WO2016017039A1 - 炎症レポーターシステム - Google Patents

Abstract

　炎症性サイトカインをコードする遺伝子のプロモーター、レポータータンパク質をコードする遺伝子、前記炎症性サイトカインをコードする遺伝子、及びタンパク質分解シグナル配列をコードする遺伝子を含むベクターが導入された形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物を用いて、炎症性刺激により当該形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物に惹起される炎症反応を検出することを特徴とする炎症反応の検出方法。

Description

炎症レポーターシステム

　本発明は、炎症反応の検出方法に関する。

　炎症反応は多くの疾患の症状とも深く関連する生体反応のひとつであり、それらの病態を理解したり、その治療戦略を考案したりする上で重要な研究対象になっている。それゆえに炎症の実態を検出できる技術の開発は不可欠である。
　一般的な炎症反応は、次のメカニズムにより起こることが解明されている。すなわち、細菌やウイルスなどの感染源が体内に侵入すると、感染源は細胞表面の受容体で感知されサイトカインの分泌が起こる。そのサイトカインを指標にしてマクロファージなどの免疫細胞が感染部位に遊走され、感染源を撃退する。その撃退時の免疫細胞による活発な働きから、炎症時に特有の発赤、発熱、疼痛、腫脹が起こるとされている。

　この炎症反応に大きく関わり、炎症マーカーとしても注目されるサイトカインとして、インターロイキン−１ベータ（ＩＬ−１β）が知られている。ＩＬ−１βは、炎症刺激がない時には殆ど分泌されないが、炎症刺激により各組織において、非常に高いレベルで産生、分泌されることが知られている（図１）。
　ＩＬ−１βは、以下の特徴的な二段階の制御により厳密に調節されることも分かっている。ＩＬ−１βの遺伝子発現は、炎症反応によって惹起される転写因子ＮＦ−κＢにより活性化され、ＩＬ−１β遺伝子発現の活性化に伴い、前駆型であるｐｒｏＩＬ−１βの産生が促進される。その後、ｐｒｏＩＬ−１βはインフラマソームで活性化されたカスパーゼによって切断を受け、分泌可能な成熟型ＩＬ−１βに変換される（図２）、というものである。

　ルシフェラーゼや赤色蛍光蛋白質をレポーター分子としたＩＬ−１β遺伝子発現のモニタリングについては、既に報告がある（非特許文献１，２）。これらの報告では、レポーター分子を導入したトランスジェニックマウスを作製し、その炎症モデルにおいて、レポーターシグナルを検出でき、生体イメージング解析にも利用可能であることを示している。しかしながら、この方法では、炎症反応のカスケードの１因子である転写制御だけに頼っており、生理的な炎症反応のモニタリングとしては不十分であると考えられる。
　また一方、インフラマソームで制御されるレポーターシステムについても報告されている（非特許文献３）。この報告では、非炎症時には凝集構造をとることで不活性状態となっているレポーター分子が、炎症刺激によりインフラマソームが機能することで単量体化して活性を示すように設計されている。しかし、これもインフラマソームだけに頼っており、感度としては十分でなく、また、このシステムは、生体マウスにおいて機能するかどうかについての検証がなされていない。

　他方、各種の生体内刺激又は外部刺激、例えば酸化ストレスや小胞体ストレスによりタンパク質の発現を行い、その現象を可視化する試みも行われている（特許文献１、２、非特許文献４、５）。

