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WO2004092377A1 - 新規な機能性ペプチド核酸およびその製法 - Google Patents

新規な機能性ペプチド核酸およびその製法 Download PDF

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WO2004092377A1
WO2004092377A1 PCT/JP2004/005392 JP2004005392W WO2004092377A1 WO 2004092377 A1 WO2004092377 A1 WO 2004092377A1 JP 2004005392 W JP2004005392 W JP 2004005392W WO 2004092377 A1 WO2004092377 A1 WO 2004092377A1
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WO
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functional
fmoc
pna
group
boc
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PCT/JP2004/005392
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Inventor
Hisafumi Ikeda
Madoka Tonosaki
Original Assignee
Credia Japan Co., Ltd.
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Publication date
Application filed by Credia Japan Co., Ltd. filed Critical Credia Japan Co., Ltd.
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Priority to EP04727713A priority patent/EP1614750A4/en
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/001Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof by chemical synthesis
    • C07K14/003Peptide-nucleic acids (PNAs)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Definitions

  • the present invention relates to a novel method for producing a functional peptide nucleic acid oligomer using lysine and an intermediate thereof.
  • Nucleic acids are DNA and RNA that control the genetic information of an organism.
  • peptide nucleic acid is a modified nucleic acid in which the sugar phosphate backbone of the nucleic acid has been converted to an N- (2-aminoethyl) glycine backbone ( Figure 1).
  • the sugar phosphate backbone of DNA / RNA is negatively charged under neutral conditions and has electrostatic repulsion between complementary strands, but the spinal structure of PNA has no charge, so there is no electrostatic repulsion . Therefore, PNA has higher duplex formation ability and higher base sequence recognition ability than conventional nucleic acids.
  • PNA is very stable against nucleases and proteases in vivo and is not degraded, application to gene therapy as an antisense molecule is being studied.
  • DNA microarray technology for high-speed, large-scale systematic analysis of genetic information and “Molecular,” a recently developed probe that can detect specific recognition of nucleotide sequences by fluorescence emission. It can be applied to beacons. Since these all use DNA with poor enzyme resistance as a medium, strict sampling is required when using these techniques. Satisfying this requirement is the key to advance the above technology.
  • PNA monomer units are classified according to the spine structure of PNA, there are two types: Fmoc-type PNA monomer units and Boc-type PNA monomer units. 2).
  • Fmoc means 9-Fluorenylmethoxycarbonyl Boc and tButoxycarbonyl Alloc means Allyloxycarbonyl.
  • PNA has the following Boc-type PNA monomer cuts.
  • a method for finally synthesizing the functional ⁇ a method of polymerizing the functional ⁇ monomer after synthesizing the functional ⁇ monomer by a method using any of the above root ⁇ and route C is industrially required. Is also being established. In other words, it is becoming possible to industrially mass-produce ⁇ functionality used as a probe ⁇ by the method of synthesizing functionality to date. On the other hand, methods for synthesizing functional II have also been improved with the aim of improving cost performance and introducing functional molecules at a very high speed.
  • the method involves synthesizing a functional PNA by introducing the precursor PNA monomer unit into a PNA oligomer and further introducing a functional molecule.
  • the present inventors surprisingly surpassed the above-mentioned problems in the conventional method, and were excellent in cost performance and capable of producing functional molecules at a very high speed. It has been found that a very wide range of functional PNAs can be synthesized that can be introduced into DNA.
  • a PNA monomer unit having adenine, guanine, cytosine or thymine protected by a protecting group was reacted with Fmoc-monoamino acid- B ° C PNA-OH (IV) shown in the figure below to synthesize a PNA oligomer. Later, a functional molecule having a free carboxylic acid was successfully introduced into the PNA oligomer in a synthetic manner.
  • n an integer from 1 to 15
  • another functional molecule can be further introduced after introducing the functional molecule.
  • the functional molecule to be introduced may be a photoresponsive functional molecule, a membrane-permeable functional molecule, an organ-selective functional molecule, a bactericidal functional molecule, a molecule-disruptive functional molecule, an adhesive functional molecule, or a molecular recognition property. It is selected from functional molecules.
  • B is independently of each other, identical or different, adenine, guanine, cytosine or thymine;
  • R is independently of each other, identical or different, an Fmoc group or a functional carboxylic acid derivative; 1 is a hydrogen atom or a functional carboxylic acid derivative, a ⁇ !! is an integer of 0 to 0, and ⁇ 3 , Y or Y 2 and i to Z 5 are each an integer of 0 or more.
  • R 1 is a functional carboxylic acid derivative .
  • DNA has been used as a fluorescent probe for introduction into cells.
  • Oligomers, RNA oligomers, and PNA oligomers are used, but to introduce them into cells, they must naturally pass through cell membranes. However, since the cell membrane has a negative charge on the membrane surface, it is very difficult to introduce a DNA / RNA oligomer that is originally negatively charged.
  • PNA oligomers are electrically neutral, they have been found to be difficult to penetrate the membrane. Therefore, when introducing a PNA oligomer into cells, it is necessary to pretreat the membrane surface to facilitate the introduction, or to introduce the PNA oligomer using a transfection reagent.
  • a fluorescent PNA probe having a membrane permeable function already exists. For example, (1) an oligopeptide having a membrane-permeable function bound to a PNA, and (2) a phospholipid having a membrane-permeable function bound to a PNA.
  • portions other than PNA will be degraded by enzymes such as proteases in the cells and stay in the cells. This means that the excess PNA probe that could not capture the target loses its membrane permeability function and becomes difficult to extracellularly exit in the subsequent washing process, so the gene expression system originally possessed by the cell can be accurately determined. Means that it cannot be expressed in any way.
  • this precursor PNA oligomer is Fmoc- ⁇ -amino acid- B .
  • C Not only PNA-OH is effective, but also a lysine derivative, an essential amino acid, can substitute for its role.Design of a new fluorescent PNA probe that takes into account ease of handling and availability Is expected to be needed in the future.
  • an object of the present invention is to provide a novel method for synthesizing a functional PNA, which is excellent in cost performance and can introduce a functional molecule at an extremely high speed, a compound used therefor, and a novel functional PNA. . DISCLOSURE OF THE INVENTION.
  • a method for producing a functional PNA oligomer which comprises converting a PNA monomer unit having an adenine, guanine, cytosine or thymine protected by a protecting group into a Boc-lysine (B) -lysine represented by the general formula (I).
  • Fmoc) 1 OH Fmoc refers to 9-Fluorenylmethoxycarbonyl
  • Fmoc — lysine Alloc) — OH (where Fmoc refers to 9-Fluorenylmethoxycarbonyl)
  • the functional molecule to be introduced is a photoresponsive functional molecule, a membrane-permeable functional molecule, an organ-selective functional molecule, a bactericidal functional molecule, a molecule-disruptive functional molecule, an adhesive functional molecule, or molecular recognition.
  • the method according to the above (1), wherein the method is selected from sexually functional molecules.
  • the photofunctional molecule is Cy3, Cy5, Bodipy, pyrene, naphthalimide naphthaldiimide, FAM, FITC, ROX, TAMRA or Dabcyl, and the membrane-permeable functional molecule is a water-soluble amino acid derivative. Characterized by the above
  • the protective group for protecting adenine, guanine, cytosine or thymine is a benzyloxycarbyl group (Z group).
  • the solid phase carrier for Fmoc method combines MBHA, chloromethylated polystyrene resin (Merrifield resin), 4-hydroxybenzyl alcohol-modified Merrifield resin (Wang resin), and Boc—amino acid linker Aminomethyl resin (PAM resin), aminomethyl resin with N-Fmoc-N-methoxy linker (Weinreb resin), resin with p-nitrobenzophenone oxime bonded to polystyrene (Oxime resin), The method according to any one of the above (1) to (7), wherein the method is a resin (Trityl resin) tritylated using polystyrene.
  • a) producing a PNA oligomer by reacting a PNA monomer unit with Boc-lysine (Fmoc) -OH in the step of introducing Boc-lysine (Fmoc) -OH into the PNA oligomer;
  • the introduction of a functional molecule into the PNA oligomer is performed by selectively deprotecting the Fmoc group by piperidine treatment.
  • the introduction of a functional molecule into the PNA oligomer is performed by selectively deprotecting the Alloc group by treatment with a zinc acetic acid solution.
  • the present invention provides an almost quantitative photofunctionality by introducing Boc-lysine (Fmoc) -OH or Fmoc-lysine (Alloc) -OH into a PNA oligomer, and then introducing a functional molecule by post synthesis. It has succeeded in synthesizing a PNA oligomer.
  • the manufacturing method according to the present invention is extremely excellent in cost performance.
  • B is independently of each other, identical or different, adenine, guanine, cytosine or thymine;
  • R is independently of each other, identical or different, an Fmoc group or a functional carboxylic acid derivative; 1 is a hydrogen atom or a functional carboxylic acid derivative;
  • R 2 is a derivative containing a hydrogen atom, an amino group, a hydroxyl group, a thiol group or a functional carboxylic acid derivative, and a to f are 0 to ⁇ ⁇ to ⁇ 3 , ⁇ 2 and ⁇ to Z 6 are all integers of 0 or more, X + X 2 + X 3 ⁇ 0, and ⁇ + ⁇ 2 > 0.
