ポリウレタン、多糖類、これらのコポリマー等が挙げられる。生体適合性ポリマーは、一部にその合成過程で導入された任意の基を有していてもよい。このような基としては、例えば重合開始剤の一部等が挙げられる。
　本実施形態の薬物送達用担体において、生体適合性ポリマーは生体分解性であることが好ましい。
　生体分解性とは、生体内で吸収又は分解され得る性質を意味する。生体分解性である生体適合性ポリマーとしては、本発明の効果が得られる限り特に制限されず、例えば、ポリアミノ酸、ポリエステル、ポリヌクレオチド、多糖類等が挙げられる。
　本明細書において、生体適合性ポリマーが生体分解性であるとは、生体適合性ポリマーの少なくとも一部が生体分解性であることを意味する。したがって、本実施形態の薬物送達用担体に用いることができる生体分解性の生体適合性ポリマーとしては、ポリアミノ酸、ポリエステル、ポリヌクレオチド、多糖類と、ＰＥＧ、ポリアクリルアミド、ポリエーテル、ポリエステル、ポリウレタン、多糖類等とのブロックコポリマー等も好適に用いることができる。
　従来のポリマーは生体に投与した場合に生体内に蓄積することが問題となる場合があった。これに対し、生体分解性であるポリマーを用いることにより、生体内への蓄積を抑制することができ、副作用を低減させることができる。
　本実施形態の薬物送達用担体は、重量平均分子量が２，０００～２００，０００であることが好ましく、例えば５，０００～１００，０００であってもよく、例えば１０，０００～５０，０００であってもよい。
　薬物送達用担体の重量平均分子量が上記の範囲であることにより、薬物を結合させて薬物送達システムを製造した場合に、薬物の血中滞留性、腫瘍組織への集積性を適度に向上させ、また、肝臓等の正常組織への集積を惹起しないことができる。この結果、薬物を効率よく腫瘍組織に送達することが可能になる。
　ここで、薬物送達用担体の重量平均分子量としては、サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）解析により測定した値を用いることができる。具体的には、薬物送達用担体を溶媒に溶解又は分散させた後、細孔（ポア）が数多く存在する充てん剤を用いたカラム内に移動相溶液と共に通液し、カラム内で分子量の大小によって分離させ、それを示差屈折率計や紫外可視分光光度計、粘度計、光散乱検出器等を検出器として用いて検出する。ＳＥＣ専用装置が広く市販されており、標準ポリエチレングリコール換算によって測定することが一般的である。本明細書における重量平均分子量は、この標準ポリエチレングリコール換算によって測定されたものである。
　本実施形態の薬物送達用担体は、上述した前記生体適合性ポリマー１モルあたり、上述したアセタール結合を形成し得る基が５～５００モル結合していることが好ましく、例えば１２～２５０モルであってもよく、例えば２５～１２５モルであってもよい。
　アセタール結合を形成し得る基の含有量が上記の範囲であることにより、薬物を適切な量結合させることができ、本発明の効果が得られやすくなる。
［薬物送達システム］
　１実施形態において、本発明は、上述した薬物送達用担体と、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物とが、下記式（２）で表わされるアセタール結合で結合した、薬物送達システムを提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000023
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000024
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態の薬物送達システムは、上述した薬物送達用担体と、下記式（４）で表わされるジオール構造を有する薬物とが、下記式（５）で表わされるアセタール結合で結合した、薬物送達システムであってもよい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000025
 ［式（４）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000026
 ［式（５）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（４）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　実施例において後述するように、本実施形態の薬物送達システムは、血液中ｐＨに相当するｐＨ７．４においては、薬物を安定に保持しており、細胞内酸性オルガネラ環境に相当するｐＨ約４．０～６．０においては、効率的に薬物を放出することができる。
　また、薬物の血中滞留性、腫瘍組織への集積性を適度に向上させ、また、肝臓等の正常組織への集積を惹起しないことができる。また、薬物を単体で投与する場合と比較して、薬物の投与量を低減させることができ、更に薬物を担体で投与する場合よりも高い薬理活性を発揮することができる。また、薬物の毒性を低減することができる。
　本実施形態の薬物送達システムにおいて、上記式（１）又は上記式（６）で表わされるジオール構造を有する薬物としては、上記式（３）で表される基とアセタール結合を形成することができる薬物であれば特に限定されず、上述したものと同様の薬物が挙げられる。
　上記のジオール構造を有する薬物は代謝拮抗剤であってもよい。代謝拮抗剤には糖骨格を有する薬物が多く、ジオール構造を有している場合が多い。このため、本実施形態の薬物送達システムに適用しやすい。
　本実施形態の薬物送達システムは、酸性環境下で前記アセタール結合が切断されるとともに前記薬物の上記式（１）又は上記式（４）で表わされるジオール構造が再生され、前記薬物送達システムから前記薬物が放出されるものであることが好ましい。
　酸性環境下とは、細胞内酸性オルガネラ環境を意味し、ｐＨ約４．０～６．０の環境である。上述したように、本実施形態の薬物送達システムは、細胞内に取り込まれ、酸性環境下におかれると、薬物を放出する。この時、薬物の本来のジオール構造が再生されるため、薬物は本来の薬理活性を発揮することができる。