国際公開２０１２／０９９２７９号パンフレット 特許第４４４６０５７号公報

Ｌｉ　Ｌ．ｅｔ　ａｌ"Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｉｍａｇｉｎｇ　ｏｆ　ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ　１　ｂｅｔａ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ　ｐｒｏｃｅｓｓ　ｕｓｉｎｇ　ｂｉｏｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ　ｉｍａｇｉｎｇ　ｉｎ　ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ　ｍｉｃｅ"ＢＭＣ　Ｉｍｍｕｎｏｌ．，ｖｏｌ．９．，４９（２００８） Ｍａｔｓｕｓｈｉｍａ　Ｈ．ｅｔ　ａｌ"Ｉｎｔｒａｖｉｔａｌ　ｉｍａｇｉｎｇ　ｏｆ　ＩＬ−１ｂｅｔａ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｉｎ　ｓｋｉｎ"Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．，ｖｏｌ．１３０，１５７１−１５８０（２０１０） Ｂａｒｔｏｋ　Ｅ．ｅｔ　ａｌ"ｉＧＬｕｃ：ａ　ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ−ｂａｓｅｄ　ｉｎｆｌａｍｍａｓｏｍｅ　ａｎｄ　ｐｒｏｔｅａｓｅ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｒｅｐｏｒｔｅｒ"Ｎａｔ．Ｍｅｔｈｏｄｓ．，ｖｏｌ．１０．，１４７−１５４（２０１３） Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｒｅｐｏｒｔｓ　２０１２；２：２２９．Ｅｐｕｂ　２０１２　Ｊａｎ　１９． Ｎａｔｕｒｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ　１０，９８１０２（１　Ｊａｎｕａｒｙ　２００４）

　本発明では、特に生体内の微小領域における局所的な炎症反応を、高効率・高感度に検出・測定できる技術を提供することを目的とする。また、本検出方法を容易に利用できるようにするための遺伝子ベクター、さらには、ｉｎ　ｖｉｖｏでの研究開発に使用できるようにするため、本レポーターシステムの遺伝子ベクターを導入したトランスジェニックマウスを提供することを目的とする。

　本発明者は、上記課題を解決するため鋭意研究を重ねた結果、ＩＬ−１β遺伝子とインフラマソームにより二段階で制御される炎症反応のメカニズムを利用することで、生理的な炎症反応のモニタリングを高効率・高感度に行うことができるレポーターシステムを構築できることを見出し、その方法とその方法を搭載した遺伝子ベクター及び、トランスジェニックマウスを構築することで、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は以下の通りである。

（１）炎症性サイトカインをコードする遺伝子のプロモーター、レポータータンパク質をコードする遺伝子、前記炎症性サイトカインをコードする遺伝子、及びタンパク質分解シグナル配列をコードする遺伝子を含むベクター。
（２）炎症性サイトカインがインターロイキン１βである（１）に記載のベクター。
（３）レポータータンパク質がルシフェラーゼである（１）又は（２）に記載のベクター。
（４）炎症性サイトカインをコードする遺伝子は、カスパーゼにより認識されるペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含むものである（１）~（３）のいずれか１項に記載のベクター。
（５）前記（１）~（４）のいずれか１項に記載のベクターを含む形質転換体。
（６）前記（１）~（４）のいずれか１項に記載のベクターが導入されたトランスジェニック非ヒト動物。
（７）非ヒト動物がマウスである（６）に記載のトランスジェニック非ヒト動物。
（８）炎症性刺激によりレポータータンパク質が発光シグナルとして検出される、（５）に記載の形質転換体又は（６）若しくは（７）に記載のトランスジェニック非ヒト動物。
（９）前記（５）に記載の形質転換体又は（６）~（８）のいずれか１項に記載のトランスジェニック非ヒト動物を用いて、炎症性刺激により当該形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物に惹起される炎症反応を検出することを特徴とする炎症反応の検出方法。
（１０）炎症性サイトカインをコードする遺伝子は、炎症反応により惹起される転写因子ＮＦ−κＢにより発現されるものである、（９）に記載の方法。
（１１）炎症性刺激によりレポータータンパク質を発光シグナルとして検出する、（９）又は（１０）に記載の方法。
（１２）前記（５）に記載の形質転換体又は（６）~（８）のいずれか１項に記載のトランスジェニック非ヒト動物に、炎症性刺激下で候補物質を接触させ、炎症反応の有無を指標として抗炎症物質を選択することを特徴とする抗炎症物質のスクリーニング方法。
（１３）前記（５）に記載の形質転換体又は（６）~（８）のいずれか１項に記載のトランスジェニック非ヒト動物を含む、炎症反応検出用又は抗炎症物質のスクリーニング用キット。

　本発明により、炎症反応のモニタリングを高効率・高感度に行うことができるレポーターシステムが提供される。本発明のシステムは、炎症反応を可視化することができ、感度及び効率が極めて高い。