  • R is a cell membrane permeable molecule derivative
  • R 1 Is a functional ruponic acid derivative
  • This probe can be broadly divided into a fluorescent labeling region, a cell membrane permeable functional region, and a molecular recognition region, each of which is linked via a linker position (the part indicated by the suffix ⁇ ). You are.
  • the molecular recognition site is synthesized using a commercially available unit.
  • the feature of this product is that Boc-lysine (Fmoc) -OH or Fmoc-lysine (Alloc) -OH is used as a precursor unit in the membrane-permeable functional region in order to introduce functional molecules in a synthetic manner. It is.
  • the precursor unit is commercially available, and it is characterized in that after introducing a plurality of these units side by side, the same functional molecules can be collectively introduced as described above.
  • Such functional molecules include Cy3, Cy5, Bodipy, Naphthalimide, Naphthaldiimide, Flavin, Dabcyl, Biotin, FAM, Rhodamine, TAMRA, ROX, HABA, Pyrene, Optical functional monomer units such as Coumarine type, membrane-permeable functional molecules, organ-selective functional molecules, bactericidal functional molecules, molecular disruptive functional molecules, adhesion functional molecules, or molecular recognition functional molecules, etc. No.
  • the term “functionality” in the present invention refers to not only photo-functionality but also specific properties including membrane permeability, organ selectivity, bactericidal properties, molecular destructive properties, adhesion properties, or molecular recognition properties. Means all of the various functions newly added to the compound by the modification of
  • the term “functional PNAJ” in the present invention refers not only to a PNA monomer directly bonded to each other via a 21 (N-aminoethyl) glycine skeleton, but also to a hydrocarbon chain as a linker and a functional molecule therebetween. It also means those containing a precursory resin skeleton or the like to be introduced.
  • FIG. 1 is a diagram showing the difference between the structures of DNA and PNA and the state of charge.
  • FIG. 2 is a diagram showing the structures of two types of PNA monomer units.
  • the route for synthesizing oligo PNAs according to the present invention is typically
  • MBHA is a methylbenzhydrylamine resin used for peptide synthesis in solid phase Boc, and Wang is a Merrifield resin modified with 4-hydroxybenzyl alcohol. Is as described in [0303] or [0303].
  • the oligomer la is synthesized using Boc-lysine (Fmoc) -OH.
  • a PNA monomer unit having adenine, guanine, cytosine or thymine protected by a Z group (N-benzyloxycarbonyl group) or the like is reacted with a precursor PNA monomer unit to obtain a Boc method.
  • the solid support is not particularly limited as long as it is for the Boc method, but MBHA is particularly preferably used.
  • Ic is obtained by dehydrating and condensing a functional molecule having a free carboxylic acid at the amino group of the lb.
  • the carboxylic acid is not particularly limited, but the use of an aliphatic carboxylic acid is preferable because an aliphatic carboxylic acid is more effective than an aromatic carboxylic acid in terms of reactivity.
  • Deprotection of the Fmoc group by piperidine treatment is suitably performed by taking a certain amount of time. In particular, 20 to 40 minutes was preferred, and most preferably 30 minutes.
  • the type of the condensing agent is not particularly limited, and common condensing agents such as HATU, HBTU and BOP are used in the same manner as in the above-mentioned PNA chain condensation.
  • the functional molecule may be introduced immediately after the condensation of Boc_lysine (Fmoc) -OH, or after the sequential condensation of all the PNA monomer units containing Boc-lysine (Fmoc) -OH. May be.
  • the target PNA oligomer is obtained by simultaneously excision from the carrier resin and deprotection of the Z group.
  • oligomer Ila is synthesized using Fmoc-lysine (Alloc) -OH. Specifically, a PNA 'monomer unit having adenine, guanine, cytosine or thymine protected with a Boc group or the like is reacted with a precursor PNA monomer unit, and the PNA chain is sequentially condensed using a solid support for the Fmoc method. . Extend it.
  • the solid support is not particularly limited as long as it is for the Fmoc method, and Wang is particularly preferably used.
  • a functional molecule having a free carboxylic acid at the amino group of the lib is dehydrated and condensed to obtain lie.
  • the carboxylic acid is not particularly limited, but the use of an aliphatic carboxylic acid is preferable because an aliphatic carboxylic acid is more effective than an aromatic carboxylic acid in terms of reactivity.
  • the deprotection of the Alloc group by treatment with a zinc acetic acid solution is suitably performed by taking a certain time. Ten minutes to one hour were preferred.
  • the type of the condensing agent is not particularly limited, and common condensing agents such as HATU, HBTU and BOP are used in the same manner as in the above-mentioned PNA chain condensation.
  • the introduction of the functional molecule may be performed immediately after the condensation of Fmoc-lysine (Alloc) -OH, or after the sequential condensation of all PNA monomer units including Fmoc-lysine (Alloc) -OH. May be.
  • the target PNA oligomer lid is obtained by simultaneously excision from the carrier resin and deprotection of the Boc group.
  • the functional molecule can be used as it is, unlike the conventional method that requires the synthesis of active esterification used for the synthesis of a functional monomer. Also, since various functional molecules can be introduced after the synthesis of Ila, it is possible to synthesize various parallel PNA probes at high speed, which has been difficult in the past.
  • B is independently of each other, identical or different, adenine, guanine, cytosine or thymine;
  • R is independently of each other, identical or different, an Fmoc group or a functional carboxylic acid derivative; 1 is a hydrogen atom or a functional carboxylic acid derivative;
  • R 2 is a derivative containing a hydrogen atom, an amino group, a hydroxyl group, a thiol group or a functional carboxylic acid derivative, and a to f are 0 to ⁇ X ' ⁇ 3 , blue ⁇ 2 and ⁇ ⁇ 6 are all integers greater than or equal to 0, ⁇ ⁇ + ⁇ 2 + ⁇ 3 ⁇ 0, YJYa X), and ZJ ZS + ZS + ZA + ZS ⁇ O It is.
  • R 1 is a functional carboxylic acid derivative.
  • 2 + Z 2 + Z 3 + Z 4 + Z 5 0 and R 1 is a hydrogen atom.
  • a compound in which a plurality of functional molecules are introduced for example, a compound in which R or R 1 is a cell membrane permeable functional molecule derivative is preferably synthesized.
  • R or R 1 is a cell membrane permeable functional molecule derivative
  • R 1 is a functional carboxylic acid derivative or the like such as a photofunctional molecule, that is, a plurality of sites including a terminal portion.
  • This is a compound in which a functional molecule is introduced into the molecule, and thereby multiple functions are provided.
  • Such a compound can be schematically represented, for example, as follows.
  • Such a compound is suitable in terms of the ease of synthesis and the cost of synthesis.
  • a, b and f are each 0 to L, and are not particularly limited as long as they are integers of L0. For example, even if a ⁇ 6, b ⁇ 4 and f ⁇ 6, There is no problem in both synthesis and practical use.
  • PNA PNA monomer
  • PNA oligomer also include those that include a linker moiety at its terminus and at or within it.
  • Examples of the group constituting the linker moiety include linear or branched hydrocarbons and their ethers, and the like. Linear hydrocarbon groups are preferred in terms of ease of introduction and cost. In particular, a linear hydrocarbon group having 1 to 6 carbon atoms is preferable. Further, the ether compound is suitable for its versatility. Compounds into which the plurality of functional molecules are introduced include, for example, Koch, T .; Hansen, HF; Andersen, P .; Lars en, ⁇ ; Batz, HG; Otteson, K .; 0rum, HJ Peptide Res. 1997 , 49, 80-88.
  • the nucleotide sequence recognition site can be oligomerized by solid phase synthesis using various commercially available PNA monomers.
  • Commercially available Boc_7-aminoheptanoic acid, Boc-6-aminocaproic acid, or the like can be used for the linker at one position.
  • a photofunctional molecule is introduced as the functional molecule of the general formula (III), it is possible to perform fluorescent labeling and to synthesize a compound having other functions.
  • Various fluorescent emission using commercially available active ester type fluorescent labeling compounds such as Cy3, Cy5, Bodipy, pyrene, naphthalimide, naphthaldiimide, FAM, FITC, ROX, TAMRA or Dabcyl as such fluorescent labeling sites
  • the wavelength can be selected, but the fluorescent labeling compound to be introduced is not limited to these.
  • Examples of other functionalities that can be introduced into the compounds of the present invention include membrane permeable functions.
  • Such a membrane-permeable functional site can be similarly introduced by using a compound represented by the above-mentioned general formula (III).
  • Other water-soluble amino acids such as lysine and serine, such as arginine, are mentioned as functional molecules capable of improving membrane permeability.
  • It is also possible to introduce a plurality of amino acids by using Boc-lysine (Fmoc) -OH or Fmoc-lysine (Alloc) -OH.
  • An example of the synthesis is shown in Example 1.
  • the above compound is a model compound of a fluorescent PNA probe having a membrane permeability function according to the present invention, and the present invention is not limited to these compounds.
  • a feature of these probes is that they are completely PNA-type and have complete enzyme resistance.
  • conventional probes having a membrane-permeating function are mainly those in which a peptide chain or a phospholipid having a membrane-permeable function is covalently bonded to PNA, but these known probes have excellent membrane-permeability.