　従来、高分子化合物への薬物の結合を容易にするために薬物自体の構造を改変することが試みられてきたが、薬物自体の構造を改変することによる薬物の薬理活性の低下が問題となる場合があった。これに対し、本実施形態の薬物送達システムはこのような問題を克服することができる。
［その他の実施形態］
　１実施形態において、本発明は、薬物送達システムの有効量を、治療を必要とする患者に投与することを含む、疾患の治療方法であって、前記薬物送達システムは、生体適合性ポリマーと、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物とを含み、前記生体適合性ポリマーと前記薬物とが下記式（２）で表わされるアセタール結合で結合したものである、治療方法を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000027
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000028
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態において、疾患としては癌が挙げられる。また、生体適合性ポリマー、式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物は、上述したものと同様である。
　１実施形態において、本発明は、薬物送達システムの有効量を、治療を必要とする患者に投与することを含む、疾患の治療方法であって、前記薬物送達システムは、生体適合性ポリマーと、下記式（４）で表わされるジオール構造を有する薬物とを含み、前記生体適合性ポリマーと前記薬物とが下記式（５）で表わされるアセタール結合で結合したものである、治療方法を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000029
 ［式（４）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000030
 ［式（５）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（４）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態において、疾患としては癌が挙げられる。また、生体適合性ポリマー、式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物は、上述したものと同様である。
　１実施形態において、本発明は、疾患の治療のための薬物送達システムであって、前記薬物送達システムは、生体適合性ポリマーと、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物とを含み、前記生体適合性ポリマーと前記薬物とが下記式（２）で表わされるアセタール結合で結合したものである、薬物送達システムを提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000031
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000032
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態において、疾患としては癌が挙げられる。また、生体適合性ポリマー、式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物は、上述したものと同様である。
　１実施形態において、本発明は、疾患の治療のための薬物送達システムであって、前記薬物送達システムは、生体適合性ポリマーと、下記式（４）で表わされるジオール構造を有する薬物とを含み、前記生体適合性ポリマーと前記薬物とが下記式（５）で表わされるアセタール結合で結合したものである、薬物送達システムを提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000033
 ［式（４）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000034
 ［式（５）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（４）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態において、疾患としては癌が挙げられる。また、生体適合性ポリマー、式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物は、上述したものと同様である。
　１実施形態において、本発明は、疾患の治療薬を製造するための薬物送達システムの使用であって、前記薬物送達システムは、生体適合性ポリマーと、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物とを含み、前記生体適合性ポリマーと前記薬物とが下記式（２）で表わされるアセタール結合で結合したものである、使用を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000035
 ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000036
 ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態において、疾患としては癌が挙げられる。また、生体適合性ポリマー、式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物は、上述したものと同様である。
　１実施形態において、本発明は、疾患の治療薬を製造するための薬物送達システムの使用であって、前記薬物送達システムは、生体適合性ポリマーと、下記式（４）で表わされるジオール構造を有する薬物とを含み、前記生体適合性ポリマーと前記薬物とが下記式（５）で表わされるアセタール結合で結合したものである、使用を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000037
 ［式（４）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000038
