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WO2001093871A1 - Medicaments pour la prevention de la reangiostenose - Google Patents

Medicaments pour la prevention de la reangiostenose Download PDF

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WO2001093871A1
WO2001093871A1 PCT/JP2001/001859 JP0101859W WO0193871A1 WO 2001093871 A1 WO2001093871 A1 WO 2001093871A1 JP 0101859 W JP0101859 W JP 0101859W WO 0193871 A1 WO0193871 A1 WO 0193871A1
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WO
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dyes
smooth muscle
acridine
vascular smooth
vascular
Prior art date
Application number
PCT/JP2001/001859
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English (en)
French (fr)
Inventor
Yasumi Uchida
Original Assignee
Cardiovascular Institute, Ltd.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Cardiovascular Institute, Ltd. filed Critical Cardiovascular Institute, Ltd.
Publication of WO2001093871A1 publication Critical patent/WO2001093871A1/ja

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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/655Azo (—N=N—), diazo (=N2), azoxy (>N—O—N< or N(=O)—N<), azido (—N3) or diazoamino (—N=N—N<) compounds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis

Definitions

  • the present invention relates to an agent for suppressing vascular smooth muscle growth and an agent for preventing vascular restenosis after angioplasty.
  • PTCA Percutaneous coronary angioplasty
  • stents made of metal or the like has been actively performed.
  • Such restenosis is considered to be mainly caused by intimal hyperplasia and thrombus formation due to migration and proliferation of medial smooth muscle cells into the intima caused by cell proliferative cytokines in the vascular lesions.
  • Drugs such as inhibitors, anticoagulants, and platelet aggregation inhibitors have been studied clinically, but none of them have achieved sufficient effects.
  • an object of the present invention is to provide a medicament that can effectively prevent vascular restenosis after angioplasty such as PTCA or vascular bypass surgery. Disclosure of the invention The present inventors further studied the factors of vascular restenosis after angioplasty, and found that while suppressing the proliferation of vascular smooth muscle cells, endothelial cells were regenerated early to cover the vascular lesion. Can effectively suppress vascular restenosis, and a specific biocompatible dye has an effect of suppressing vascular smooth muscle cell proliferation, and is a vascular smooth muscle growth inhibitor for preventing vascular restenosis.
  • vascular smooth muscle growth inhibitor and indigo carmine which proliferates only endothelial cells, an excellent vascular restenosis preventing effect can be obtained without inhibiting endothelial cell proliferation.
  • the inventors have found that the present invention can be obtained and completed the present invention.
  • the present invention relates to one or more selected from sulfonic acid azo dyes, phthalein dyes, triphenyl methane dyes, phenanthridinium dyes, acridine dyes, xanthene dyes, phenothiazine dyes, and cyanine dyes. It is intended to provide a vascular smooth muscle growth inhibitor and a vascular restenosis inhibitor containing two or more biocompatible dyes.
  • the present invention also provides an agent for preventing vascular restenosis, which comprises the biocompatible dye and indigo carmine.
  • the present invention also provides use of the above biocompatible dye for producing a vascular smooth muscle growth inhibitor or a vascular restenosis inhibitor.
  • the present invention further provides a method for treating a disease caused by vascular smooth muscle proliferation or a method for preventing vascular restenosis, which comprises administering the above-mentioned biocompatible dye.
  • FIG. 1 is a diagram showing the effect of stopping Evans care on the human aortic smooth muscle cell cycle.
  • FIG. 2 is a diagram showing changes in the canine coronary artery stent insertion part ((1) control group, (2) ethidium bromide group, arrows indicate stent parts).
  • FIG. 3 shows the effect of PTCA on the restenosis site due to PTCA by local administration of Evans blue [(1) control group, (2) Evans blue group].
  • FIG. 4 is a graph showing the effect of local administration of Evansbull on restenosis at the stent insertion site in patients with ischemic heart disease.
  • FIG. 5 is a graph showing the effect of one administration of Evanspr to the PTCA site of a patient with ischemic heart disease.
  • FIG. 6 is a diagram showing a chromatogram after mixing Evans blue and batroxobin. BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
  • the biocompatible dye which is an active ingredient of the vascular smooth muscle growth inhibitor and the vascular restenosis inhibitor of the present invention is a dye used as a medical or edible drug such as a drug, a dye for a living body or a biological substance, and a clinical test.
  • a substance that can be administered to mammals including the human body specifically, sulfonic acid-based azo dyes, phthalein-based dyes, triphenylmethane-based dyes, phenanthridine-based dyes, and acridine-based dyes , A xanthene dye, a phenothiazine dye and a cyanine dye.
  • the sulfonic acid-based azo dye refers to an azo dye having a group —S ⁇ 3 _ in the molecule.
  • naphthalenesulfonic acid-based azo dyes such as Evans Blue, Trypan Blue, Trypan Red, and Orange B are used.
  • phthalein dyes for example, phenolphthalein or phenolsul
  • the above dyes have an excellent vascular smooth muscle cell growth inhibitory action as shown in Examples described later, it is needless to say that such action was not known at all.
  • sulfonic acid-based azo dyes particularly naphthylene sulfonic acid-based azo dyes, phenanthridinium-based dyes, acridine-based dyes, and phenothiazine-based dyes
  • Evans blue, ethidium bromide, acridine orange, methylene blue or toluidine blue which have an effect of regenerating endothelial cells at an early stage while suppressing the growth of vascular smooth muscle cells, are particularly preferable.
  • biocompatible pigment of the present invention which has such an excellent vascular smooth muscle cell proliferation inhibitory effect, mononuclear cells that cover a vascular lesion early and cause thrombus formation, site force in, and arteriosclerosis can be obtained. It is possible to prevent the invasion of blood vessels and the like, and effectively prevent restenosis and acute, subacute, and chronic thrombotic occlusion after angioplasty or bypass surgery.