  • the probe which has not recognized the target and has undergone decomposition cannot be completely removed in the washing process.
  • the probe designed this time does not undergo enzymatic degradation even in cells, so probes that do not recognize the target are completely removed during the washing process, enabling accurate quantification of gene expression level It is assumed that.
  • organ-selective functional molecules such as ratatose ⁇ triexex, bactericidal functional molecules such as tanatin ⁇ secopenpine, and molecular recognition functional molecules such as viologen, N-
  • a molecule-destroying functional molecule such as methylhydroxamic acid without limitation, and such a compound can be put into practical use in large quantities at low cost.
  • Ne Boc method (ci.Koch, T .; Hansen, HF; Andersen, P .; Larsen, T .; Bate, HG; Otteson,; 0rum, HJ Peptide Res. 1997, 49, 80-88.)
  • thymine PNA monomer unit (7.7 mg, (20 mmol)
  • condensing agent HBTU (7.6 mg, 20 mmol
  • DIEA 3.5 mL, 20 mL
  • FITC (9.3 mg, 25 mg) was stirred at room temperature for 12 hours in the presence of DIEA (17.4 mg, 100 mmol) for fluorescent labeling. (Design of fluorescent labeling site).
  • the Fmoc group was deprotected by piperidine treatment (20% piperidine in DMF, room temperature for 3 minutes).
  • non-natural type Fmoc-Arg (Mts) -OH (23.1 mg, 40 mmol) was used as a functional carboxylic acid derivative using the condensing agent HBTU (15.2 mg, 40 mmol) and DIEA (7.0 mL, 40 mmol).
  • Condensation introduced a functional molecule at the target position (introduction of membrane permeability function).
  • FITC (9.3 mg, 25 mg) was stirred at room temperature for 12 hours in the presence of DIEA (17.4 mg, 100 mmol) for fluorescent labeling. (Design of fluorescent labeling site).
  • the present invention it is possible to easily and efficiently introduce a wide variety of functional molecules not limited to photofunctional molecules into PNAs, and to construct various PNAs used for gene therapy and the like.
  • the present invention can be used in a wide range of medical industries.

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Abstract

機能性PNAオリゴマーを製造すろ方法において保護されたアデニン、グアニン、シトシンまたはチミンを有するPNAモノマーユニットを、Bocリジン(Fmoc)-OH或いはFmoc-リジン(Alloc)-OHと反応させてPNAオリゴマーを合成した後、該PNAオリゴマーに遊離カルボン酸を有する機能性分子を導入し、さらに前記保護基の脱保護を行うことを含む方法によって、コストパフォーマンスに優れ、かつ機能性分子を超高速に導入することが可能となり、しかも、当該方法によって合成される化合物および前駆体的PNAモノマーユニットとして機能するBocリジン(Fmoc)-OH或いはFmoc-リジン(Alloc)-OHを製造することができる。

Description

明 細 書
新規な機能性ぺプチド核酸おょぴその製法 技術分野
本発明は、 リジンを使用した機能性ぺプチド核酸オリゴマーおよびその中 間体の新規な製造方法に関する。 背景技術
核酸は生物の遺伝情報を司る DNAおよび RNAである。 これに対して、 ペプチド核酸 (PNA) とは、 核酸の糖リン酸骨格を N— (2—アミノエチル) グリシン骨格に変換した修飾核酸である (図 1)。 DNA/RNA の糖リン酸 骨格は中性条件で負電荷を帯びていて相補鎖間の静電的な反発があるが、 PNA の背骨構造はもともと電荷を持たないので静電的な反発がない。 その ため PNAは従来の核酸と 4比較して、 高い二重鎖形成能をもち、 高い塩基 配列認識能を持つ。 さらに PNAは生体内ヌクレアーゼ ·プロテア一ゼに対 し非常に安定で分解されないので、 アンチセンス分子として遺伝子治療に応 用することが検討されている。
従来の DNAを媒体にしていた技術を PNA化することにより、 これまで 克服できなかった DNAの欠点を補うことが可能となった。 例えば、 遺伝情 報の体系的な解析を高速に且つ大量に行うための 「DNA マイクロアレイ技 術」 および塩基配列を特異的に認識したことを蛍光発光により検出できるプ ロープとして最近開発された 「モレキュラービーコン」 に応用することが可 能である。 これらはいずれも酵素耐性に乏しい DNAを媒体とするため、 こ れらの技術を用いるに際しては厳密なサンプリングが要求される。 この要求 を満たすことが、 前記の技術を高度化する上での鍵となっている。
一方 PNA は酔素に対し完全な耐性を持つので、 DNAマイクロアレイ技 術およびモレキュラービーコンにおいて PNAを DNAに代用することによ つて、 前記技術の欠点が克服され、 さらに長所が引き出されるものと期待さ れている。
DNA マイクロアレイ技術およびモレキュラービーコン以外にも PNA化 することにより発展が期待される分野は数多いが、 それらにおいては PNA の効率的な機能化、 すなわち PNAモノマーへの機能性分子の効率的な導入 による新規な PNAモノマーの設計が必要である。
PNAオリゴマーの合成方法には通常の固相ぺプチド合成法を用いるので、 PNA モノマーュニットを PNA の背骨構造によって分類すると、 Fmoc 型 PNAモノマーュニッ トと Boc型 PNAモノマーュニッ トの 2種類が含まれ る (図 2)。
Fmoc型 PNA モノマーュニットの合成方法は既に確立されており、 しか もそのオリゴマーの合成は一般的な DNA 自動合成機によって可能であるた め、 下記のルート
ί化 4】
Figure imgf000003_0001
(Xはグァニン、 チミン、 シトシンまたはアデニンを表す)
によって、 少量スケールでの合成が可能となっている。
なお、 Fmocとは 9-Fluorenylmethoxycarbonyl Bocとは tButoxycarbonyl Allocとは Allyloxycarbonylを旨す。
当初 PNAには下記のような Boc型 PNAモノマーュ-ット
【化 5】
Michael Egholrn, Oie Bucnardt, Peter E.
Nielsen, and Rolf H. Berg
J. Am. Chem. Soc. 1992, 114, 1895-1897.
Figure imgf000003_0002
が採用され、 その後より効率のよい合成方法
【化 6】
Figure imgf000003_0003
が確立された。 しかし、 前述したように取り扱いが容易な Fmoc型が開発さ れたため、 Boc型の使用頻度は減少している。
しかし、 グァニン 'チミン ' シトシン 'アデニン 4 種類の核酸塩基以外 の機能性分子を導入する際、 例えば光機能性分子を導入する際には、 導入す る機能性分子がアル力リ条件に不安定な場合が多いので、 アル力リ条件を使 用しない Boc型 PNA背骨構造の有用性は高い。 「t—ブトキシカルボニルァ ミノェチルァミン及びアミノ酸誘導体の製造方法」 に関しては、 本発明者ら が特願 2000— 268638として既に特許出願中である。