リポポリサッカライド（ＬＰＳ）による炎症刺激後のＩＬ−１β値の変化を示す図である。　使用ＬＰＳ：シグマ＃Ｌ２６５４、使用濃度：３~４μｇ／ｇ体重 ＩＬ−１βの産生及び分泌制御機構を示す図である。 ＩＬ−１βを利用した炎症レポーターシステムの構築を示す図である。 レポーター遺伝子を一過的に導入したＲＡＷ２６４でのレポーター活性を示す図である。　使用ＬＰＳ：シグマ＃Ｌ２６５４、使用濃度：２μｇ／ｍｌ ＬＰＳ刺激後の炎症レポーターマウスから発するシグナルを示す図である。　使用ＬＰＳ：シグマ＃Ｌ２６５４、使用濃度：３~４μｇ／ｇ体重 レポーター遺伝子を一過的に導入したＲＡＷ２６４でのレポーター活性を示す図である。　使用ＬＰＳ：シグマ＃Ｌ２６５４、使用濃度：２μｇ／ｍｌ、処理時間：４８ｈ 本発明のベクターの構築図である。 マウスの系統間におけるＬＰＳ刺激前後のレポーターシグナルを比較した結果を示す図である。

　以下、本発明を詳細に説明する。
１．ベクター等及び検出方法
　本発明において使用されるベクターは、複数の遺伝子を連結した融合遺伝子を含むものであり、炎症性サイトカインをコードする遺伝子のプロモーター制御下で、レポーター分子、カスパーゼ認識配列及びタンパク質分解シグナル配列の融合タンパク質を発現するものである。
　本発明において、「炎症性サイトカイン」とは、細菌などの抗原などによって活性化されたヘルパーＴ細胞、単球、マクロファージ、好中球、樹状細胞などから産生されるサイトカインであり、マクロファージやその他の免疫系細胞、血管内皮細胞、破骨細胞を活性化するサイトカインである。このような炎症性サイトカインとして、例えばＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１２、ＩＬ−１３、ＩＬ−１７、ＩＬ−１８、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）などが挙げられる。炎症性サイトカインをコードする遺伝子は、炎症反応により惹起される転写因子ＮＦ−κＢにより発現される。

　本発明においては、これらの炎症性サイトカインをコードする遺伝子又はその部分配列を使用することができる。上記炎症性サイトカインをコードする遺伝子及びこれらの遺伝子のプロモーターの情報は公知である。部分配列は、炎症応答性を有する限り特に長さに限定されるものではなく、炎症応答性発現増強や炎症応答性プロセシングなどを指標として長さ及び領域を決定することができる。

　ＩＬ−１β：アクセッション番号ＮＭ＿００８３６１．３
　ＩＬ−６：アクセッション番号ＮＭ＿０３１１６８．１
　ＩＬ−８：アクセッション番号ＮＭ＿００９１４０．２
　ＩＬ−１２：アクセッション番号ＮＭ＿００１１５９４２４．１
　ＩＬ−１３：アクセッション番号ＮＭ＿００８３５５．３
　ＩＬ−１７：アクセッション番号ＮＭ＿０１０５５２．３
　ＩＬ−１８：アクセッション番号ＮＭ＿００８３６０．１
　ＴＮＦ：アクセッション番号ＮＭ＿００１２７８６０１．１
　ＩＬ−１βプロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００６８．７
　ＩＬ−６プロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００７１．６
　ＩＬ−８プロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００７１．６
　ＩＬ−１２プロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００６９．６
　ＩＬ−１３プロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００７７．６
　ＩＬ−１７プロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００６７．６
　ＩＬ−１８プロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００７５．６
　ＴＮＦプロモーター：アクセッション番号ＮＣ＿００００８３．６

　本明細書では、説明の便宜上ＩＬ−１βを例に説明する。
　ＩＬ−１β遺伝子のプロモーター下流にレポーター遺伝子を連結し、その下流に例えばＩＬ−１β部分配列と蛋白質分解シグナル配列を付加した遺伝子コンストラクトを作製する。ＩＬ−１β部分配列においてコードされるペプチドリンカーにはカスパーゼにより認識される配列（カスパーゼ認識配列）を含む。そして、当該ＩＬ−１β部分配列によりコードされるペプチドリンカーは、インフラマソームと呼ばれるタンパク質複合体により活性化されたカスパーゼ（カスパーゼ−１）が作用する領域であり、カスパーゼにより当該ペプチドリンカーが切断される。