  • vascular smooth muscle growth inhibitor and the vascular restenosis inhibitor of the present invention can be used alone or in combination of two or more.
  • two or more kinds are used in combination, they may be prepared so as to be contained in a single preparation, or each may be prepared as a separate preparation and used in combination.
  • Preferred examples of the combination use of the dye of the present invention include naphthalenesulfonic acid-based azo dyes such as Evans blue, and phenanthridine-based dyes such as ethidium amide and acridine orange from the viewpoint of the effect of preventing vascular restenosis. And the like when used in combination with an acridine dye.
  • indigo carmine is a pigment that is widely used as a renal function test, food coloring and the like, but indigo carmine itself has a vascular smooth muscle growth inhibition referred to in the present invention. Has no effect. However, since it exerts an action of promoting endothelial cell proliferation and regeneration (Example 2), indigo carmine is used as the above dye having an inhibitory action on vascular smooth muscle growth, in particular, a naphthylene sulfonic acid-based azo dye such as Evans blue, ethidizumab.
  • endothelial cells When used in combination with phenanthridinium dyes such as mouth amides or acridine orange dyes such as acridine orange, endothelial cells can be regenerated at an early stage, and damaged areas can be repaired, so more ideal prevention of vascular restenosis The effect can be expected.
  • phenanthridinium dyes such as mouth amides or acridine orange dyes such as acridine orange
  • the anti-restenosis agent of the present invention may contain a conventionally known antiplatelet agent, anticoagulant, thrombolytic agent and Z or a vasodilator.
  • Antiplatelet agents used here include aspirin, sulfinpyrazone, ticlopidine, abciximab, clovidogrel, GPIIb / IIIa inhibitor, tropoxan A2 antagonist, loitcollien antagonist, etc.
  • antithrombin agents such as heparin, argatroban, and batroxobin
  • synthetic anticoagulants such as perfarin.
  • Thrombolytic agents include perokinase and plasminogen activator, and vasodilators.
  • Nitric acid agents such as nitroglycerin and isosorbide dinitrate; nicorandil, trapidil, dipyridamole; calcium antagonists such as diltiazem and dihydropyridin derivatives (such as diphedipine and dicardipine); angiotensin converting enzyme antagonists (such as captopril); and angiotensin Emissions receptor inhibitors, and the like.
  • the pigment component and the above antithrombotic agent are used in combination, the restenosis prevention effect is further enhanced. Therefore, the dose of the conventional antithrombotic agent can be reduced.
  • the compounding ratio of the dye component to the known antithrombotic agent is preferably 1: 10000 to 10000: 1, more preferably 1: 1100 to 100: 1 by weight.
  • the pigment component used in the present invention and a known antithrombotic agent are easily combined in an aqueous solution to form a force-applying body, which is considered to be effective as such a carohydrate-applied body.
  • a pharmaceutically acceptable carrier It can be formulated as a pharmaceutical composition for parenteral administration, such as rectal, or for oral administration in solid or liquid form.
  • Injectables can be in the form of solutions (sterile water or non-aqueous solutions), emulsions and suspensions.
  • Non-aqueous carriers, diluents, solvents or vehicles used in these injections include, for example, propylene glycol, polyethylene glycol Vegetable oils such as olive oil; and injectable organic acid esters such as ethyl oleate.
  • auxiliary agents such as preservatives, wetting agents, emulsifiers, and dispersants can be appropriately added to the composition.
  • the preparation for oral administration include, for example, solid preparations such as tablets, powders, granules and capsules, solutions, syrups, elixirs, and liquid preparations such as oily or aqueous suspensions.
  • the medicament of the present invention is preferably used as an injection.
  • Intravenous administration, intraarterial administration, local administration in a graft, local administration under pressure using a porous balloon catheter, and the like are more preferable. .
  • the dosage of the medicament of the present invention will depend on the nature of the components to be administered, the route of administration, the desired duration of treatment and other factors, but will generally be from about 0.1 to about 0.1 mg per day as a pigment component; Particularly, about 0.5 to 5 O mg / kg is preferable. If desired, the daily dose can be divided and administered in 2 to 4 times.
  • Ethidium bromide (2,7-diamino-1-10-ethyl-9-phenylphenanthrium bromide) Sterilize the crystals and aseptically dissolve in distilled water for injection to a concentration of 1, 2, 5, 10, 20% by weight. It was melted, sealed in a glass or synthetic resin ampule, and stored at room temperature.
  • 2 ⁇ 10 6 human coronary artery smooth muscle cells (CASMC-2; 28.7PDL) were mixed in a mixed medium of MCDB-104, 10% FBS and EGF 10 Ong / mL supplemented with various concentrations of emissible monohydrate or ethidium disulfide. After 72 hours, the number of cells was counted, and compared with that of the control, the proliferation rate (%) was calculated.
  • 2 ⁇ 10 6 human umbilical cord endothelial cells (HUVEC, KT-T, 8.3PDL) were added to various concentrations of Evans blue or ethidium orbit, MCDB-104, 10% FBS and EGF 10 Ong / mL. The cells were cultured in a mixed medium and counted after 72 hours.
  • the proliferation rate was calculated by dividing the cell number of the group to which Evans blue or ethidium muvide was added by that of the group to which no cell group was added.
  • the proliferation rate of smooth muscle cells was divided by that of endothelial cells to determine the relative selectivity of vascular smooth muscle cell growth inhibition. Methylene blue, toluidine blue, acridine orange, and indigo carmine were similarly examined. Table 1 shows the results.
  • Control group 3_ serum-free medium + 10% 83
  • Figure 1 shows the control and Evans Blue group fluorescence cytometry charts. In the Evans Blue group, S, G 2 ZM phase is hardly seen.
  • a guiding catheter was inserted into the left coronary artery through the right common artery under X-ray fluoroscopy under artificial respiration.
  • a PTCA catheter of 3 diameters was inserted and expanded at 9 atm.