これ以外にも、 光機能性ォリゴ PITA のモノマーュニットの合成例は過去 に 5 例が知られている。 これら全てが上記ルートを用いているが、 その収 率については記載がないか、 または極めて低いものでしかない (Peter E. Nielsen, Gerald Haaiman, Anne B. Eldrup PCT Int. Appl. (1998) WO 985295 Al 19981126, T. A. Tran, R.-H. Mattern, B. A. Morgan (1999) J. Pept. Res, 53, 134-145, Jesper Lohse et al. (1997) Bioconjugate Chem., 8, 503-509, Hans-georg Batz, Henrik Frydenlund Hansen, et al. Pet Int. Appl. (1998) WO 9837232 A2 19980827, Bruce Armitage, Troels Koch, et al. (1998) Nucleic Acid Res., 26, 715— 720)。 また、 用いられる化合物の構 造がアル力リ性条件に比較的安定であることが特徴的であるため、 アル力リ 性条件に不安定な発色団が付くと、 前記従来法と類似の方法、 すなわち下記 ルート A
【化 7】
Figure imgf000004_0001
【化 8】 ルート A
44%
Figure imgf000005_0001
では効率良く合成できないと予想された。
したがって、一般に光機能性分子等の機能性分子は高価な場合が多いため、 より合目的的な機能性 PNA の合成方法、 すなわち、 ①機能性 PNA モノマ 一ュニットの設計における、機能性分子の PNA背骨構造への効率的な導入、 ②コストパフォーマンスを考えた合成ルート、 および③遺伝子診断薬として の応用へ適応させるための、 これらの機能性分子を超高速に導入する方法が 探求された。
上記課題に鑑み、 本発明者らは、 機能性 PNA モノマーの新規製造方法と して、 下記ルート B
【化 9】
Figure imgf000005_0002
.示すように、 ΡΝΑ背骨構造に t一ブトキシカルポニルアミノエチルアミ ン誘導体 6を用いて 1 のペンタフルオロフヱ二ル基を含む活性エステル体 5 と縮合してほぼ定量的に光機能性 PNA モノマー 4 を合成する方法を見出し た。
また、 本発明者らは、 機能性 PNAモノマーを合成する別法として、 PNA 背骨構造に上記 t一ブトキシカルボニルアミノエチルアミン誘導体 6の代わ りにべンジルォキシカルボ二ルー ω—アミノ酸誘導体を用いる方法 (ルート C) を見出した。 これらの方法については、 既に特許出願がなされている。
したがって、 最終的に機能性 ΡΝΑを合成するための方法として、 上記ル ート Β およびルート C のいずれかを用いる方法によって機能性 ΡΝΑ モノ マーを合成した後に、それらを重合する方法が工業的にも確立されつつある。 すなわち、 現在までの機能性 ΡΝΑの合成法によって ΡΝΑブロープとして 用いられる機能性 ΡΝΑを工業的に大量合成することは可能になりつつある。 一方、 コス トパフォーマンスの向上および機能性分子を超高速に導入する ことを目的とした、 機能性 ΡΝΑを合成方法の改良もなされている。 例えば、 前記機能性 ΡΝΑ モノマーュニットを用いる方法とは異なるアプローチとし て、 下記の前駆体的 ΡΝΑ モノマーユニットを利用することによって、 ボス ト合成的に機能性分子を ΡΝΑオリゴマーに導入する方法が報告されている (Oliver Seitz; Tetrahedron Letters 1999, 40, 4161— 4164.)。
【化 10】
Figure imgf000006_0001
当該方法は、 前記前駆体的 PNAモノマーュニットを PNAオリゴマーに 導入した後、 さらに機能性分子を導入することによって機能性 PNA を合成 するものである。
しカゝし、 当該方法においては、 導入できる機能性分子の種類が限定される 等の欠点がある。
例えば、 下図に示すように、 市販されている光機能性分子の succinimide エステルを導入することはできず、 導入するためには Fmoc— Gly等のリン カーをまず導入する必要があるが、 結果として上記化合物は使用しにくいも のになつている。 匕 ii】
Figure imgf000007_0001
ところが、 本発明者らは、 前駆体的 PNA モノマーユニッ トの構造を最適 化することによって、 驚くべきことに、 従来法における前記課題を克服し、 コストパフォーマンスに優れ、 かつ機能性分子を超高速に導入することがで きる、 極めて広範にわたる機能性 PNAを合成できることを見出した。
すなわち、 保護基によって保護されたアデニン、 グァニン、 シトシンまた はチミンを有する PNA モノマーュニットを、 下図に示す Fmoc— 一アミ ノ酸ー B ° C PNA— OH ( I V) と反応させて PNAオリゴマーを合成した後、 該 PNAオリゴマーに遊離カルボン酸を有する機能性分子をボス ト合成的に 導入することに成功した。
l i 12]
Figure imgf000008_0001
(式中、 nは 1〜: 15までの整数を表す)
前記合成方法は、 機能性分子を導入した後に、 さらに別異の機能性分子の 導入を行うことができる。 また、 導入される機能性分子が、、 光応答性機能 分子、 膜透過性機能分子、 臓器選択性機能分子、 殺菌性機能分子、 分子破壊 性機能分子、 癒着性機能性分子、 或いは分子認識性機能分子から選択される ことを特徴とする。
また、 導入する機能性分子として市販の succinimideエステルを使用する 必要がなく、 カルボン酸を有する化合物であれば問題なく利用でき且つ定量 的に導入できるので、 前記合成方法はコストパフォーマンスに極めて優れて いる。
さらに、 前記前駆体的 PNAモノマーュニットを機能性 PNAオリゴマー に導入した後にレジンを分割することにより、 それぞれのレジンに異なった 機能性分子を導入することができるので、 極めて高速な機能性 PNAオリゴ マーの合成手法を開発することが可能となる。
この方法によって効率的な合成が可能になる機能性 PNAオリゴマーの例 として、 下記一般式 (V )
【化 13】
Figure imgf000008_0002
(式中、 Bは、 互いに独立し、 同一または異なって、 アデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンであり、 Rは、 互いに独立し、 同一または異なって、 Fmoc 基または機能性カルボン酸誘導体であり、 R1 は、 水素原子または機 能性カルボン酸誘導体であり、 a〜!!は 0〜10の整数であり、 〜 3、 Yい Y2 およぴ i〜Z 5 はいずれも 0以上の整数であり、 :^ +:¾ + 3≥0であ り、 Y +Y^ Oであり、 τ + ζ2 + ζ3 + ζ4 + ζ5≥οである。 ただし、 χ, +χ2
3 および ζ12345 が同時に 0 であることはなく、 X, +χ2 + Χ3 = 0 の場合、 R1 は機能性カルボン酸誘導体である。) で表される化合 物において、 Ζ1 + Ζ2345 = 0 であり、 R 1 が水素原子である化合 物を挙げることができる。
ところで、細胞中に導入するためのに蛍光プローブとして、 これまで DNA オリゴマー · RNAオリゴマー · PNAオリゴマーが利用されているが、 これ らを細胞中に導入するためには、 当然ながら細胞膜を通過させなければなら ない。 しかし、 細胞膜は膜表面が負電荷を帯ぴているため、 元々負に帯電し ている DNA/RNAォリゴマーを導入するのは非常に困難である。
一方 PNAオリゴマ一は電気的に中性であるが、 膜透過しにくいという結 果が得られている。 したがって、 PNA オリゴマーを細胞内に導入するに際 しては、 膜表面を前処理してその導入をしやすく したり、 あるいはトランス フエクション試薬を用いて導入せざるを得ないのが現状である。
しかし、 そのような処理を施して PNAオリゴマーを導入した場合におい てプローブの機能が発揮されたとしても、 本来生体が示す挙動を正確に表現 していることは必ずしも保証されない。 しかも、 これは細胞 1 個の場合で あり、 多細胞 (個体) での利用に至っては到底不可能である。
このような現状および観点から、 膜透過性機能を有する蛍光 PNAプロ一 ブの開発が有用であると考えられている。
なお、 膜透過性機能を有する蛍光 PNAプローブは既に存在する。 例えば、 ①膜透過性機能を有するオリゴぺプチドを PNAに結合させたもの、 ②膜透 過性機能を有するリン脂質を PNAに結合させたものが挙げられる。 しかし ながら、 これらは膜透過した後細胞内においてプロテアーゼ等の酵素により PNA 以外の部分が分解され、 細胞内に滞留してしまうことが予想される。 このことは、 ターゲットを捕捉出来なかった過剰な PNAプローブが膜透過 性機能を失い、 その後の洗浄過程で細胞外に出にくくなることにつながるた め、 本来細胞が持っている遺伝子発現系を正確に表現できないことを意味す る。
ところが、 本発明者らは、 Fmoc— ω—アミノ酸一 B ° C PNA— OH を含有 した前駆体的 PNAオリゴマーを用いて、 膜透過性機能を有するアミノ酸誘 導体をボスト合成的に導入することにより、 煩雑な前処理 ·後処理を含まな い、 すなわち生きた細胞をそのまま用いて遺伝子発現系を正確に分析できる 新規蛍光 PNAプローブの設計に成功した。
しかし、 この前駆体的 PNAオリゴマ一は Fmoc— ω—アミノ酸一 BC PNA - OH のみが有効であるわけでなく、 必須アミノ酸であるリジン誘導体でも その役割を代行することが可能で、 扱いやすさ ·入手のしゃすさを考慮に入 れた新規蛍光 PNAプローブの設計が今後必要になってくると予想される。
したがって、 本発明は、 コストパフォーマンスに優れ、 かつ機能性分子を 超高速に導入することができる、 機能性 PNAの新規合成方法およびそれに 用いる化合物、 ならびに新規機能性 PNAを提供することを目的とする。 発明の開示 .