　このような遺伝子コンストラクトを持つ細胞において、炎症レポーターシステムを示す概要を図３に示す。図３は炎症性サイトカインとしてＩＬ−１βを例示し、レポーター分子としてルシフェラーゼ（Ｌｕｃ）を例示したものである。もちろん、炎症性サイトカイン及びレポーター分子は図３に示すＩＬ−１β及びＬｕｃに限定されるものではない。
　図３において、炎症刺激がない場合には、ＩＬ−１β遺伝子プロモーターが作動しないので、レポーター遺伝子の発現は活性化されることはない。仮に、発現がリークしたとしても、やはり炎症刺激がないためインフラマソームが働かず、発現したレポーター分子−カスパ−ゼ認識配列−蛋白質分解シグナル配列からなる融合蛋白質は、その蛋白質分解シグナル配列の作用により、積極的にユビキチン−プロテアソーム系で分解されることになる。
　他方、炎症刺激がある場合、転写因子であるＮＦ−κＢによりプロモーターが作動することでレポーター遺伝子の発現は活性化され、産生されたレポーター分子は、インフラマソームによるカスパーゼの活性化により蛋白質分解シグナル配列から切り離され、レポーター分子それ単独で安定化し、レポータータンパク質の発光シグナル（レポーターシグナル）として高レベルで検出することができる。この検出結果は可視化され、モニターに表示された画像により確認することができる。

　本発明の一態様においては、ＩＬ−１β遺伝子のプロモーター制御下で、レポーター分子と、カスパーゼ認識配列（ＩＬ−１βのアミノ酸配列の一部を構成する）と、蛋白質分解シグナル配列との融合蛋白質を発現する構造とした遺伝子ベクターを、マウス由来マクロファージ様細胞ＲＡＷ２６４株に一過的に導入した。この細胞株の培養液中に、大腸菌細胞膜構成成分であるＬＰＳ（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ，リポ多糖）を添加すると、有意なレポーター活性の上昇が認めることができる（図４）。
　また、当該遺伝子ベクターをＣ５７ＢＬ／６系統の前核期受精卵にインジェクションすることにより、トランスジェニックマウスを作製した。このトランスジェニックマウスの腹腔内にＬＰＳを投与することで炎症刺激を与え、投与直後と、４時間後、２４時間後のルシフェラーゼの発光シグナルの変化を生体イメージング装置で検出する。全身の組織において、炎症反応に依存する発光が観察することができる（実施例、図５）。
　レポータータンパク質（レポーター分子）としては、例えば、ルシフェラーゼ、ＧＦＰ（緑色蛍光蛋白質）、ＤｓＲｅｄ（赤色蛍光蛋白質）、ＬａｃＺ（β−ガラクトシダーゼ）などを利用することができ、また、遺伝子ベクターもプラスミドＤＮＡ、ウイルスベクターなどの形態をとることができるが、本発明はこれに限定されるものではない。

　これらのレポータータンパク質をコードする遺伝子は公知であり、国内外のバイオ試薬メーカーなどから入手することができる。
　「タンパク質分解シグナル配列」とは、Ｅ３リガーゼにより積極的にポリユビキチン化され、結果としてプロテアソームにより消化されやすい配列を意味し、本発明において使用されるタンパク質分解シグナル配列として、ＣＬ１配列やＰＥＳＴ配列などが挙げられる。これらのタンパク質分解シグナル配列をコードする遺伝子は公知であり、国内外のバイオ試薬メーカーなどから入手することができる。

　本発明の形質転換体は、遺伝子ベクターを宿主に導入することにより得ることができる。
　遺伝子ベクターを導入する宿主も特に限定はされず、原核生物（大腸菌、乳酸菌等）や真核細胞（酵母）等の単細胞生物であってもよく、また、ヒト由来細胞（Ｈｅｌａ，ＨＥＫ２９３等）やマウス由来細胞（ＮＩＨ３Ｔ３等）の株化培養細胞、あるいはその他の動物細胞も使用できる。プロモーター直下に上記遺伝子を連結する方法は周知である（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ（４ｔｈ　Ｅｄｉｔｉｏｎ）、Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ（２０１２））。遺伝子ベクターの宿主への導入は、電気穿孔法（エレクトロポレーション）、市販のリポフェクション試薬を用いたリポフェクション法、ウイルスベクターによる方法など、広く公知の方法によって実施することができる（上記Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ等を参照のこと）。