 ［式（５）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（４）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
　本実施形態において、疾患としては癌が挙げられる。また、生体適合性ポリマー、式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物は、上述したものと同様である。
　次に実験例を示して本発明を更に詳細に説明するが、本発明は以下の実験例に限定されるものではない。
［実験例１］
（薬物送達用担体の合成１）
　下記スキーム（Ｉ）にしたがって、薬物送達用担体を合成した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000039
《ＰＥＧ－ポリアミノ酸のジブロックコポリマーの合成》
　まず、ＰＥＧ－ポリアミノ酸のジブロックコポリマーである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐｏｌｙ（β－ｂｅｎｚｙｌ　Ｌ－ａｓｐａｒｔａｔｅ）（ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡ）を合成した。具体的には、まず、７２０ｍｇのＢＬＡ－Ｎ－ｃａｒｂｏｘｙ　ａｎｈｙｄｒｉｄｅ（ＢＬＡ－ＮＣＡ）を１０ｍＬのジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）に溶解した。続いて、得られた溶液に、４０ｍＬのジクロロメタン（ＤＣＭ）に溶解した６００ｍｇのＭｅＯ－ＰＥＧ－ＮＨ２を重合開始剤として加え、３５℃で２日間攪拌した。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量（３０倍容量程度）のジエチルエーテルに滴下し、沈殿物を吸引ろ過後、減圧乾燥することにより、生成物であるＰＥＧ－ＰＢＬＡを白色固体として得た（１．０２ｇ、８３．８％）。
　得られた白色固体は１Ｈ　ＮＭＲ及びゲルろ過クロマトグラフィーにより解析し、生成物の化学構造及び分子量分布を確認した。ＰＥＧスタンダードの検量線を用いてゲルろ過クロマトグラフィーにより解析したところ、Ｍｗ（重量平均分子量）／Ｍｎ（数平均分子量）は１．１５であった。また、１Ｈ　ＮＭＲ測定により算出したＰＢＬＡの重合度は約４４であった。
《薬物送達用担体の合成》
　続いて、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡの側鎖のベンジル基へのアミノリシス反応を利用して、下記式（１１）に示す薬物送達用担体である、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）を合成した。具体的には、まず、５００ｍｇのＰＥＧ－ＰＢＬＡを８ｍＬのＮ－メチルピロリドン（ＮＭＰ）中に溶解させ、別容器にＰＥＧ－ＰＢＬＡのベンジル基に対して５０倍モル量のＡｍｉｎｏａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ　ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌを移し取った。続いて、Ａｍｉｎｏａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ　ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ溶液をＰＥＧ－ＰＢＬＡ溶液に滴下し、室温で一晩反応させた。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量（３０倍容量程度）のジエチルエーテルに滴下し、沈殿物を吸引ろ過後、減圧乾燥することにより、生成物であるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）を白色固体として得た（４５７ｍｇ、９２．３％）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000040
 ［式（１１）中、ｐ及びｑはそれぞれ独立に１０～１０００の整数である。］
　１Ｈ　ＮＭＲ解析により、合成したＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）の構造を確認した結果、ｐは約２２７に対し、ｑは約４４であることが確認された。
［実験例２］
（薬物送達システムの合成１）
　下記スキーム（ＩＩ）にしたがって、実験例１で合成した薬物送達用担体に、アセタール結合によりジオール構造を有する薬物を結合させ、薬物送達システムを合成した。薬物としては、下記式（１２）に化学式を示すゲムシタビンを使用した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000041
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000042
　まず、実験例１で合成した薬物送達用担体である、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）が有するｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基とゲムシタビンが有するジオール基とのトランスアセタール化反応により、下記式（１３）に示す薬物送達システムである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）を得た。
　具体的には、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）２００ｍｇと、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１０倍モル量のゲムシタビン塩酸塩と、反応触媒としてＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１倍モル量のパラトルエンスルホン酸一水和物とを、１０ｍＬのＮＭＰに溶解し、５０℃で一晩反応させた。