上記課題に鑑み研究を重ねた結果、 本発明者らは、 前駆体的 PNA モノマ 一ユニットの構造を最適化することによって、 驚くべきことに、 従来法にお ける前記課題が克服され、 かつ極めて広範にわたる機能性 PNA を合成でき ることを見出し、 以下のような本発明を完成するに至った。
( 1 ) . 機能性 PNA オリゴマーを製造する方法であって、 保護基によつ て保護されたアデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンを有する PNA モ ノマーユニットを、 一般式 ( I ) による Boc—リジン (Fmoc) 一 OH (尚、 Fmocとは 9-Fluorenylmethoxycarbonylを示す。)、或いは下記の一般式 I I ) に よ る Fmoc — リ ジ ン ( Alloc ) — OH (尚、 Fmoc と は 9-
Fluorenylmethoxycarbonyl、 Boc と は tButoxycarbonyl、 Alloc と は Allyloxycarbonyl を示す。) と反応させて PNA オリゴマーを合成した後、 該 PNAオリゴマーに遊離カルボン酸を有する機能性分子を導入し、 さらに 前記保護基の脱保護を行うことを含む、 前記方法。
( 2 ) . 機能性 PNA オリゴマーを製造する方法は、 機能性分子を導入し た後に、 さらに別異の機能性分子の導入を行うことを特徴とする前記 (1 ) の方法。
( 3 ) . 導入される機能性分子が、光応答性機能分子、膜透過性機能分子、 臓器選択性機能分子、 殺菌性機能分子、 分子破壊性機能分子、 癒着性機能性 分子、或いは分子認識性機能分子から選択されることを特徴とする前記( 1 ) の方法。
( 4 ) . 導入される機能性分子が、 光機能性分子および膜透過性機能分子 を含むことを特徴とする前記 (2 )、 ( 3 ) の方法。
( 5 ) .光機能性分子が、下記の Cy3、 Cy5、 Bodipy, pyrene、 naphthalimide naphthaldiimide, FAM、 FITC、 ROX、 TAMRA または Dabcyl であり、 膜透過性機能分子が水溶性ァミノ酸誘導体であることを特徴とする前記
( 4 ) の方法。
【化 14】
Figure imgf000010_0001
【化 16】
Pyrene
Figure imgf000011_0001
【化 Γ7】
Figure imgf000011_0002
Figure imgf000012_0001
Figure imgf000012_0002
【化 23】
Figure imgf000013_0001
(6) . アデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンを保護する保護基が、 ベンジルォキシカルボュル基 (Z基) であることを特徴とする前記 (1) 〜
(5) のいずれかの方法。
(7) . PNAオリゴマーの合成が、 Boc法用及び Fmoc法用固相担体を用 いた PNA鎖における縮合 ·伸長を含むことを特徴とする前記 (1) 〜 (6) のいずれかの方法。
( 8 ) . Boc 法用固相担体が固相 Boc 法でペプチド合成に使用する methylbenzhydrylamine樹脂(MBHA)であることを特徴とする、前記( 1 ) 〜 (7) のいずれかに記載の方法。
(9) . Fmoc法用固相担体が MBHA、 ポリスチレンをクロロメチル化し た樹脂 (Merrifield 樹脂)、 4ーヒ ドロキシベンジルアルコールで修飾した Merrifield 樹脂 (Wang樹脂)、 Boc—アミノ酸一リンカ一を結合させたアミ ノメチル樹脂 (PAM 樹脂)、 N— Fmoc— N—メ トキシーリンカ一を結合させ たアミノメチル樹脂 (Weinreb樹脂)、 ポリスチレンに p—二トロべンゾフエ ノンォキシムを結合させた樹脂 (Oxime 樹脂)、 ポリスチレンを利用してト リチル化した樹脂 (Trityl 樹脂) であることを特徴とする前記 (1) 〜 (7) のいずれかに記載の方法。
(1 0) . 遊離カルボン酸を有する機能性分子の導入が、 Boc 法における Fmoc基をピペリジン処理によって或いは Fmoc法における Alloc基を亜鉛 酢酸溶液処理によって、 選択的に脱保護して得られた 1 級ァミノ基との脱 水縮合によって行われることを特徴とする前記 (1) 〜 (9) のいずれかに 記載の方法。
(1 1) . 下記 a) 〜 :
a) Boc—リジン (Fmoc) -OH を PNA オリゴマー中に導入する工程に おいて、 PNA モノマーユニットを、 Boc—リジン (Fmoc) -OH と反応さ せて PNAオリゴマーを製造すること ;
b) 前記 PNAオリゴマーから機能性 PNAオリゴマーを製造する工程にお いて、 PNA オリゴマーへの機能性分子の導入が、 Fmoc 基をピペリジン処 理によって選択的に脱保護して得られた 1 級ァミノ基との脱水縮合によつ て行われること、 の 1または 2以上を含むこと ;
c) Fmoc—リジン (Alloc) 一 OHを PITAオリゴマ一中に導入する工程に おいて、 PNAモノマーユニットを、 Fmoc—リジン (Alloc) — OHと反応さ せて PNAオリゴマーを製造すること ;および
d) 前記 PNAオリゴマーから機能性 PNAオリゴマーを製造する工程にお いて、 PNAオリゴマーへの機能性分子の導入が、 Alloc基を亜鉛酢酸溶液処 理によって選択的に脱保護して得られた 1 級ァミノ基との脱水縮合によつ て行われること、 の 1 または 2 以上を含むことを特徴とする前記 (2) 記 載の方法。 ,
(1 2). 下記一般式 ( I I I )
【化 24】
Figure imgf000014_0001
(式中、 Βは、 互いに独立し、 同一または異なって、 アデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンであり、 Rは、 互いに独立し、 同一または異なって、 Fmoc 基または機能性カルボン酸誘導体であり、 R1 は、 水素原子または機 能性カルボン酸誘導体であり、 R2 は、 水素原子、 アミノ基、 水酸基、 チォ 一ル基を含む誘導体または機能性カルボン酸誘導体であり、 a〜fは 0〜∞の 整数であり、 〜 Υ2 および Zi Zs はいずれも 0以上の整数であ り、 +X2 +X3≥0であり、 +Y2 >0であり、 τ +Ζ2345≥0 である。 ただし、 Χ123 および +Ζ2345 が同時に 0 で あることはなく、 X1+X2+X3=0 の場合、 R1 は機能性カルボン酸誘導体 である。) で表される化合物。
(1 3) . + 2+ 3=3であり、 ^+¥2=15であることを特徴とする、 前記 (1 2) 記載の化合物。
(14) . =3 であり、 Υ1 =15 であることを特徴とする、 前記 (1 3) 記載の化合物。
(1 5) . R または R1 が細胞膜透過性機能分子誘導体であることを特徴 とする、 前記 (14) 記載の化合物。
(1 6) . R1 が機能性カルボン酸誘導体であることを特徴とする、 前記 (1 5) 記載の化合物。
( 1 7) . Χ11 =1 であることを特徴とする、 前記 ( 1 5) または ( 1 6) 記載の化合物。
(18) . Υχ≥2 であり、 Z2=l であることを特徴とする、 前記 (1 5) 〜 (1 7) のいずれかに記載の化合物。 ( 1 9). a≤6 であり、 b≤4 であり、 f≤6 であることを特徴とする、 前 記 (1 5) 〜 (1 8) のいずれかに記載の化合物。
(2 0). R1 が光機能性カルボン酸誘導体であることを特徴とする、 前 記 (1 5) 〜 (1 9) のいずれかに記載の化合物。
本発明は、 Boc—リジン (Fmoc) 一 OH或いは Fmoc—リジン (Alloc) 一 OH を PNAオリゴマーに導入した後、 機能性分子をボスト合成的に導入す ることにより、 ほぼ定量的に光機能性 PNAオリゴマーを合成できることに 成功したものである。
尚、 Fmoc、 Boc、 Alloc の各趣旨については、 証拠を説明する前記 (1) において示した通りである。
上記特徴により、 本発明の製造方法においては、 導入する機能性分子とし て市販の succinimideエステルを使用する必要がなく、 カルボン酸を有する 化合物であれば問題なく利用でき且つ定量的に導入できる。 そのため、 本発 明による製造方法はコストパフォーマンスに極めて優れている。
また、 前記前駆体的 PNAモノマーュニットを機能性 PNAオリゴマーに 導入した後にレジンを分割することにより、 それぞれのレジンに異なった機 能性分子を導入することができる。 したがって、 本発明による製造方法によ れば、 極めて高速な機能性 PNAオリゴマーの合成手法を開発することが可 能となる。 IV
本発明の方法によって効率的な合成が可能になる機能性 PNAオリゴマー の例として、 下記一般式 ( I I I )
【化 25】
Figure imgf000015_0001