　本レポーター遺伝子ベクターを導入したトランスジェニック非ヒト動物は、マウス、ラット、イヌ、サル、ヤギなどで作製することができるが、これらの非ヒト動物に限定されるものではない。トランスジェニック非ヒト動物は、それぞれの動物の受精卵に、マイクロインジェクターを用いて遺伝子ベクターＤＮＡを注入することで作製できるし、あるいは、相同組換え法により胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）を樹立してから、トランスジェニック動物を作製することもできる。マイクロインジェクション法などはいずれも当該技術分野の当業者にとって容易に実施できる公知の方法である（上記Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ等を参照のこと）。
　本発明において使用されるトランスジェニック非ヒト動物は、個体に限定されるものではなく、当該トランスジェニック非ヒト動物由来の生体材料、例えば細胞、器官、組織、胚などを使用することもできる。

２．スクリーニング方法
　本発明において、抗炎症物質の候補となる被検物質（候補物質）は、特に限定されるものではなく、例えば、ペプチド、タンパク質、ＤＮＡ、非ペプチド性化合物、合成化合物、発酵生産物、細胞抽出液、植物抽出液などが挙げられ、これら化合物は新規化合物であってもよいし、公知化合物であってもよい。これら被検物質は塩を形成していてもよく、被検物質の塩としては、生理学的に許容される酸（例えば無機酸など）や塩基（例えば有機酸など）などとの塩が用いられ、生理学的に許容される酸付加塩が好ましい。被検物質は、単一の物質を独立に試験しても、混合物（ライブラリーなどを含む）について試験をしてもよい。複数の被検物質を含むライブラリーとしては、合成化合物ライブラリー（コンビナトリアルライブラリーなど）、ペプチドライブラリー（コンビナトリアルライブラリーなど）などが挙げられる。

　本発明においては、トランスジェニック非ヒト動物に炎症性物質を投与して（炎症性刺激を与えて）炎症反応を惹起させ、この動物に被検物質を接触させて炎症反応の抑制効果を調べる態様、及びトランスジェニック非ヒト動物に被検物質を接触させた後に炎症性物質を投与して炎症反応を惹起させ、この動物における炎症反応の抑制効果を調べる態様がある。どちらの態様も、炎症反応の抑制効果が得られた被検物質は、炎症性疾患（例えば感染症、リウマチ、アレルギー）の治療薬又は予防薬、すなわち抗炎症剤として選択することができる。

　被検物質投与の対象となるトランスジェニック非ヒト動物（被検動物）及び対照動物としては、特に限定されるものではないが、通常、同種の非ヒト動物を用いる。また被験動物及び対照動物は、同性及び同齢の動物を用いることがより好ましい。
　本発明において、形質転換体を使用する場合は、形質転換体に被検物質を接触させた後、この形質転換体に炎症性物質を接触させて炎症反応の抑制効果を調べる態様、及び形質転換体に炎症性物質を接触させて炎症反応を惹起し、この形質転換体に被検物質を接触させて炎症反応の抑制効果を調べる態様がある。
　炎症反応を抑制するかどうかは、炎症性刺激によりレポータータンパク質が発光シグナルとして検出されるか否かを指標とし、得られる検出結果を指標として抗炎症物質を選択する。

　「接触させる」とは、被検物質を非ヒト動物に投与する態様、被検物質を形質転換体又は生体材料に添加する態様、被検物質の存在下で培養する態様などがある。トランスジェニック非ヒト動物自体に被検物質を接触させるには、被検物質をこれらの動物に注射等により接種すればよい。被検物質を形質転換体又は生体材料に添加する態様は、細胞の培養物に被検物質を添加すること、組織や器官等に被検物質を添加することなどが挙げられる。「培養物」とは、細胞、培養液、細胞抽出物のいずれをも意味する。「被検物質の存在下で培養する」とは、細胞と被検物質とが接触する条件下で培養することを意味し、被検物質の上記細胞等との接触は、例えば、細胞培養培地又は各種緩衝液（例えば、ＨＥＰＥＳ緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、トリス塩酸緩衝液など）の中に被検物質を添加して、細胞を一定時間インキュベートすることにより実施することができる。
　培養物中に添加される被検物質の濃度は化合物の種類（溶解度、毒性等）により異なるが、例えば、１００ｎｇ／ｍｌ~１０μｇ／ｍｌの範囲で適宜選択される。インキュベート時間としては、例えば、４~４８時間が挙げられる。