  • a PTCA stent with a diameter of 2.5 mm was inserted, expanded at 9 atm, and placed.
  • mice received ethidium bromide (0.5 mL of a 10% solution) followed by topical administration of Evans blue (0.5 mL of a 10% solution). Similarly, one month later, the coronary artery was removed.
  • the coronary arteries were sliced at intervals of three thighs, stained with Azan, photographed with a microscope, and the area surrounded by the media (A) and the area of the intima that had fibrotic proliferation (B) were measured with a branometer. Each (B / A) XI00 was determined, and the maximum value was defined as the stenosis rate (%). The results are shown in FIG. Table 3
  • n: p 0.01
  • a guide catheter was inserted into the left coronary artery through the right common splenic artery under artificial respiration and X-ray fluoroscopy using a Nembu evening anesthesia beagle dog.
  • a 3 mm diameter PTCA catheter was inserted and expanded at 9 atm.
  • the stenosis rate (%) was measured in the same manner as in Example 3.
  • Figure 3 shows an example of the Evansbull single administration group, and Table 4 shows the restenosis rate.
  • a guide catheter was inserted into the left coronary artery via the right common carotid artery under artificial respiration and X-ray fluoroscopy using a Nembutal anesthetized beagle dog. Then, a three-band PTCA parkin catheter was inserted into the left anterior descending branch and expanded at 9 atm. Next, a balloon was inserted into the circumflex branch and expanded in the same manner. A 2.5-thigh stent was introduced and expanded at 9 atm.
  • Intravenous injection group immediately after Evans Blue. 6 heads. Immediately after, intravenous Evansbull 20% 1 OmL was injected, and three months later, the coronary artery was removed.
  • the coronary artery removed was cut into slices at intervals of three thighs, and Azan staining was performed.
  • the area of the fibrotic tissue inside the media (A) and the area surrounding the media (B) were measured with a branometer. Calculate A / BX 100 and calculate the maximum value in each coronary artery was used as the restenosis rate and compared between groups. Table 5 shows the results.
  • PTCA control group 30 cases. Normal PTCA was performed. Six months later, coronary angiography was performed to examine changes in the treatment site.
  • Stent control group 20 cases. Six months after normal stent placement, coronary angiography was performed.
  • Example 8 Certification of Evans Blue and Batroxobin Adduct and Preparation of Injection Formulation
  • Sephadex G-15 manufactured by Pharmacia
  • % Solution % Solution
  • batroxobin (20 BU units, ZmL) were mixed at 1: 1 and fractionated by 3 mL with a fraction collector.
  • the absorbance of each fraction was measured at wavelengths of 28 Onm and 62 Onm.
  • the bovine fibrinogen solution was put into the reactor, and after keeping the temperature at 37 ° C, each fraction was put therein, and the coagulation time was measured. As a result, as shown in FIG.
  • Such an adduct is formed as soon as the Evansable solution and the batroxobin solution (both in ampoules) are placed in an injection bowl and mixed, so that the adducts may be used by mixing them at the time of use.
  • a guide catheter was inserted into the left coronary artery through the right common carotid artery under artificial respiration and X-ray fluoroscopy using a Nembutal anesthetized beagle dog. Then, a balloon catheter for 3 mm PTCA was inserted into the left anterior descending branch and expanded at 9 atm. Nineteen animals were placed in the PTCA group, and the other 19 animals were inserted with a stent to form a stent group. The PTCA group and the stent group were grouped as follows and examined. That is,
  • the extracted coronary arteries were cut into slices at 3 mm intervals and stained with Azan.
  • the area of fibrotic tissue inside the media (S) and the area surrounding the media (B) are measured with a planimeter, AZBX100 is calculated, and the maximum value in each coronary artery is restenosis. Rates and were compared between groups. Table 6 shows the results.
  • the vascular smooth muscle growth inhibitor and vascular restenosis inhibitor of the present invention have an effect of regenerating endothelial cells early while suppressing the growth of vascular smooth muscle cells, and include coronary arteries, cerebral arteries, peripheral arteries and the like. It is useful as a medicament for the prevention and treatment of diseases caused by vascular smooth muscle proliferation such as vascular restenosis after angioplasty or bypass surgery in patients.