(式中、 Bは、 互いに独立し、 同一または異なって、 アデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンであり、 Rは、 互いに独立し、 同一または異なって、 Fmoc 基または機能性カルボン酸誘導体であり、 R1 は、 水素原子または機 能性カルボン酸誘導体であり、 R2 は、 水素原子、 アミノ基、 水酸基、 チォ 一ル基を含む誘導体または機能性カルボン酸誘導体であり、 a〜f は 0〜∞の 整数であり、 Χχ〜Χ3、 Υい Υ2 およぴ 〜Z6 はいずれも 0以上の整数であ り、 X +X2 +X3≥0であり、 Υ +Υ2 >0であり、 +Ζ2345≥0 である。 ただし、 Χχ +X2 +X3 および +Z2 +Z3 +Z4 +Z5 が同時に 0 で あることはなく、 Xx +X2 +X3 =0 の場合、 R1 は機能性カルボン酸誘導体 である。) で表される化合物において、 Zx +Z2 +Z3 +Z4 +Z5 =0 であり、 R 1 が水素原子である化合物を挙げることができる。 本発明によれば、 前記一般式 (I ) で表される化合物において同一または 異なる機能性分子を、 任意の複数の位置に導入することも可能となる。 すな わち、 前記前駆体的 PNAモノマーュニット sを用いて PNAオリゴマーを 導入した後、 ピペリジン処理或いは亜鉛酢酸溶液処理のいずれかと機能性分 子のボスト合成的導入を一括して行うことによるものであるが、これは PNA オリゴマーの細胞膜透過機能を向上させるアンテナぺディアを高速に設計す る上で、 欠かせないものである。 この点においても、 本発明による方法は極 めて優れたものである。
このように製造される化合物の例として、 前記一般式 ( I ) において、 zx + Z2 +Z3 +Z4 +Z5 > 0であり、 Rが細胞膜透過性分子誘導体であり、 R1 が 機能性力ルポン酸誘導体であるものが挙げられる。
このプローブは大きく蛍光標識領域 ·細胞膜透過性機能領域 ·分子認識領 域の 3つに分けることができ、 それぞれをリンカ一部位 、τ の添字 付きで表される部分) を介して結合させた形をしている。
蛍光標識化合物は市販のものも、 既に本発明者らが PCT 出願を行った新 規蛍光標識化 ΡΝΑモノマーュニットも用いることができる。
分子認識部位は市販の ΡΝΑュニットを用いて合成する。 このものの特徴 は、 機能性分子をボスト合成的に導入するために前駆体ュニットとして Boc 一リジン (Fmoc) —OH 或いは Fmoc—リジン (Alloc) —OH を膜透過性 機能領域部に用いていることである。 該前駆体ュニットは市販されており、 これを複数個並べて導入した後、 前記し'たように同一機能性分子を一括導入 できることを特徴としている。
したがって、 本発明によれば、 光機能性分子に限定されることない、 多種 多様な機能性分子を、 PNA 中に容易かつ極めて効率的に導入することがで きるようになる。
このような機能性分子として、 Cy3型、 Cy5型、 Bodipy型、 Naphthalimide 型、 Naphthaldiimide型、 Flavin型、 Dabcyl型、 Biotin型、 FAM型、 Rhodamine 型、 TAMRA型、 ROX型、 HABA型、 Pyrene型、 Coumarine型等の光機 能性モノマーユニット、 膜透過性機能分子、 臓器選択性機能分子、 殺菌性機 能分子、 分子破壊性機能分子、 癒着性機能性分子、 或いは分子認識性機能分 子等が挙げられる。
すなわち、 本発明における 「機能性」 の語は、 光機能性のみならず、 膜透 過性、 臓器選択性、 殺菌性、 分子破壊性、 癒着性、 或いは分子認識性等を含 む、 ある特定の修飾を行うことによって化合物に新たに付与される種々の機 能の全てを意味するものである。
さらに、 本発明における 「機能性 PNAJ の語は、 PNAモノマー同士が 2 一 (N—アミノエチル) グリシン骨格によって直接結合したもののみならず、 その間にリンカ一としての炭化水素鎖と機能性分子を導入する前駆体的なリ ジン骨格等を含むものも意味するものである。 図面の簡単な説明
図 1は、 DNAと PNAの構造および荷電の状況の違いを表す図である 図 2は、 2種類の PNAモノマーュニットの構造を表す図である。
ここで、 本発明による方法の特徴を更に詳細に説明する。 発明を実施するための最良の形態
本発明によるオリゴ PNAを合成するルートは、 典型的には、 下図
Figure imgf000017_0001
o :機能性分子 に示すとおりである。
尚 、 MBHA は 、 固 相 Boc で ペ プ チ ド 合成 に 使 用 す る methylbenzhydrylamine 樹脂のことであり、 Wang は、 4ーヒ ドロキシべ ンジルアルコールで修飾した Merrifield 樹脂のことであり、 これらについ ては、 【 0 0 3 6】、 または [ 0 0 3 7 ] において述べた通りである。
【 0 0 0 1】
次に、 【化 26】 に関わる製造工程のうち、 下図 【化 28】
Figure imgf000018_0001
に示すように、 Boc—リジン (Fmoc) - OH を用いて、 オリゴマー la を合 成する。 具的には、 Z 基 (N—べンジルォキシカルボニル基) 等で保護され たアデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンを有する PNAモノマーュニ ットを、 前駆体的 PNAモノマーユニットと反応させ、 Boc法用固相担体を 用いて PNA鎖を逐次縮合 ·伸長せしめる。
PNA鎖の縮合においては、 予め Boc基を脱離しておく必要があるが、 そ の方法に制限はなく、 一般的な方法が用いられる。 それに続く縮合には、 HATU、 HBTUおよび BOP等の一般的な縮合剤が用いられる。
また、 固相担体に関しては、 Boc法用のものであれば特に制限はないが、 特に MBHAが好適に用いられる。
次に、 【化 26】 に関わる製造工程のうち、 下図
【化 29】
Figure imgf000018_0002
ノ基とし、 lbを得て、 さらに、 下図 [化 30】
Figure imgf000019_0001
に示すように、 該 lb の前記アミノ基に遊離カルボン酸を有する機能性分子 を脱水縮合して Icを得る。
前記カルボン酸として特に制限はないが、 反応性の点においては脂肪族力 ルボン酸が芳香族カルボン酸を上回るため、 脂肪族カルボン酸を用いると製 造の効率が高く好ましい。
また、 ピぺリジン処理による Fmoc基の脱保護は、 ある程度の時間をかけ ることによって好適に行われる。 特に、 20〜40 分が好適であり、 最も好適 には 30分であった。
縮合剤の種類に特に制限はなく、 前記 PNA鎖の縮合と同様に、 HATU、 HBTUおよび BOP等の一般的な縮合剤が用いられる。
なお、 機能性分子の導入は、 Boc_リジン (Fmoc) — OHを縮合した後、 直ちに行ってもよく、 あるいは、 Boc—リジン (Fmoc) —OHを含む全ての PNAモノマーュニットを逐次縮合した後に行ってもよい。
最後に、 【化 26】 に関わる製造工程のうち、 下図
【化 31】
Figure imgf000019_0002
O :機能性分子 に示すように、 担体レジンからの切り出しと Z 基の脱保護を同時に行うこ とによって、 目的とする PNAオリゴマー を得る。
切り出しおよび脱保護は、 Fmoc 基の脱保護の後に行われる限りにおいて はその条件に特に制限はない。 例えば TFA/ TFMSA/ p - Cresol / Thioanisole = 60/25/10/10 のような- 般的な条件において好適に行わ れる。
次に、 【化 27】 に関わる製造工程のうち 下図
【化 32】
Figure imgf000020_0001
に示すように、 Fmoc—リジン (Alloc) - OH を用いて、 オリゴマー Ila を 合成する。 具的には、 Boc基等で保護されたアデニン、 グァニン、 シトシン またはチミンを有する PNA'モノマーュニットを、 前駆体的 PNAモノマー ュニットと反応させ、 Fmoc法用固相担体を用いて PNA鎖を逐次縮合 .伸 長せしめる。
PNA鎖の縮合においては、 予め Fmoc基を脱離しておく必要があるが、 その方法に制限はなく、 一般的な方法が用いられる。 それに続く縮合には、 HATU、 HBTUおよび BOP等の一般的な縮合剤が用いられる。
また、 固相担体に関しては、 Fmoc法用のものであれば特に制限はない力 特に Wangが好適に用いられる。
次に、 【化 27】 に関わる製造工程のうち、 下図
【化 33】
Figure imgf000021_0001
に示すように、 該 libの前記アミノ基に遊離カルボン酸を有する機能性分子 を脱水縮合して lieを得る。
前記カルボン酸として特に制限はないが、 反応性の点においては脂肪族力 ルボン酸が芳香族カルボン酸を上回るため、 脂肪族カルボン酸を用いると製 造の効率が高く好ましい。
また、 亜鉛酢酸溶液処理による Alloc基の脱保護は、 ある程度の時間をか けることによって好適に行われる。 10分〜 1時間が好適であった。
縮合剤の種類に特に制限はなく、 前記 PNA鎖の縮合と同様に、 HATU、 HBTUおよび BOP等の一般的な縮合剤が用いられる。
なお、 機能性分子の導入は、 Fmoc—リジン (Alloc) — OHを縮合した後、 直ちに行ってもよく、 あるいは、 Fmoc-リジン (Alloc) —OH を含む全て の PNAモノマーュニットを逐次縮合した後に行ってもよい。
最後に、 〖化 27】 に関わる製造工程のうち、 下図 【化 35】
Figure imgf000022_0001
に示すように、 担体レジンからの切り出しと Boc 基の脱保護を同時に行う ことによって、 目的とする PNAオリゴマー lidを得る。
切り出しおよび脱保護は、 Fmoc 基の脱保護の後に行われる限りにおいて はその条件に特に制限はない。 例えば、 TFA/p— Cresol = 95Z5 のような 一般的な条件において好適に行われる。
上記のように、 本発明による方法においては、 従来の機能性モノマー合成 に用いる活性エステル化の合成を要する方法とは異なり、 機能性分子をその まま利用できる。 またー且 Ilaを合成した後に種々の機能性分子が導入可能 であるため、 従来困難であった高速かつ多様な並列 PNAプローブ合成が可 能である。