　この結果、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）が有するｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基とゲムシタビンが有するジオール基とのトランスアセタール化反応により、下記式（１３）に示す薬物送達システムである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）が生成された。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量の炭酸水素ナトリウム水溶液に滴下し、系内のパラトルエンスルホン酸一水和物を中和した。続いて、限外ろ過により、水溶液中の未反応のゲムシタビン塩酸塩を除去し、凍結乾燥することにより、生成物であるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）を白黄色固体として得た（１８７ｍｇ、８７．４％）。生成物に対するゲムシタビンの導入量は、１Ｈ　ＮＭＲ測定により確認し、約１０質量％と算出された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000043
 ［式（１３）中、ｐ及びｑはそれぞれ独立に１０～１０００の整数であり、ｘは１～５００の整数である。］
［実験例３］
（薬物送達システムの合成２）
　実験例１で合成した薬物送達用担体に、アセタール結合によりジオール構造を有する薬物を結合させ、薬物送達システムを合成した。薬物としては、下記式（１４）に化学式を示すドキシフルリジンを使用した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000044
　具体的には、実験例１で合成した薬物送達用担体である、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）が有するｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基と、ドキシフルリジンが有するジオール基とのトランスアセタール化反応により、下記式（１５）に示す薬物送達システムである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｄｏｘｉｆｌｕｒｉｄｉｎｅ）を得た。
　まず、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）２０ｍｇと、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１０倍モル量のドキシフルリジンと、反応触媒としてＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１倍モル量のパラトルエンスルホン酸一水和物とを、４ｍＬのＮＭＰに溶解し、５０℃で一晩反応させた。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量の炭酸水素ナトリウム水溶液に滴下し、系内のパラトルエンスルホン酸一水和物を中和した。続いて、限外ろ過により水溶液中の未反応のドキシフルリジンを除去し、凍結乾燥することにより、生成物であるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｄｏｘｉｆｌｕｒｉｄｉｎｅ）を白色固体として得た（２０．５ｍｇ、９８．４％）。生成物に対するドキシフルリジンの導入量は、１Ｈ　ＮＭＲ測定により確認し、約４質量％と算出された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000045
 ［式（１５）中、ｐ及びｑはそれぞれ独立に１０～１０００の整数であり、ｙは１～５００の整数である。］
［実験例４］
（薬物放出試験）
　実験例２で合成した薬物送達システムを用いて薬物放出試験を行った。具体的には、血液中ｐＨに相当するｐＨ７．４、細胞内酸性オルガネラ環境に相当するｐＨ５．５及びｐＨ４．２に調整した緩衝液中に、実験例２で合成した薬物送達システムを添加して３７℃でインキュベートした。続いて、経時的にサンプリングを行い、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により放出されたゲムシタビンを定量した。
　図１は、ゲムシタビンの放出量を測定した結果を示すグラフである。その結果、血液中ｐＨに相当するｐＨ７．４においては、実験例２で合成した薬物送達システムは安定であることが明らかとなった。一方、細胞内酸性オルガネラ環境に相当するｐＨ５．５及びｐＨ４．２では、実験例２で合成した薬物送達システムから、効率的にゲムシタビンが放出されることが明らかとなった。
［実験例５］
（薬理評価）
　４週齢のヌードマウス（ＢＡＬＢ／ｃ－ｎｕ／ｎｕ）を１週間飼育した。続いて、ヌードマウスの側腹部に、ヒト膵臓癌細胞株であるＢｘＰＣ３を皮下移植し、担癌モデルマウスを作製した。
　癌細胞を移植後のヌードマウスを、腫瘍体積が約１００ｍｍ３に成長するまで３～４週間飼育した。続いて、実験例２で合成した薬物送達システム及びゲムシタビンの投与実験を開始した。薬物の投与は、実験開始時（０日目）、３日目、６日目及び９日目の４回、尾静脈投与により行った。実験例２で合成した薬物送達システムの投与量は、ゲムシタビン換算で２０ｍｇ／ｋｇとした。また、ゲムシタビンの投与量は治療に用いられる量である８０ｍｇ／ｋｇとした。また、対照として薬物を投与しない未治療群を用意した。
　各群のマウスの腫瘍成長率及び体重変化率を経時的に測定した。図２（ａ）は、腫瘍成長率の測定結果を示すグラフである。図２（ａ）中、「＊」は相関係数（ｐ値）０．０５未満で有意差があることを表し、「＊＊」はｐ値０．００５未満で有意差があることを表し、「＊＊＊」はｐ値０．００１未満で有意差があることを表し、「＊＊＊＊」はｐ値０．０００１未満で有意差があることを表す。また、図２（ｂ）は、体重変化率の測定結果を示すグラフである。図２（ａ）及び（ｂ）中、矢印は、薬物を投与した時間を示す。
　その結果、実験例２で合成した薬物送達システム及びゲムシタビンを投与したマウスでは、対照群のマウスと比較して、腫瘍成長率が有意に低下したことが明らかとなった。