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Description

明 細 書 血管再狭窄防止薬 技術分野
本発明は、 血管平滑筋増殖抑制剤及び血管形成術後の血管再狭窄防止剤に関す る。 背景技術
. 近年、 狭心症や心筋梗塞に代表される虚血性疾患の治療法の一つとして、 これ までの外科的なバイパス術に代わり、 先端にバルーンの付いた特殊なカテーテル を経皮的に末梢動脈から冠動脈の狭窄部に挿入し、 バルーンを膨らませることに より狭窄部位を拡張する経皮的冠動脈形成術 (P T C A) が広く採用されている。 また、 金属製等のステント挿入も盛んに行われている。
ところが、 斯かる形成術においては、 3 0〜4 0 %の患者で施行により拡張さ れた血管の再狭窄が起こることが大きな問題となっている。 このことほバイパス 術においても同様である。
斯かる再狭窄は、 血管障害部における細胞増殖性サイトカインなどによる中膜 平滑筋細胞の内膜への遊走と増殖による血管内膜肥厚や血栓の形成がその主因と 考えられ、 これまでに細胞増殖抑制剤、 抗血液凝固剤、 血小板凝集抑制剤等の薬 剤が臨床で検討されてきているが、 いずれも十分な効果が得られていないのが現 状である。
従つて、 本発明は、 P T C A等の血管形成術や血管バイパス術施行後の血管再 狭窄を有効に防止できる医薬を提供することを目的とする。 発明の開示 本発明者らは、 血管形成術施行後の血管再狭窄の要因について更に検討した結 果、 血管平滑筋細胞の増殖抑制を図る一方で、 内皮細胞を早期に再生させて血管 障害部を覆うことにより、 血管再狭窄を効率的に抑制できることを見出すと共 に、 特定の生体適合性色素に血管平滑筋細胞増殖を抑制する作用があり、 血管再 狭窄の防止のための血管平滑筋増殖抑制剤及び血管再狭窄防止剤となり得るこ と、 更に該血管平滑筋増殖抑制剤と内皮細胞のみを増殖させるィンジゴカルミン を併用することことにより内皮細胞増殖を抑制することなく優れた血管再狭窄防 止効果が得られることを見出し、 本発明を完成した。
すなわち本発明は、 スルホン酸系ァゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニル メタン系色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系 色素、 フエノチアジン系色素及びシァニン系色素から選ばれる 1種又は 2種以上 の生体適合性色素を含有する血管平滑筋増殖抑制剤及び血管再狭窄防止剤を提供 するものである。
また本発明は、 上記生体適合性色素並びにィンジゴカルミンを含有する血管再 狭窄防止剤を提供するものである。
また本発明は、 血管平滑筋増殖抑制剤又は血管再狭窄防止剤製造のための上記 生体適合性色素の使用を提供するものである。
更に本発明は、 上記生体適合性色素を投与することを特徴とする血管平滑筋増 殖に起因する疾患の処置方法又は血管再狭窄防止のための処置方法を提供するも のである。 図面の簡単な説明
図 1は、 ヒト大動脈平滑筋細胞周期に対するエバンスカレ一の停止効果を示す 図である。
図 2は、 ィヌ冠動脈ステント挿入部の変化を示す図である 〔 (1 ) 対照群、 ( 2 ) ェチジゥムブロマイド群、 矢印はステント部を示す〕 。 図 3は、 エバンスブルー局所投与の P T C Aによる再狭窄部位への効果を示す 図である 〔 (1 ) 対照群、 (2 ) エバンスブルー群〕 。
図 4は、 虚血性心疾患患者のステント揷入部再狭窄に対するエバンスブル一局 所投与の効果を示す図である。
図 5は、 虚血性心疾患患者の P T C A部位へのエバンスプル一投与の効果を示 す図である。
図 6は、 エバンスブルーとバトロキソビン混合後のクロマトグラムを示す図で ある。 発明を実施するための最良の形態
本発明の血管平滑筋増殖抑制剤及び血管再狭窄防止剤の有効成分である生体適 合性色素とは、 医薬、 生体若しくは生体物質の染色、 臨床検査等の医用又は食用 として用いられている色素であつて、 人体を含む哺乳動物に投与可能なものをい い、 具体的にはスルホン酸系ァゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニルメタン 系色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系色素、 フエノチアジン系色素及びシァニン系色素から選ばれる色素をいう。
ここで、 スルホン酸系ァゾ色素としては、 分子内に基— S〇3 _を有するァゾ 色素をいい、 例えばエバンスブルー、 トリパンブル一、 トリパンレッド、 オレン ジ B等のナフタレンスルホン酸系ァゾ色素、 ポーラルイエロー、 オレンジ I又は オレンジ I I等が挙げられ、 フタレイン系色素としては、 例えばフエノ一ルフタレ ィン又はフエノールスルホフタレイン等が挙げられ、 トリフエニルメタン系色素 としては、 例えばゲンチアナバイオレット又はフクシン (マジェンタ) 等が挙げ られ、 フエナントリジニゥム系色素としては、 例えばェチジゥムブロマイド又は プロピジゥムアイオダイド等が挙げられ、 ァクリジン系色素としては、 例えばァ クリジンオレンジ、 ァクリジンイェロー、 9一アミノアクリジン、 ァクリフラビ ン又はプロフラビン等が挙げられ、 キサンテン系色素としては、 例えばローダミ ン:6、 スルホローダミン、 フルォレセイン又はェォシン等が挙げられ、 フエノチ アジン系色素としては、 例えばメチレンブル一、 トルイジンブルー又はァズ一ル (A, B) 等が挙げられる。