Boc—リジン (Fmoc) —OH或いは Fmoc—リジン (Alloc) - OHと PNA 鎖を有する分子との反応を含む本発明による方法によれば、 下記一般式 ( I I I )
Figure imgf000022_0002
(式中、 Bは、 互いに独立し、 同一または異なって、 アデニン、 グァニン、 シトシンまたはチミンであり、 Rは、 互いに独立し、 同一または異なって、 Fmoc 基または機能性カルボン酸誘導体であり、 R1 は、 水素原子または機 能性カルボン酸誘導体であり、 R2 は、 水素原子、 アミノ基、 水酸基、 チォ 一ル基を含む誘導体または機能性カルボン酸誘導体であり、 a〜f は 0〜∞の 整数であり、 X 'Χ3、 Υい Υ2 および 〜Ζ6 はいずれも 0以上の整数であ り、 χχ23 ≥0であり、 YJYa X)であり、 ZJ ZS + ZS + ZA + ZS ^ O である。 ただし、 Xi+Xs+Xs および ¾ +¾ +¾ +Z4 +Z5 が同時に 0 で あることはなく、 + +X3=0 の場合、 R1 は機能性カルボン酸誘導体 である。) で表される化合物において、 ¾ +Z2 +Z3 +Z4 +Z5 =0 であり、 R 1 が水素原子である化合物を挙げることができる。
また、 前記一般式 ( I I I ) で表される化合物において、 複数の機能性分 子が導入されたものとして、 例えば、 Rまたは R1 が細胞膜透過性機能分子 誘導体であるものが好適に合成される。 このような化合物は、 典型的には、 R が細胞膜透過性機能分子誘導体等であり、 R1 が光機能性分子等の機能性 カルボン酸誘導体等であるもの、 すなわち、 末端部を含む複数部位に機能性 分子が導入され、 それらによって複数の機能が付与された化合物である。 こ のような化合物は、 例えば下記のように模式化することができる。
【化 37】
Figure imgf000023_0001
このような化合物は、 例えば前記一般式 ( I I I ) tこおレヽて、 x1 =z, =z2 =1 であり、 かつ Y1≥2 である化合物である。 このような化合物は合成の しゃすさおよぴ合成コストの面等において好適である。
上記化合物において、 a、 bおよび f はそれぞれ 0〜: L0の整数であれば特 に限定されないが、 例えば a≤6 であり、 b≤4 であり、 f≤6 であるもので あっても、 合成上および実用上のいずれにおいても支障はない。
リンカー部位を導入することによって、 個々の機能性部位および塩基配列 認識領域の干渉を防ぎ、 分子の機能をより確実なものにすることができる。 本明細書における PNA、 PNAモノマーおよび PNAオリゴマーの語には、 リンカー部位をその末端およびノまたは内部に含むものも包含される。
これらの部位または領域間の相互干渉を防そための部位としては、 前記リ ンカー部位のみならず、 一般式 ( I I I ) における f〜h を、 所望に応じて 選択することによっても可能である。
リンカー部位を構成する基としては、 直鎖状または分枝状の炭化水素およ びそれらのエーテル体等が挙げられるが、 直鎖状炭化水素基は導入の容易さ およびコストなどの面から好適であり、 特に炭素数 1〜6 の直鎖状炭化水素 基が好適である。 また、 エーテル体は、 その汎用性において好適である。 前記複数の機能性分子が導入された化合物は、 例えば Koch, T. ; Hansen, H.F. ; Andersen, P. ; Lars en, Τ·; Batz, H.G.; Otteson, K. ; 0rum, H. J. Peptide Res. 1997, 49, 80-88.を利用して好適に合成される。
塩基配列認識部位は、 市販の各種 PNA モノマーを用いて固相合成により オリゴマー化することができる。 リンカ一部位には、 市販の Boc _ 7—アミ ノヘプタン酸、 Boc— 6—アミノカプロン酸等を用いることができる。
一般式 ( I I I ) の機能性分子として光機能性分子を導入すれば、 蛍光標 識することが可能であり、 かつ他の機能も有する化合物を合成することがで きる。 このような蛍光標識部位として、 市販の Cy3、 Cy5、 Bodipy、 pyrene、 naphthalimide , naphthaldiimide , FAM、 FITC、 ROX、 TAMRA または Dabcyl 等の市販の活性エステル型蛍光標識化合物を用いて、 多様な蛍光発 光波長を選択することが可能であるが、 導入される蛍光標識化合物はこれら に限定されるものではない。
本発明の化合物に導入し得る他の機能性の例としては、 膜透過性機能が挙 げられる。 このような膜透過性機能部位は、 前回特許前記一般式 ( I I I ) で表される化合物を用いることにより、 同様に導入することができる。 膜透 過性を向上させることができる機能性分子としてアルギユンが挙げられる力 リシンおょぴセリン等の他の水溶性アミノ酸も好適に用いることができる。 また、 Boc—リジン (Fmoc) — OH或いは Fmoc—リジン (Alloc) — OH を利用することによって、 複数個のアミノ酸を導入することも可能である。 その合成例は実施例 1 に示した。 しかしながら、 上記化合物は本発明によ る膜透過性機能を有する蛍光 PNAプローブのモデル化合物であり、 本発明 はこれらに限定されるものではない。
これらのプローブの特徴は、 「全て PNA型になっているので、 完全な酵 素耐性を有すること」 である。 すなわち、 これまでの膜透過性機能を有する プローブは、 PNA と膜透過性機能を有するペプチド鎖あるいはリン脂質を 共有結合させたものが主流であつたが、 これらの既知のプローブは優れた膜 透過性機能を有するものの、 ー且細胞内に入ると酵素群によりぺプチド鎖ぁ るいはリン脂質が分解されることが予想される。 したがって、 これらは、 タ ーゲットを認識していない分解を受けたプローブを洗浄過程で完全に取り除 くことができないという欠点を有する。
これに対して、 今回設計したプローブは、 細胞内においても酵素分解を受 けないため、 ターゲットを認識していないプローブは洗浄過程で完全に取り 除かれるため、 正確な遺伝子発現量の定量を可能とするものである。
なお、 これらの機能性を有する化合物以外にも、 ラタ トースゃトリスエツ クス等の臓器選択機能性分子、 タナチンゃセク口ピン等の殺菌機能性分子お よびビオローゲン等の分子認識機能性分子、 N-メチルヒ ドロキサム酸等の 分子破壊性機能分子等も本発明によれば制限なく導入することが可能であり、 そのような化合物を、 大量に低コストで実用に供することが可能になる。 実施例
以下に実施例を用いて本発明をさらに詳細に説明するが、 本発明の範囲は これに限られるものではない。
(実施例 1) 膜透過性機能を有する蛍光 PNAプローブの合成
【化 38】
Figure imgf000025_0001
ネ 準的 Boc法 (ci. Koch, T.; Hansen, H.F.; Andersen, P.; Larsen, T.; Bate, H.G.; Otteson, ; 0rum, H. J. Peptide Res. 1997, 49, 80-88.) ίこ従レヽ、 ま ず、 固相担体 ΜΒΗΑ (50 mg) にチミン PNAモノマーユニット (7.7 mg、 20 mmol)、 縮合剤 HBTU (7.6 mg、 20 mmol) と DIEA (3.5 mL、 20 mL) を用いて逐次伸長反応を行った (塩基配列認識領域の設計)。
次レ、で、リンカー用 ω—ァミノ酸一 Boc— 7— aminoheptanoic Acid (5.2 m 20 mmol) , Fmoc- Ahx-B 0 c PNA- OH (10.0 mg、 20 mmol) と再度 Boc - 7 - aminoheptanoic Acidを、 縮合剤 HBTU (7.6 mg, 20 mmol) と DIEA (3.5 mg、 20 mmol) を用いて順次縮合させた (リンカ一部位と膜透過性 機能領域の設計)。
全てのュニッ トを逐次縮合した後、 ピぺリジン処理 (20%piperidine in DMF、 室温 3分) して Fmoc基を脱保護した。 次いで、 機能性カルボン酸 誘導体として天然型 Fmoc— Arg(Mts)— OH (23.1 mg、 40 mmol) を縮合 剤 HBTU (15.2 mg、 40 mmol) と DIEA (7.0 mL、 40 mmol) を用いて縮 合し目的の位置に機能性分子を導入した (膜透過性機能の導入)。
これをピペリジン処理 (20%piperidine in DMF、 室温 3分) して Fmoc 基を脱保護した後、 再度天然型 Fmoc— Arg(Mts)— OH (23.1 mg 40 mmol) を縮合剤 HBTU (15.2 mg、 40 mmol) と DIEA (7.0 mL、 40 mmol) を用 いて縮合し目的の位置に機能性分子を導入した。 これをもう一度繰り返した (膜透過性機能の追加導入)。
TFA処理 (95% TFA/5% m- cresol) により Boc基を脱保護した後、 FITC (9.3 mg、 25 mg) を DIEA (17.4 mg、 100 mmol) 存在下、 室温で 12時間攪拌し蛍光標識化した (蛍光標識部位の設計)。
最後にピぺリジン処理(2哨 piperidinein D肝、室温 3分) して残る Fmoc 基を脱保護した後、 常法 (TFA/TFMSA/p— cresol/thioanisol = 60/25 /10/ 10) により固相担体からの切り出しを行い、 後処理して、 目的物を 得た。 MALDI-TOF MS: calcd. 6373.0231 (M + H+ ) .