　また、実験例２で合成した薬物送達システムを投与したマウスは、ゲムシタビンを投与したマウスと比較して、ゲムシタビンの投与量が１／４であるにもかかわらず、腫瘍成長率が有意に低下したことが明らかとなった。
　この結果は、実験例２で合成した薬物送達システムを投与すると、薬効が有意に高いことを示す。
［実験例６］
（体内動態評価）
　クロラミンＴ法により、ゲムシタビン、及び実験例２で合成した薬物送達システムであるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）のゲムシタビン内のピリミジン骨格に１２５Ｉ（ラジオアイソトープ）を導入して標識した。
　具体的には、まず、ゲムシタビン塩酸塩及び薬物送達システムを、それぞれ１ｍｇ／ｍＬ及び１０ｍｇ／ｍＬとなるように、１０ｍＭリン酸緩衝液に溶解した。続いて、５μＬのＩｏｄｉｎｅ－１２５（Ｐｅｒｋｉｎ　Ｅｌｍｅｒ社）、１００μＬのクロラミンＴ水溶液（１０ｍｇ／ｍＬ）を１００μＬのゲムシタビン水溶液又は１００μＬの薬物送達システム水溶液に加えて、室温で静置して反応させた。ゲムシタビンの反応時間は３０分間とし、薬物送達システムの反応時間は１時間とした。
　続いて、１００μＬの二亜硫酸ナトリウム水溶液（２０ｍｇ／ｍＬ）を各反応溶液に加えることで反応を終結させた。続いて、１２５Ｉ標識ゲムシタビンは陰イオン交換カラムにより、１２５Ｉ標識薬物送達システムはＰＤ－１０カラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製）により精製した。
　一方で、実験例５と同様にして、ヒト膵臓癌細胞株であるＢｘＰＣ３を移植した担癌モデルマウスを作製した。続いて、癌細胞を移植後のヌードマウスを、腫瘍体積が約１００ｍｍ３に成長するまで３～４週間飼育した。
　続いて、担癌モデルマウスに、１２５Ｉ標識されたゲムシタビン及び薬物送達システムをそれぞれ尾静脈注射により投与した。１２５Ｉ標識されたゲムシタビンの投与量は、治療に用いられる量である８０ｍｇ／ｋｇとした。また、１２５Ｉ標識された薬物送達システムの投与量は、ゲムシタビン換算で２０ｍｇ／ｋｇとした。
　続いて、薬物の投与から３０分後、２時間後及び２４時間後に各マウスを絶命処置した。続いて、血液及び各臓器（心臓、肺、肝臓、腎臓、脾臓、膵臓、胃、腸管、腫瘍）を採取した。続いて、採取した血液の放射活性をガンマカウンターで定量し、ゲムシタビンの血中滞留性を評価した。また、採取した各臓器の放射活性をガンマカウンターで定量し、ゲムシタビンの各臓器への集積量を評価した。
　図３（ａ）は、ゲムシタビンの血中残存量の測定結果を示すグラフである。その結果、ゲムシタビンの投与では、投与後２時間で９５％が血液中から消失し、５％しか残存していなかったのに対し、実験例２で合成した薬物送達システムの投与では、約４倍の２０％のゲムシタビンが血液中に残存していたことが明らかとなった。
　また、図３（ｂ）は、ゲムシタビンの腫瘍組織集積量の測定結果を示すグラフである。その結果、投与後２時間で、実験例２で合成した薬物送達システムの投与により、ゲムシタビンの投与に比べて約３倍のゲムシタビンが腫瘍組織に集積したことが明らかとなった。一方、実験例２で合成した薬物送達システムの投与では、肝臓等へのゲムシタビンの目立った集積は確認されなかった。
　また、図４（ａ）は、ゲムシタビンを単体で投与した場合のゲムシタビンの各臓器への集積量を測定した結果を示すグラフである。また、図４（ｂ）は、薬物送達システムの形態で投与したゲムシタビンの各臓器への集積量を測定した結果を示すグラフである。
　その結果、ゲムシタビンを単体で投与した場合には、胃や腸管への目立った集積が観察された。これに対し、薬物送達システムを投与した場合には、ゲムシタビンの胃や腸管への集積は抑制されており、高分子ミセルやリポソームを投与した場合にしばしば観察される、肝臓や脾臓への目立った集積も観察されなかった。
　以上の結果から、実験例２で合成した薬物送達システムの投与では、ゲムシタビンの投与量が１／４であるにもかかわらず、ゲムシタビンの投与と比較して、血中滞留性が有意に高く、腫瘍組織集積量も有意に高く、正常臓器への目立った集積を誘起することもないことが明らかとなった。
　この結果は、実験例２で合成した薬物送達システムを投与すると、薬効が有意に高いことを更に支持するものである。
［実験例７］
（毒性試験１）
　４週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスを１週間飼育後、ゲムシタビン及び実験例２で合成した薬物送達システムを投与し、毒性を評価した。ゲムシタビンの投与量は８０ｍｇ／ｋｇとした。また、実験例２で合成した薬物送達システムの投与量は、ゲムシタビン換算で２０ｍｇ／ｋｇとした。各薬物の投与は実験開始後１日１回毎日尾静脈投与により行い、マウスの体重の変化を観察した。体重の減少は毒性の指標の一つである。
　図５は、各群のマウスの体重変化率を測定した結果を示すグラフである。図５中、矢印は、薬物を投与した時間を示す。その結果、ゲムシタビン投与群では、全てのマウス（３匹）の体重が減少し、実験開始から３日目に全て絶命した。これに対し、実験例２で合成した薬物送達システムの投与群では、体重減少は確認されず、絶命したマウスも確認されなかった。
　この結果は、実験例２で合成した薬物送達システムが、既存薬であるゲムシタビンと比較して、大幅な低毒性を達成していることを示す。
［実験例８］
（毒性試験２）
　４週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスを１週間飼育後、ゲムシタビン及び実験例２で合成した薬物送達システムを投与し、毒性を評価した。
　具体的には、まず、ゲムシタビン又は薬物送達システムを生理食塩水に溶解した水溶液を調製した。続いて、各水溶液を、それぞれＢＡＬＢ／ｃマウス（ｎ＝３）に尾静脈注射により１日１回ずつ３日間投与した。ゲムシタビン水溶液の濃度は２ｍｇ／ｍＬとした。また、薬物送達システムの水溶液の濃度は２０ｍｇ／ｍＬとした。各群の薬物の投与量は１回あたり２００μＬとした。この結果、１回あたりの投与量は、ゲムシタビン投与群及び薬物送達システム投与群のいずれにおいてもゲムシタビン換算で２０ｍｇ／ｋｇ体重となった。また、生理食塩水を投与したマウスを対照群とした。