３．キット
　本発明は、炎症性サイトカインをコードする遺伝子のプロモーター、レポータータンパク質をコードする遺伝子、前記炎症性サイトカインをコードする遺伝子、及びタンパク質分解シグナル配列をコードする遺伝子を含むベクターが導入された形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物を含む、炎症反応検出用又は抗炎症物質のスクリーニング用キットを提供する。
　本発明の形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物を炎症性疾患や炎症反応の検出薬として用いる場合には、上記形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物を他の試薬、例えば、蒸留水、緩衝試薬、炎症惹起物質、使用説明書などを含めることができる。

以下、実施例により本発明を具体的かつ詳細に説明するが、これらは、本発明の範囲を限定するものではない。

遺伝子ベクターの構築
マウス由来ＩＬ−１β遺伝子の上流約５ｋｂｐの領域を、マウス由来細胞から抽出したゲノムＤＮＡを材料としてクローニングした。クローニング領域の直下にＨＳＶ由来のＴＫ遺伝子プロモーターを融合し、この融合プロモーターの下流にＰｈｏｔｉｎｕｓ　ｐｙｒａｌｉｓ由来　改変型ルシフェラーゼ（ＧＬ４，約１．７ｋｂｐ）、さらにその下流にマウス由来ＩＬ−１βの部分配列（１７−２１６ａａ）をコードする塩基配列、さらにその下流にＣＬ１（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ由来）−ＰＥＳＴ（マウス由来）配列、ＳＶ４０由来ポリＡ配列を接続したベクター（図７）（配列番号１）を構築した。
　ＩＬ−１β遺伝子のクローニングは以下の通り行った。

マウス由来ＩＬ−１β遺伝子の上流約５ｋｂｐの領域について
　全領域を４部分に分割して、それぞれＰＣＲ法を用いてクローニングした。いずれの部分においても使用したＰＣＲキットはＰｒｉｍｅ　Ｓｔａｒ（Ｔａｋａｒａ）、鋳型ＤＮＡはマウスＥＳ細胞由来ゲノムＤＮＡ、反応条件は９８℃；１０秒、５５℃；５秒、７２℃；２分の３５回サイクルである。使用プライマーは部分ごとに異なり、以下の通りである。
第１部分

第２部分

第３部分

第４部分

なお、各部分の連結はＣｌａＩサイト、ＥｃｏＴ２２Ｉサイト、ＳｍａＩサイトを用いて行った。

マウス由来ＩＬ−１β遺伝子の部分（１７−２１６ａａ）領域について
　全領域を一割してＰＣＲ法を用いてクローニングした。使用したＰＣＲキットはＰｒｉｍｅ　Ｓｔａｒ（Ｔａｋａｒａ）、鋳型ＤＮＡはマウス胎盤由来の逆転写産物、反応条件は９８℃；１０秒、５５℃；５秒、７２℃；１分の３５回サイクルである。
　使用プライマーは５側プライマー；ａａａｇｇｔａｃｃｇａｔｇａｇａａｔｇａｃｃｔｇｔｔｃｔｔｔｇ（配列番号１０）、３側プライマー；ａａａｃｔｃｇａｇａａａｃｃｇｔｔｔｔｔｃｃａｔｃｔｔｃｔｔｃ（配列番号１１）である。

培養細胞への一過的導入
　上記の通り構築した遺伝子ベクターを、マウス由来マクロファージ様細胞ＲＡＷ２６４株に一過的に導入した。
　トランスフェクションには、Ｅｆｆｅｃｔｅｎｅ（Ｑｉａｇｅｎ）を用い、トランスフェクション後２４時間の細胞を回収して実験に供試した。一過的な発現細胞の培養液に、２μｇ／ｍＬの濃度でＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ　＃Ｌ２６５４）を添加し、添加後４８時間のルシフェラーゼ発光量を、ルミノメーターで定量測定した。対照として、ＬＰＳ無添加群を設けた。また、従来型のＩＬ−１β遺伝子発現のみを検出するレポーターシステムとして、ＩＬ−１β遺伝子のプロモーター下流にＧＬ４を接続したベクターを作製し、これをトランスフェクション処理した細胞で同様に試験を行った。