上記色素は、 後記実施例に示すように優れた血管平滑筋細胞増殖抑制作用を有 するが、 これらに当該作用があることは全く知られていなかつたことは言うまで もない。 そして、 斯かる効果の点から、 上記色素のうち、 スルホン酸系ァゾ色 素、 特にナフ夕レンスルホン酸系ァゾ色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァク リジン系色素及びフェノチアジン系色素が好ましく、 中でも血管平滑筋細胞の増 殖抑制を図りつつ早期に内皮細胞を再生する効果を有するエバンスブルー、 ェチ ジゥムブロマイド、 ァクリジンオレンジ、 メチレンブル一又はトルイジンブルー が特に好ましい。
このように優れた血管平滑筋細胞増殖抑制作用を有する本発明の生体適合性色 素を用いれば、 血管障害部を早期に覆い、 血栓形成やサイト力インや動脈硬化の 原因となる単核球などの浸入を防止することができ、 血管形成術後或いはバイパ ス術後の血管再狭窄や急性、 亜急性、 慢性血栓性閉塞を効果的に防止することが できる。
本発明の血管平滑筋増殖抑制剤及び血管再狭窄防止剤は、 斯かる色素を単独で 又は二種以上を併用して用いることができる。 二種以上を併用して用いる場合に は、 単一の製剤中に含まれるように調製されてもよく、 それぞれを別個の製剤と して調製し、 それらを併用するものでもよい。
本発明色素の好ましい併用例としては、 血管再狭窄の防止効果の点から、 エバ ンスブルー等のナフタレンスルホン酸系ァゾ色素と、 ェチジゥムブ口マイド等の フエナントリジニゥム系色素又はァクリジンオレンジ等のァクリジン系色素とを 組み合わせて用いる場合が挙げられる。
一方、 インジゴカルミンは腎機能検査や食品着色料等として広く用いられてい る色素であるが、 インジゴカルミン自体には、 本発明でいう血管平滑筋増殖抑制 作用はない。 しかしながら内皮細胞の増殖再生促進作用を発揮することから (実 施例 2 ) 、 インジゴカルミンを血管平滑筋増殖抑制作用を有する上記色素、 特に エバンスブルー等のナフ夕レンスルホン酸系ァゾ色素、 ェチジゥムブ口マイド等 のフエナントリジニゥム系色素又はァクリジンオレンジ等のァクリジン系色素と 組み合わせて使用すれば早期に内皮細胞が再生され、 障害部位が修復されるので より理想的な血管再狭窄防止効果が期待できる。
また、 本発明の再狭窄防止剤には、 従来公知の抗血小板剤、 抗血液凝固剤、 血 栓溶解剤及び Z又は血管拡張剤を配合することができる。 ここで用いられる抗血 小板剤としてはアスピリン、 スルフィンピラゾン、 チクロピジン、 アブキシマブ、 クロビドグレル、 G P I I b/I I I a阻害剤、 トロンポキサン A2拮抗剤、 ロイトコ リエン拮抗剤等が挙げられ、 抗血液凝固剤としてはへパリン、 アルガトロバン、 バトロキソビン等の抗トロンビン剤、 ヮルファリン等の合成抗血液凝固剤等が挙 げられ、 血栓溶解剤としてはゥロキナーゼ、 プラスミノーゲンァクチべ一夕等が 挙げられ、 血管拡張剤としてはニトログリセリン、 硝酸イソソルピド等の硝酸剤 ;ニコランジル、 トラピジル、 ジピリダモール;ジルチアゼム、 ジヒドロピリジ ン誘導体 (二フエジピン、 二カルジピン等) 等のカルシウム拮抗剤、 アンギオテ ンシン変換酵素拮抗剤 (カプトプリルなど) 、 アンギオテンシン受容体阻害剤等 が挙げられる。
本発明において前記色素成分と上記の抗血栓剤とを組み合せて用いると、 再狭 窄防止作用が更に増強される。 従って、 従来の抗血栓剤の投与量を減じることが できる。
前記色素成分と公知の抗血栓剤との配合比は、 重量比で 1 : 1 0 0 0〜1 0 0 0 : 1、 特に 1 : 1 0 0〜1 0 0 : 1が好ましい。 尚、 本発明で用いる色素成分 と公知の抗血栓剤とは、 水溶液中で容易に結合して付力口体を形成するが、 斯かる 付カロ体として効果を奏しているものと考えられる。
本発明の医薬を使用する場合には、 製薬上許容し得る担体と共に注射若しくは 経直腸等の非経口投与又は固形若しくは液体形態での経口投与のための製薬組成 物として処方することができる。
注射剤は、 液剤 (無菌水又は非水溶液) 、 乳剤及び懸濁剤の形態とすることが でき、 これらに用いられる非水担体、 希釈剤、 溶媒又はビヒクルとしては、 例え ばプロピレングリコール、 ポリエチレングリコール、 ォリーブ油等の植物油、 ォ レイン酸ェチル等の注射可能な有機酸エステルが挙げられる。 また、 該組成物に は防腐剤、 湿潤剤、 乳化剤、 分散剤等の補助剤を適宜配合することができる。 また、 経口投与製剤としては、 例えば錠剤、 散剤、 顆粒剤、 カプセル剤等の固 形製剤、 溶液剤、 シロップ剤、 エリキシル剤、 油性若しくは水性懸濁剤等の液剤 を例示できる。
本発明の医薬は、 これらの投与形態のうち、 注射剤として用いるのが好ましぐ 静脈内投与、 動脈内投与、 グラフト内局所投与、 ポーラスバル一ンカテーテルに よる加圧局所投与等が更に好ましい。
本発明の医薬の投与量は、 投与される成分の性状、 投与経路、 所望の処置期間 及びその他の要因によって左右されるが、 一般に色素成分として一日当り約 0 . 1〜; L 0 0 mgZkg、 特に約 0 . 5〜5 O mg/kgが好ましい。 また、 所望によりこ の一日量を 2〜4回に分割して投与することもできる。 実施例
実施例 1
( 1 ) エバンスブルー注射剤の調製
エバンスブルー (6 , 6, _ 〔 (3, 3, 一ジメチル 〔1 , 1, 一ビフエ二 ル〕 一4 , 4, ージィル) ビス (ァゾ) 〕 ビス 〔4一アミノー 5—ヒドロキシ一 1 , 3—ナフタレンジスルホン酸〕 四ナトリウム塩) 結晶を滅菌し、 無菌状態で 2、 5、 1 0又は 2 0重量%の濃度になるように注射用蒸留水に溶解し、 ガラス 又は合成樹脂アンプルに封入し、 室温保存した。 (2) ェチジゥムブロマイド注射剤の調製
ェチジゥムブロマイド (2, 7—ジァミノ一 10—ェチルー 9—フエニルフエ ナントリヂゥム ブロマイド) 結晶を滅菌し、 無菌状態で、 1、 2、 5、 10、 20重量%濃度になるよう注射用蒸留水に溶解し、 ガラス又は合成樹脂アンプル に封入し、 室温保存した。