　実験開始後、薬物の投与ごとに電子天秤で体重を測定した。また、マウスの総摂食量を測定した。続いて、実験開始日を０日目として３日目に、小腸及び脾臓を採取した。採取した小腸はパラフィン包埋法により標本とし、ヘマトキシリン／エオジン（ＨＥ）染色後に顕微鏡観察した。また、脾臓の質量を測定した。
　図６は、各群のマウスの体重の経時変化を示すグラフである。統計学的有意差はｏｎｅ－ｗａｙ　ＡＮＯＶＡ（Ｔｕｋｅｙ’ｓ　ｍｕｌｔｉｐｌｅ　ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ　ｔｅｓｔ）により算出した。その結果、対照群及び薬物送達システム投与群のマウスでは体重減少が観察されなかった。これに対し、ゲムシタビン投与群のマウスでは有意な体重減少が観察された。
　図７は、各群のマウスの総摂食量の測定結果を示すグラフである。統計学的有意差はｏｎｅ－ｗａｙ　ＡＮＯＶＡ（Ｔｕｋｅｙ’ｓ　ｍｕｌｔｉｐｌｅ　ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ　ｔｅｓｔ）により算出した。その結果、ゲムシタビン投与群のマウスは、他の群のマウスと比較して、総摂食量が有意に減少したことが明らかとなった。
　図８（ａ）～（ｃ）は、各群のマウスの小腸の標本をヘマトキシリン／エオジン（ＨＥ）染色した結果を示す代表的な顕微鏡写真である。図８（ａ）は対照群のマウスの小腸の組織像であり、図８（ｂ）は薬物送達システム投与群のマウスの小腸の組織像であり、図８（ｃ）はゲムシタビン投与群のマウスの小腸の組織像である。図８（ａ）～（ｃ）において、スケールバーは１００μｍを示す。また、四角で囲んだ部分は絨毛底部の腸陰窩を示す。その結果、ゲムシタビン投与群のマウスの小腸では、絨毛底部の腸陰窩の構造異変及び脱落が認められた。腸陰窩は、様々な酵素の分泌に寄与している腸腺として知られている。
　また、図８（ａ）～（ｃ）の顕微鏡写真に基づいて、各群のマウスの小腸における絨毛長を測定した。図９は、各群のマウスの小腸における絨毛長を測定した結果を示すグラフである。統計学的有意差はｏｎｅ－ｗａｙ　ＡＮＯＶＡ（Ｔｕｋｅｙ’ｓ　ｍｕｌｔｉｐｌｅ　ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ　ｔｅｓｔ）により算出した。その結果、ゲムシタビン投与群のマウスの小腸では、他の群のマウスと比較して、絨毛長が有意に減少したことが明らかとなった。
　以上の結果から、ゲムシタビン投与群のマウスは、小腸に傷害を受けていることが明らかとなった。ゲムシタビン投与群では、摂食量が減少したことに加えて、消化器官（特に小腸）での摂食物の消化・吸収不全が生じたことが、体重減少の主な原因であると考えられた。
　図１０は、各群のマウスの脾臓の質量の測定結果を示すグラフである。統計学的有意差はｏｎｅ－ｗａｙ　ＡＮＯＶＡ（Ｔｕｋｅｙ’ｓ　ｍｕｌｔｉｐｌｅ　ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ　ｔｅｓｔ）により算出した。
　その結果、ゲムシタビン投与群のマウスは、他の群のマウスと比較して、脾臓の質量が有意に減少したことが明らかとなった。脾臓の質量は、免疫毒性評価の指標の１つである。したがって、この結果は、ゲムシタビン投与群のマウスにおいて免疫毒性が認められることを示す。
　以上の結果は、実験例２で合成した薬物送達システムが、既存薬であるゲムシタビンと比較して、大幅な低毒性を達成していることを更に支持するものである。薬物送達システムにより、特に、消化器毒性とそれに関連した体重減少の低減を達成していることが明らかとなった。
［実験例９］
（毒性試験３）
　ゲムシタビン及び実験例２で合成した薬物送達システムをマウスに投与し、血液学的パラメーターに対する影響を評価した。
　まず、ゲムシタビン又は薬物送達システムを生理食塩水に溶解した水溶液を調製した。続いて、各水溶液を、それぞれＢＡＬＢ／ｃマウス（ｎ＝３）に尾静脈注射により１日１回ずつ３日間投与した。ゲムシタビン水溶液の濃度は２ｍｇ／ｍＬとした。また、薬物送達システムの水溶液の濃度は２０ｍｇ／ｍＬとした。各群の薬物の投与量は１回あたり２００μＬとした。この結果、１回あたりの投与量は、ゲムシタビン投与群及び薬物送達システム投与群のいずれにおいてもゲムシタビン換算で２０ｍｇ／ｋｇ体重となった。また、生理食塩水を投与したマウスを対照群とした。
　実験開始日を０日目として３日目に、血液を採取した。血液は、自動血球分析装置（自動化法）及び染色鏡検法により血液学的パラメーターを測定・算出した。下記表１に、血液学的パラメーターの測定結果を示す。統計学的有意差は、生理食塩水投与群を対照群としたＳｔｕｄｅｎｔ　ｔ　ｔｅｓｔにより算出した（ｎ＝３）。表１中、「＊」は、相関係数（ｐ値）０．０５未満で有意差があることを表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000046
　その結果、ゲムシタビン投与群において、対照群と比較して、白血球数及び白血球分画の好中球数の有意な減少が確認された。一方、薬物送達システム投与群においては血液学的パラメーターの異常は確認されなかった。この結果から、実験例２で合成した薬物送達システムが、既存薬であるゲムシタビンの投与により発現する血液毒性の低減を達成していることが明らかとなった。
［実験例１０］
（毒性試験４）
　ゲムシタビン及び実験例２で合成した薬物送達システムをマウスに投与し、腎臓への毒性の指標となる血液学的パラメーター（尿素窒素及びクレアチニン濃度）に対する影響を評価した。
　まず、ゲムシタビン又は薬物送達システムを生理食塩水に溶解した水溶液を調製した。続いて、各水溶液を、それぞれＢＡＬＢ／ｃマウス（ｎ＝３）に尾静脈注射により１日１回ずつ３日間投与した。ゲムシタビン水溶液の濃度は２ｍｇ／ｍＬとした。また、薬物送達システムの水溶液の濃度は２０ｍｇ／ｍＬとした。各群の薬物の投与量は１回あたり２００μＬとした。この結果、１回あたりの投与量は、ゲムシタビン投与群及び薬物送達システム投与群のいずれにおいてもゲムシタビン換算で２０ｍｇ／ｋｇ体重となった。また、生理食塩水を投与したマウスを対照群とした。