　その結果、図６に示すレポーターシグナルが得られた。本発明のベクター、従来型のベクターいずれを導入した細胞でも、ＬＰＳ刺激により有意なレポーターシグナルの上昇が認められた。しかし、その感度においては、本発明品は従来型のものより２倍以上向上していた。

トランスジェニックマウスの作製
　切り出し精製した遺伝子ベクターを、Ｃ５７ＢＬ／６系統のマウスから採取した前核期受精卵２００個にインジェクションし、７１匹の産子を得た。産子の体組織から抽出したゲノムＤＮＡを用いて遺伝子型を解析し、ゲノムに遺伝子ベクターが挿入されているファウンダーマウス１８匹を得た。ファウンダーマウス４匹それぞれを野生型Ｃ５７ＢＬ／６系統マウスと交配させ、Ｆ１世代マウスを作出し、ＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ　＃Ｌ２６５４）を腹腔内に投与したときのレポーター分子の反応を調べた。
　その結果、系統番号Ｎｏ．Ｍ１の個体において、最もＳ／Ｎ比に優れており、この系統を炎症レポーターマウスとして確立した。（図８）。

トランスジェニックマウスを用いた炎症反応の可視化
　確立した炎症レポーターマウスの腹腔内に、３ｍｇ／ｋｇ　ｗｔの濃度でＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ　＃Ｌ２６５４）を投与した。投与後０ｈ、４ｈ、２４時間に生体イメージング装置（ＩＶＩＳ）を用いて、ルシフェラーゼ発光を観察した。その結果、全身の組織から、ルシフェラーゼの発光シグナルを捉えることができた（図５）。

　配列番号１~１１：合成ＤＮＡ

Claims (13)

1. 　炎症性サイトカインをコードする遺伝子のプロモーター、レポータータンパク質をコードする遺伝子、前記炎症性サイトカインをコードする遺伝子、及びタンパク質分解シグナル配列をコードする遺伝子を含むベクター。
2. 　炎症性サイトカインがインターロイキン１βである請求項１に記載のベクター。
3. 　レポータータンパク質がルシフェラーゼである請求項１又は２に記載のベクター。
4. 　炎症性サイトカインをコードする遺伝子は、カスパーゼにより認識されるペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含むものである請求項１~３のいずれか１項に記載のベクター。
5. 　請求項１~４のいずれか１項に記載のベクターを含む形質転換体。
6. 　請求項１~４のいずれか１項に記載のベクターが導入されたトランスジェニック非ヒト動物。
7. 　非ヒト動物がマウスである請求項６に記載のトランスジェニック非ヒト動物。
8. 　炎症性刺激によりレポータータンパク質が発光シグナルとして検出される、請求項５に記載の形質転換体又は請求項６若しくは７に記載のトランスジェニック非ヒト動物。
9. 　請求項５に記載の形質転換体又は請求項６~８のいずれか１項に記載のトランスジェニック非ヒト動物を用いて、炎症性刺激により当該形質転換体又はトランスジェニック非ヒト動物に惹起される炎症反応を検出することを特徴とする炎症反応の検出方法。
10. 　炎症性サイトカインをコードする遺伝子は、炎症反応により惹起される転写因子ＮＦ−κＢにより発現されるものである、請求項９に記載の方法。
11. 　炎症性刺激によりレポータータンパク質を発光シグナルとして検出する、請求項９又は１０に記載の方法。
12. 　請求項５に記載の形質転換体又は請求項６~８のいずれか１項に記載のトランスジェニック非ヒト動物に、炎症性刺激下で候補物質を接触させ、炎症反応の有無を指標として抗炎症物質を選択することを特徴とする抗炎症物質のスクリーニング方法。
13. 　請求項５に記載の形質転換体又は請求項６~８のいずれか１項に記載のトランスジェニック非ヒト動物を含む、炎症反応検出用又は抗炎症物質のスクリーニング用キット。

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