実施例 2 ヒト血管平滑筋細胞増殖抑制作用
ヒト冠動脈平滑筋細胞 (CASMC- 2; 28.7PDL) 2X 106個を、 各種濃度のエバ ンスブル一又はェチジゥムブ口マイドを加えた MCDB— 104、 10%FBS 及ぴ EGF 10 Ong/mLの混合培地にて培養し、 72時間後の細胞数を数え、 対 照のそれと比較し、 増殖率 (%) を算出した。 次いで、 ヒト臍帯内皮細胞 (HUVE C, KT-T, 8.3PDL) 2 X 106個を各種濃度のエバンスブルー又はェチジゥムブ口 マイドを加えた MCDB— 104, 10%FB S及び EGF 10 Ong/mLの混合 培地で培養し、 72時間後の数を数えた。
増殖率は、 エバンスブルー又はェチジゥムブ口マイドを加えた群の細胞数を加 えなかった群のそれで除して算出した。 また、 平滑筋細胞の増殖率を内皮細胞の それで除し、 血管平滑筋細胞増殖抑制の相対的選択性を判断した。 メチレンブル 一、 トルイジンブルー、 ァクリジンオレンジ、 インジゴカルミンについても同様 に検討した。 結果を表 1に示す。
増殖率 ( )
化合物名 (濃度) 平滑筋細胞/内皮細胞 平滑筋細胞 内皮細胞
7 M 88.8±14.8 72.2 + 10.3* 1.25±0.32
: mンスカト 10"¾ 66.6±8.1* 44.4±8.0* 1.50±0.33
10"5M 10.3士 2.5** 0.53±0.11*
10, 100.5±17.0 106.8±19.9 0.94±0.18
10— ¾ 98.0±12·8 117.5±20.1 0.83±0.11 メチレンフ Ί
10"6M 88.5±15.3 109.1±19.0 0.80±0.13
5.5±0.3** 7.1±0.8** 0.77±0.08
10—8M 103.1±14·8 130.7±21.3 0.79±0.16 トリ ジンカレ 10~7M 98.8±13.3 143.1±22.1 0.68±0.10
10"6 80.5±12.5 123.8±19.0 0.65±0.11
15.5±1.2" 20.5±3.1* 0.77±0.16
81.5±10.3 85.2±11.1 0.92±0.25 ァクリジン才レ
,:、 10"7M 85.3±7.7 70.3±10.4* 1.31±0.20
10, 50.0±10·(Τ 10.0±0.3** 3.28±0.43*
10"8M 62.2±11.1* 77.0±0.3* 0.93±0.18 工チジゥムブ口
10"7M 37.0±5.6* 37.0±6.7** 1.26±0.22 マ 、イド
10~6M 5.6±0.8** 11.1±4.4** 0.50±0.08*
10~7M 59.2土 10.3 107.4±16.6 0.82±0.17 インジコカルミ
1CT6M 100.0±7.0 177.0±32.1* 0.57±0.18* ン
10~5M 101.8±7.0 180.5±36.0* 0.55±0.11* インジコ カル 各 10一 ¾ 59.2±10·3 107.4±16.6 0.55±0.08*
5ン + Aンス 各 1(Γ6Μ 37.0±9.6* 96.2±14.1 0.34±0.07* ブ Jト 各 10一 ¾ 4.8±1.4** 77.7±11.1 0.06±0.01**
* : Ρく 0.05; **:Ρく 0.01
表 1より、 エバンスブル一、 ェチジゥムブロマイド、 メチレンブル一、 トルイ ジンブル一、 ァクリジンオレンジに平滑筋細胞増殖抑制作用が見られ、 特にェチ ジゥムブロマイドでは極めて強い (10— 8モル濃度) 増殖抑制作用が見られた。 また、 平滑筋細胞増殖抑制作用は血管内皮細胞に対するそれよりも強かった。 一方、 インジゴカルミンには、 平滑筋細胞増殖抑制作用は見られなかったが、 内 皮細胞増殖促進作用が見られた。 また、 インジゴカルミンとエバンスブルー混合 液では内皮細胞増殖は影響を受けず平滑筋の増殖のみ選択的に抑制された。 実施例 3 細胞周期停止作用
ヒト大動脈平滑筋細胞の細胞周期に対するエバンスブル一及びェチジゥムブ口 マイドの作用を検討した。
(方法)
1. ヒト大動脈平滑筋細胞 1 X 106個を 35腿の大きさの CS— C無血清培 地で 24時間培養する。
2. 24時間後、 培地を以下のものに交換する。
ィ) コントロール群: 。3_じ無血清培地+10% 83
口) 〇3—〇無血清培地+10%?53 + 0. 05%エバンスブルー ハ) じ3—〇無血清培地+10%?83 + 0. 005%ェチジゥムブ口マイ ドヽ
3. 24時間後細胞を P B Sで洗浄し、 トリプシンで細胞分離、 遠沈 ( 100 0 r pm、 5分) し、 細胞ペレットを作成する。
4. ペレットを PBSに浮遊、 100%エタノールで固定し、 洗浄する。
5. RNa s e (最終濃度 0. 5%) を加える。
6. プロピジゥムブロマイド (最終濃度 25— 50 g/mL) を加える。
7. 蛍光サイトメトリーにより測定する。
(結果)
図 1にコントロールとエバンスブルー群の蛍光サイトメトリ一のチヤ一トを示 す。 エバンスブルー群では、
Figure imgf000010_0001
S, G2ZM相がほとん ど見られない。
定量的には、 表 2に示すように、 エバンスブル一及びェチジゥムブロマイドと も、 GcZGiが増加し、 ほぼ 100 %となっている。 これは、 DNA合成期 (S期) 以前、 すなわち G。か で細胞周期が停止することを示している。 表 2
Figure imgf000011_0001
:Pく 0.001
実施例 4 短期ステント部再狭窄防止効果
ネンブタール麻酔ビーグル犬を用い、 人工呼吸下、 レントゲン透視下で右総類 動脈を介し、 誘導カテーテルを左冠動脈に挿入した。 次いで、 径 3匪の PTCA 用カテーテルを挿入し、 9気圧で拡張せしめた。 次いで、 径 2. 5mmの PTCA 用ステントを挿入し、 9気圧で拡張せしめ留置した。