　実験開始日を０日目として３日目に、血液を採取し、尿素窒素及びクレアチニン濃度を測定した。下記表２に、血液学的パラメーターの測定結果を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000047
　その結果、薬物送達システム投与群において、血液学的パラメーターの異常は確認されなかった。この結果から、実験例２で合成した薬物送達システムは、腎臓への毒性が認められないことが確認された。
［実験例１１］
（薬物送達システムの合成３）
　実験例２で合成した薬物送達システムと比較して、ゲムシタビン導入量が異なる薬物送達システムを合成した。実験例２における各条件から、反応させる試薬の量、反応時間、反応温度を変更した。
　具体的には、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）２０００ｍｇと、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１０倍モル量のゲムシタビン塩酸塩と、反応触媒としてＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１倍モル量のパラトルエンスルホン酸一水和物とを、１００ｍＬのＮＭＰに溶解し、５０℃で１２時間反応させた。
　この結果、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）が有するｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基とゲムシタビンが有するジオール基とのトランスアセタール化反応により、上記式（１３）に示す薬物送達システムである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）が生成された。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を９００ｍＬの０．１Ｍ炭酸水素ナトリウム水溶液に氷冷下で滴下し、系内のパラトルエンスルホン酸一水和物を中和した。続いて、限外ろ過により、水溶液中の未反応のゲムシタビン塩酸塩を除去し、凍結乾燥することにより、生成物であるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）を白黄色固体として得た（１４００ｍｇ、５５．３％）。生成物に対するゲムシタビンの導入量は、１Ｈ　ＮＭＲ測定により確認し、約２７質量％と算出された。
［実験例１２］
（薬物送達用担体の合成２）
　実験例１と同様の手法にて、ＰＥＧ－ポリアミノ酸のジブロックコポリマー及び薬物送達用担体を合成した。
《ＰＥＧ－ポリアミノ酸のジブロックコポリマーの合成》
　まず、ＰＥＧ－ポリアミノ酸のジブロックコポリマーである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐｏｌｙ（β－ｂｅｎｚｙｌ　Ｌ－ａｓｐａｒｔａｔｅ）（ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡ）を合成した。具体的には、まず、１５００ｍｇのＢＬＡ－Ｎ－ｃａｒｂｏｘｙ　ａｎｈｙｄｒｉｄｅ（ＢＬＡ－ＮＣＡ）を１０ｍＬのジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）に溶解した。続いて、得られた溶液に、４０ｍＬのジクロロメタン（ＤＣＭ）に溶解した６００ｍｇのＭｅＯ－ＰＥＧ－ＮＨ２を重合開始剤として加え、３５℃で３日間攪拌した。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量（３０倍容量程度）のジエチルエーテルに滴下し、沈殿物を吸引ろ過後、減圧乾燥することにより、生成物であるＰＥＧ－ＰＢＬＡを白色固体として得た（１．４２ｇ、７８．８％）。
　得られた白色固体は１Ｈ　ＮＭＲ及びゲルろ過クロマトグラフィーにより解析し、生成物の化学構造及び分子量分布を確認した。ＰＥＧスタンダードの検量線を用いてゲルろ過クロマトグラフィーにより解析したところ、Ｍｗ（重量平均分子量）／Ｍｎ（数平均分子量）は１．１３であった。また、１Ｈ　ＮＭＲ測定により算出したＰＢＬＡの重合度は約９８であった。
《薬物送達用担体の合成》
　続いて、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡの側鎖のベンジル基へのアミノリシス反応を利用して、上記式（１１）に示す薬物送達用担体である、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）を実験例１と同様の手法で合成した。具体的には、まず、２００ｍｇのＰＥＧ－ＰＢＬＡを４ｍＬのＮ－メチルピロリドン（ＮＭＰ）中に溶解させ、別容器にＰＥＧ－ＰＢＬＡのベンジル基に対して５０倍モル量のＡｍｉｎｏａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ　ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌを移し取った。続いて、Ａｍｉｎｏａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ　ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ溶液をＰＥＧ－ＰＢＬＡ溶液に滴下し、室温で一晩反応させた。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量（３０倍容量程度）のジエチルエーテルに滴下し、沈殿物を吸引ろ過後、減圧乾燥することにより、生成物であるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）を白色固体として得た（１６０ｍｇ、８０．３％）。１Ｈ　ＮＭＲ解析により、合成したＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）の構造を確認した結果、上記式（１１）中のｐは約２２７であり、ｑは約９８であることが確認された。
［実験例１３］
（薬物送達システムの合成４）