(実施例 2 ) 膜透過性機能を有する蛍光 PNAプローブの合成
【化 39 ]
Figure imgf000027_0001
標準的 Boc法 (cf. Koch, T.; Hansen, H.F.; Andersen, P. ; Larsen, T. ; Batz, H.G.; Otteson, K.; 0rum, H. J. Peptide Res. 1997, 49, 80-88.) 【こ従レヽ、 ま ず、 固相担体 MBHA (50 mg) にチミン PNAモノマーユニット (7.7 mg、 20 mmol) s 縮合剤 HBTU (7.6 m , 20 mmol) と DIEA (3.5 mL、 20 mL) を用いて逐次伸長反応を行った (塩基配列認識領域の設計)。
次レ、で、リンカー用 ω—アミノ酸ー Boc _ 7— aminoheptanoic Acid (5.2 mg、 20 mmol) N Fmoc - Ah - B 0 c PN A- OH ( 10.0 mg、 20 mmol) と再度 Boc 一 7— aminoheptanoic Acidを、縮合剤 HBTU (7.6 mg, 20 mmol) と DIEA (3.5 mg、 20 mmol) を用いて順次縮合させた (リンカ一部位と膜透過性 機能領域の設計)。
全てのュ-ットを逐次縮合した後、 ピぺリジン処理 (20 % piperidine in DMF、 室温 3分) して Fmoc基を脱保護した。 次いで、 機能性カルボン酸 誘導体として非天然型 Fmoc— Arg(Mts)— OH (23.1 mg、 40 mmol) を縮 合剤 HBTU ( 15.2 mg、 40 mmol) と DIEA (7.0 mL、 40 mmol) を用いて 縮合し目的の位置に機能性分子を導入した (膜透過性機能の導入)。
これをピペリジン処理 (20%piperidine in DMF 室温 3分) して Fmoc 基を脱保護した後、 再度非天然型 Fmoc— Arg(Mts)— OH ( 23.1 mg、 40 mmol) を縮合剤 HBTU ( 15.2 m , 40 mmol) と DIEA (7.0 mLN 40 mmol) を用いて縮合し目的の位置に機能性分子を導入した。 これをもう一度繰り返 した (膜透過性機能の追加導入)。
TFA処理 (95% TFA/5% m-cresol) により Boc基を脱保護した後、 FITC (9.3 mg、 25 mg) を DIEA (17.4 mg、 100 mmol) 存在下、 室温で 12時間攪拌し蛍光標識化した (蛍光標識部位の設計)。
最後にピぺリジン処理(2哨 piperidinein D肝、室温 3分) して残る Fmoc 基を脱保護した後、 常法 (TFA/TFMSA/p - cresol/thioanisol = 60/25 /10/10) により固相担体からの切り出しを行い、 後処理して、 目的物を 得た。 MALDI-TOF MS: calcd. 6373.0231 (M+H+ ) . 産業上の利用可能性
本発明によれば、 光機能性分子に限定されることない多種多様な機能性分 子を、 PNA 中に容易かつ効率的に導入することができ、 遺伝子治療などに 用いられる種々の PNAの構築が可能になるので、 本発明は、 広範な医療産 業分野において利用することができる。

Claims

請求の範囲 A 請求の範囲
1 . 機能性 PNA オリ ゴマーを製造する方法であって、 保護基によって保護さ れたアデ-ン、 グァニン、 シトシンまたはチミンを有する PNAモノマーュニ ットを、 一般式 ( I ) による Boc—リジン (Fmoe) —OH (尚、 Fmoeとは 9- Fluorenylmethoxycarbonylを示す。)、或レヽは下言己の一般式 ( I Iパこよる Fmoe 一リシン (Alloc; —OH (尚、 Fmoc とは 9 -Fluorenylmethoxycarbonyl、 Boc とは tButoxycarbonyl、 Alloc とは Allyloxycarbonyl を示す。 ) と反応させて PNAオリゴマーを合成した後、 該 PNA オリゴマーに遊離カルボン酸を有す る機能性分子を導入し、 さらに前記保護基の脱保護を行うことを含む、 前記方 法。
Boc-リジン(Fmoc) -OH 、i)
Figure imgf000029_0001
【化 2】
Figure imgf000029_0002
2 . 機能性分子を導入した後に、 さらに別異の機能性分子の導入を行うこと を特徴とする、 請求の範囲 1に記載の方法。
3 . 導入される機能性分子が、 光応答性機能分子、 膜透過性機能分子、 臓器 選択性機能分子、 殺菌性機能分子、 分子破壊性機能分子、 癒着性機能性分子、 或いは分子認識性機能分子から選択されることを特徴とする、 請求の範囲 1〜 2のいずれかに記載の方法。
4 . 導入される機能性分子が、 光機能性分子および膜透過性機能分子を含むこ とを特徴とする、 請求の範囲 2または 3に記載の方法。
5 . 光機能性分子力 S、 Cy3、 Cy5、 Bodipy、 pyrene、 naphthalimide、 naphthaldiimide, FAM、 FITC、 ROX, TAMRA または Dabcyl であり、 膜 透過性機能分子が水溶性ァミノ酸誘導体であることを特徴とする、 請求の範囲 に記載の方法。
6 . アデニン、 グ了ユン、 シトシンまたはチミンを保護する保護基が、 ベンジ ルォキシカルボニル基 (Z基) であることを特徴とする、 請求の範囲 1〜5 の いずれかに記載の方法。
7 . PNAオリゴマーの合成が、 Boc法用及ぴ Fmoc法用固相担体を用いた PNA 鎖における縮合 ·伸長を含むことを特徴とする、 請求の範囲 1〜6 のいずれか に記載の方法。
8 . Boc 法用固相担体が固相 Boc 法でペプチ ド合成に使用する methylbenzhydrylamine (MBHA) であることを特徴とする、 請求の範囲 1
〜7のいずれかに記載の方法。
9 . Fmoc 法用固相担体が MBHA、 ポリスチレンをクロロメチル化した樹脂 (Merrifield樹脂)、 4—ヒ ドロキシベンジルアルコールで修飾した Merrぱ ield 樹脂 (Wang樹脂)、 Boc—アミノ酸一リンカ一を結合させたアミノメチル樹脂 (PAM 樹脂)、 N— Fmoc— Ν—メ トキシーリンカーを結合させたアミノメチ ル樹脂 (Weinreb 樹脂)、 ポリスチレンに p—二トロべンゾフエノンォキシム を結合させた樹脂 (Oxime樹脂)、 ポリスチレンを利用してトリチル化した樹 脂 ( rityl樹脂) であることを特徴とする請求の範囲 1〜7のいずれかに記載 の方法。
1 0 . 遊離カルボン酸を有する機能性分子の導入が、 Boc法における Fmoc基 をピペリジン処理によって或いは Fmoc法における Alloc基を亜鉛酢酸溶液処 理によって、 選択的に脱保護して得られた 1 級ァミノ基との脱水縮合によつ て行われることを特徴とする、 請求の範囲 1〜9のいずれかに記載の方法。
1 1 . 下記 a) 〜d) :
a) Boc—リジン (Fmoc) -OH を PNAオリゴマー中に導入する工程にお いて、 PNA モノマーユニットを、 Boc—リジン (Fmoc) -OH と反応させて PNAオリゴマーを製造すること ;
b) 前記 PNAオリゴマーから機能性 PNAオリゴマーを製造する工程におい て、 PNA オリゴマーへの機能性分子の導入が、 Fmoc 基をピペリジン処理に よって選択的に脱保護して得られた 1 級ァミノ基との脱水縮合によって行わ れること、 の 1 または 2以上を含むことを特徴とする、 請求の範囲 2 に記載 の方法;
c) Fmoc-リジン (Alloc) — OHを PNAオリゴマ一中に導入する工程にお いて、 PNA モノマーユニットを、 Fmoc—リジン (Alloc) -OH と反応させ て PNAオリゴマーを製造すること ;および
d) 前記 PNAオリゴマーから機能性 PNAオリゴマーを製造する工程におい て、 PNAオリゴマ一^ >の機能性分子の導入が、 Alloc基を亜鉛酢酸溶液処理に よって選択的に脱保護して得られた 1 級ァミノ基との脱水縮合によって行わ れること、 の 1 または 2以上を含むことを特徴とする、 請求の範囲 2 に記載 の方法。
1 2 . 下記の一般式 (I I I ) 【化 3】
Figure imgf000031_0001
(式中、 Bは、 互いに独立し、 同一または異なって、 アデニン、 グァニン、 シ トシンまたはチミンであり、 Rは、 互いに独立し、 同一または異なって、 Fmoc 基または機能性カルボン酸誘導体であり、 : R1 は、 水素原子または機能性カル ボン酸誘導体であり、 R2 は、 水素原子、 アミノ基、 水酸基、 チオール基を含 む誘導体または機能性カルボン酸誘導体であり、 a〜fは 0〜∞の整数であり、 〜 ぃ Yい Y2 および Zi Ze はいずれも 0以上の整数であり、 Xi+X2 + X3≥0 であり、 Yi+YsX) であり、
Figure imgf000031_0002
である。 た だし、 Xi+Xa+Xg およぴ Zi+Zs+Zg+Z +Zs が同時に 0 であることは なく、 Xi+X +Xg-O の場合、 R1 は機能性カルボン酸誘導体である。) で 表される化合物。
1 3. Xi +X2 +X3 =3 であり、 Y +Ya lS であることを特徴とする、 請 求項 12に記載の化合物。
14. X1 =3であり、 であることを特徴とする、 請求の範囲 13 に記 載の化合物。
1 5. 1 Rまたは R1 が細胞膜透過性機能分子誘導体であることを特徴とす る、 請求項 14に記載の化合物
1 6. R1 が機能性カルボン酸誘導体であることを特徴とする、 請求の範囲 15 に記載の化合物。
1 7.
Figure imgf000031_0003
であることを特徴とする、 請求の範囲 15または 16に記載 の化合物。
1 8. Yi≥2であり、 Z2=lであることを特徴とする、 請求の範囲 15〜: 17の いずれかに記載の化合物。
1 9. a≤6であり、 b^4であり、 f≤6であることを特徴とする、 請求の範囲 15〜18のいずれかに記載の化合物。
20. R1 が光機能性カルボン酸誘導体であることを特徴とする、 請求の範囲 15〜: L9のいずれかに記載の化合物。
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