1) 7頭では、 そのまま 1ヶ月間飼育し、 1ヶ月目に冠動脈を摘出した。
2) 6頭では、 バルーンに多数の微小孔の開いたいわゆるポーラスバルーンを 拡張直後に挿入し、 それを介し、 エバンスブルー (10%溶液 0.5mL) を 3気圧で 局所投与した。 1ヶ月目に冠動脈を摘出した。
3) 6頭では、 ェチジゥムブロマイド (10%溶液 0.5mL) を同様にして投与 し、 1ヶ月目に冠動脈を摘出した。
4) 6頭では、 ェチジゥムブロマイド (10%溶液 0.5mL) 投与に続いて、 エバ ンスブルー (10%溶液 0.5mL) を局所投与した。 同様にして、 1ヶ月後に冠動脈 を摘出した。
(狭窄率の比較)
冠動脈を 3腿間隔で輪切りにし、 ァザン染色したのち、 顕微鏡写真を撮り、 中 膜で囲まれた面積 (A) と線維性増殖をした内膜の面積 (B) をブラ二メーター で計測し、 それぞれの (B/A) X I 00を求め、 その最大値をもって、 狭窄 率 (%) とした。 結果を図 2及び表 3に示す。 表 3
Figure imgf000012_0001
n: pく 0. 01
これより、 エバンスブル一群及びェチジゥムブ口マイド群では有意な再狭窄率 の減少が見られ、 エバンスブル一とェチジゥムブロマイド併用群では、 更に再狭 窄率が減少する傾向が見られた。
実施例 5 短期 P C T A部再狭窄防止効果
ネンブ夕一ル麻酔ビーグル犬を用い、 人工呼吸下、 レントゲン透視下で右総穎 動脈を介し、 誘導カテーテルを左冠動脈に挿入した。 次いで、 径 3麵の P T C A 用カテーテルを挿入し、 9気圧で拡張せしめた。
1 ) 7頭では、 そのまま 1ヶ月間飼育し、 1ヶ月目に冠動脈を摘出した。
2 ) 7頭では、 ポーラスバルーンを拡張直後に挿入し、 それを介し、 エバンス ブルー (10%溶液 0. 5mL) を 3気圧で局所投与した。 1ヶ月目に冠動脈を摘出し た。
3 ) 7頭では、 ェチジゥムブロマイド (10 %溶液 0. 5mL) を同様にして投与 し、 1ヶ月目に冠動脈を摘出した。
実施例 3と同様にして、 狭窄率 (%) を計測した。 エバンスブル一投与群の実 例を図 3に、 再狭窄率を表 4に示す。
表 4に示す如く、 P T C Aのみの群でも再狭窄の防止効果がみられた。 表 4
Figure imgf000013_0001
* : ρく 0.05; η: ρ<0.01
実施例 6 長期再狭窄防止効果
ネンブタール麻酔ビーグル犬を用い、 人工呼吸下及びレントゲン透視下で、 右 総頸動脈を介し、 誘導カテーテルを左冠動脈に挿入した。 ついで、 3匪 PTCA 用パル一ンカテーテルを左前下降枝に挿入し、 9気圧で拡張せしめた。 ついで、 回旋枝にバルーンを挿入し、 同様に拡張せしめ、 2. 5腿のステントを揷入し、 9気圧で拡張せしめた。
1) 対照群 7頭では、 そのまま 3ヶ月間飼育し、 3ヶ月目に冠動脈を摘出し た。
2) エバンスブルー直後のみ局所投与群。 6頭。 前下降枝及び回旋枝処置部に バル一ンに微小穴がある、 ポラスバルーンを挿入し、 2〜 3気圧で 10%エバン スブルー 0. 5mLを壁に注入し、 3ヶ月後、 冠動脈を摘出した。
3) エバンスブルー直後及び 2週間後局所投与群。 7頭。 長期再狭窄防止を期 待し、 直後及び 2週間後に同様にエバンスブルーを局所投与し、 3ヶ月後、 冠動 脈を摘出した。
4) エバンスブルー直後静注群。 6頭。 直後にエバンスブル一 20% 1 OmL静 注し、 3ヶ月後、 冠動脈を摘出した。
(狭窄度の比較)
同様にして摘出した冠動脈を 3腿間隔で輪切りにし、 ァザン染色を行つた。 中膜より内部にある線維化組織の面積 (A) と中膜が囲む面積 (B) をブラ二 メーターで測定した。 A/BX 1 00を算出し、 各々の冠動脈における最大値 を再狭窄率とし、 群間比較した。 結果を表 5に示す。
これより、 表 5に示すごとくエバンスブル一局所投与、 静脈投与のいずれでも 有意に狭窄を抑制した。 ステント揷入による狭窄においても、 同様に抑制した。 すなわち、 3ヶ月という比較的長期に渡って再狭窄を防止できることが明らか となった。
表 5
Figure imgf000014_0001
実施例 7 再狭窄防止効果の臨床的検討
狭心症又は急性心筋梗塞で、 冠動脈形成術が必要であった症例を対照とした。
1) PTCA対照群。 30例。 通常の PTCAを行い、 6ヶ月後、 冠動脈造影 を行い、 治療部位の変化を検討した。
2) PTCAエバンスブル一群。 10例 PTCA直後、 拡張部位に 5%エバン スブルー ImLをポーラスバルーンを用いて注入し、 4週間目に、 再度同量を注入 し、 6ヶ月後、 冠動脈造影を行った。
3) ステント対照群。 20例。 通常のステント留置術を行い、 6ヶ月後、 冠動 脈造影を行った。
4) ステント、 エバンスブルー群。 12例。 ステント留置術直後及び 4週間目 に同量のエバンスブルーを局所投与し、 6ヶ月後、 冠動脈造影を行った。 結果を 図 4及び図 5に示す。
図 4及び 5に示すように、 PTCA、 ステント留置術群とも、 エバンスブルー 投与群で再狭窄は全例で防止された。 エバンスブルーには臨床的にも、 強い再狭 窄防止作用があることが判明した。