　実験例２と同様にして、上記スキーム（ＩＩ）にしたがって、実験例１２で合成した薬物送達用担体に、アセタール結合によりゲムシタビンを結合した。まず、合成した薬物送達用担体である、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）が有するｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基とゲムシタビンが有するジオール基とのトランスアセタール化反応により、上記式（１３）に示す薬物送達システムである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）を得た。
　具体的には、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）１００ｍｇと、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１０倍モル量のゲムシタビン塩酸塩と、反応触媒としてＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）のｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基に対して１倍モル量のパラトルエンスルホン酸一水和物とを、８ｍＬのＤＭＦに溶解し、５０℃で一晩反応させた。
　この結果、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ）が有するｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ基とゲムシタビンが有するジオール基とのトランスアセタール化反応により、式（１３）に示す薬物送達システムである、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）が生成された。以上の操作は全てアルゴン雰囲気下で行った。
　続いて、反応溶液を過剰量の炭酸水素ナトリウム水溶液に滴下し、系内のパラトルエンスルホン酸一水和物を中和した。続いて、限外ろ過により、水溶液中の未反応のゲムシタビン塩酸塩を除去し、凍結乾燥することにより、生成物であるＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｌ－ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）を白黄色固体として得た（８２ｍｇ、７２．５％）。生成物に対するゲムシタビンの導入量は、１Ｈ　ＮＭＲ測定により確認し、約１４質量％と算出された。
　本発明によれば、薬物の薬理活性を低下させることなく、効率よく腫瘍組織に薬物を送達することができる薬物送達技術を提供することができる。

Claims (10)

  1. 　下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物の前記ジオール構造と下記式（２）で表わされるアセタール結合を形成し得る基が結合した、生体適合性ポリマーからなる、薬物送達用担体。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
  2. 　前記アセタール結合を形成し得る基が下記式（３）で表わされる基である、請求項１に記載の薬物送達用担体。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
     ［式（３）中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立に炭素数１～３のアルキル基を表し、＊は結合手を表す。Ｒ１及びＲ２は連結して環を形成していてもよい。］
  3. 　前記生体適合性ポリマーが生体分解性である、請求項１又は２に記載の薬物送達用担体。
  4. 　重量平均分子量が２，０００～２００，０００である、請求項１～３のいずれか一項に記載の薬物送達用担体。
  5. 　前記生体適合性ポリマー１モルあたり、前記アセタール結合を形成し得る基が５～５００モル結合した、請求項１～４のいずれか一項に記載の薬物送達用担体。
  6. 　請求項１～５のいずれか一項に記載の薬物送達用担体と、下記式（１）で表わされるジオール構造を有する薬物とが、下記式（２）で表わされるアセタール結合で結合した、薬物送達システム。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
     ［式（１）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
     ［式（２）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（１）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
  7. 　酸性環境下で前記アセタール結合が切断されるとともに前記薬物の前記式（１）で表わされるジオール構造が再生され、前記薬物送達システムから前記薬物が放出される、請求項６に記載の薬物送達システム。
  8. 　請求項１～５のいずれか一項に記載の薬物送達用担体と、下記式（４）で表わされるジオール構造を有する薬物とが、下記式（５）で表わされるアセタール結合で結合した、薬物送達システム。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
     ［式（４）中、ｍ及びｎはそれぞれ０又は１の整数を表し、＊は結合手を表す。］
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
     ［式（５）中、ｍ及びｎはそれぞれ前記式（４）におけるｍ及びｎと同じ値を表し、＊は結合手を表す。］
  9. 　酸性環境下で前記アセタール結合が切断されるとともに前記薬物の前記式（４）で表わされるジオール構造が再生され、前記薬物送達システムから前記薬物が放出される、請求項８に記載の薬物送達システム。
  10. 　ジオール構造を有する前記薬物が代謝拮抗剤である、請求項６～９のいずれか一項に記載の薬物送達システム。
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