実施例 8 エバンスブルーとバトロキソビン付加体の証明と注射剤の作製法 セフアデックス G— 15 (フアルマシア製) をカラム (3cmx65cm) に充填 し、 蒸留水を一昼夜流した後、 エバンスブルー (0. 1重量%溶液) とバトロキ ソビン (20BU単位 ZmL) とを 1 : 1で混合し、 フラクションコレクタ一で 3 mLずつ分画し、 各フラクションについて、 波長 28 Onm及び 62 Onmにおける吸 光度を測定した。 次いで、 牛フイブリノ一ゲン溶液を反応器に入れ、 37°Cで保 温した後各フラクションを入れ、 凝固時間を測定した。 その結果、 図 6に示した ごとく、 エバンスブル一とは異なる吸光を有する物質が見出され、 それにも、 バ トロキソビンと同様の凝固抑制作用、 すなわちフィプリン産生抑制作用が見出さ れた。 この物質は付加体と判断された。
そこで、 フラクション 210〜24 OmLを凍結乾燥せしめ、 lmg/mL (水溶 液) のアンプルに入れ冷所保存し、 使用した。
斯かる付加体は、 エバンスブル一溶液とバトロキソビン溶液 (いずれもアンプ ル入り) を注射当に入れ混合すると直ちに形成されるので、 両者を用時混合して 用いればよい。
実施例 9 エバンスブルー ·バトロキソビン付加体 (併用投与) の再狭窄防止 効果の基礎的検討
ネンブタール麻酔ビーグル犬を用い、 人工呼吸及びレントゲン透視下で、 右総 頸動脈を介し、 誘導カテーテルを左冠動脈に挿入した。 次いで 3mmPTCA用バ ルーンカテーテルを左前下降枝に挿入し、 9気圧で拡張せしめた。 19頭では P TCA群とし、 他の 19頭ではステントを挿入し、 ステント群とした。 P T C A群及びステント群それぞれについて下記のごとくグループ分けし検討し た。 すなわち、
1 ) 対照群 7頭では、 そのまま 3ヶ月間飼育し、 3ヶ月目に冠動脈を摘出し た。
2 ) 付加体直後及び 2週間後局所投与群。 6頭。 付加体 1アンプルを直後及び 2週間後局所投与し、 3ヶ月後、 冠動脈を摘出した。
3 ) 付加体直後及び 2週間後静注群 6頭。 付加体 3アンプルを、 直後及び 2週 間後静注し、 3ヶ月後冠動脈を摘出した。
(狭窄度の比較)
摘出した冠動脈を 3丽間隔で輪切りにし、 ァザン染色を行った。
中膜平滑より内部にある線維化組織の面積 (A) と中膜が囲む面積 (B) をプ ラニメーターで測定し、 AZ B X 1 0 0を算出し、 各々の冠動脈における最大 値を再狭窄率とみなし、 群間比較した。 結果を表 6に示す。
表 6
Figure imgf000016_0001
*Ρ<0. 05 ; **Ρ<0. 01 ( aと bの比較) ; #P<0. 05 ( bと cの比較)
局所投与、 静脈投与の'いずれでも有意に狭窄を抑制した。 ステント挿入による 狭窄においても、 同様に抑制した。 以上、 エバンスブルーとバトロキソビン付カロ 体の局所投与と静脈内投与のいずれにも、 強い冠動脈の再狭窄防止効果があるこ とを確認した。 明らかな副作用は見られなかつた。 産業上の利用可能性
本発明の血管平滑筋増殖抑制剤及び血管再狭窄防止剤は、 血管平滑筋細胞の増 殖抑制を図りつつ内皮細胞を早期に再生する効果を有するものであり、 冠動脈、 脳動脈、 末梢動脈等における血管形成術後又はバイパス術後の血管再狭窄等の血 管平滑筋増殖に起因する疾患の予防 ·治療のための医薬として有用である。

Claims

請求の範囲
1 . スルホン酸系ァゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニルメタン系色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系色素、 フエノチ アジン系色素及びシァニン系色素から選ばれる 1種又は 2種以上の生体適合性色 素を含有する血管平滑筋増殖抑制剤。
2 . スルホン酸系ァゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニルメタン系色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系色素、 フエノチ アジン系色素及びシァニン系色素から選ばれる 1種又は 2種以上の生体適合性色 素を含有する血管再狭窄防止剤。
3 . スルホン酸系ァゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニルメタン系色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系色素、 フエノチ アジン系色素及びシァニン系色素から選ばれる 1種又は 2種以上の生体適合性色 素並びにィンジゴカルミンを含有する血管再狭窄防止剤。
4 . 生体適合性色素が、 ナフタレンスルホン酸系ァゾ色素、 フエナントリジニ ゥム系色素、 ァクリジン系色素又はフヱノチアジン系色素である請求項 1記載の 血管平滑筋増殖抑制剤又は請求項 2若しくは 3記載の血管再狭窄防止剤。
5 . 生体適合性色素が、 エバンスブルー、 トリパンブルー、 ェチジゥムブロマ イド、 ァクリジンオレンジ、 メチレンブルー又はトルイジンブルーである請求項 1記載の血管平滑筋増殖抑制剤又は請求項 2若しくは 3記載の血管再狭窄防止剤。
6 . 血管平滑筋増殖抑制剤又は血管再狭窄防止剤製造のためのスルホン酸系ァ ゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニルメタン系色素、 フエナントリジニゥム 系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系色素、 フエノチアジン系色素及びシァ ニン系色素から選ばれる 1種又は 2種以上の生体適合性色素の使用。
7 . スルホン酸系ァゾ色素、 フタレイン系色素、 トリフエニルメタン系色素、 フエナントリジニゥム系色素、 ァクリジン系色素、 キサンテン系色素、 フエノチ アジン系色素及びシァニン系色素から選ばれる 1種又は 2種以上の生体適合性色 素を投与することを特徴とする血管平滑筋増殖に起因する疾患の処置方法又は血 管再狭窄防止のための処置方法。
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