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WO1997034145A1 - Anticorps a proteine tau antiphosphorylee et procede de detection de la maladie d'alzheimer l'utilisant - Google Patents

Anticorps a proteine tau antiphosphorylee et procede de detection de la maladie d'alzheimer l'utilisant Download PDF

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WO1997034145A1
WO1997034145A1 PCT/JP1997/000804 JP9700804W WO9734145A1 WO 1997034145 A1 WO1997034145 A1 WO 1997034145A1 JP 9700804 W JP9700804 W JP 9700804W WO 9734145 A1 WO9734145 A1 WO 9734145A1
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WO
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ser
serine
peptide
antibody
sequence
Prior art date
Application number
PCT/JP1997/000804
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English (en)
French (fr)
Inventor
Koichi Ishiguro
Kazuki Sato
Jun-Mi Park
Tsuneko Uchida
Kazutomo Imahori
Original Assignee
Mitsubishi Chemical Corporation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsubishi Chemical Corporation filed Critical Mitsubishi Chemical Corporation
Publication of WO1997034145A1 publication Critical patent/WO1997034145A1/ja

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    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
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    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
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    • G01N2800/28—Neurological disorders
    • G01N2800/2814—Dementia; Cognitive disorders
    • G01N2800/2821—Alzheimer

Definitions

  • the present invention relates to an antibody that can be used for detecting Alzheimer's disease, and more particularly, to a pair of antibodies.
  • Alzheimer's disease is a progressive dementia that develops in the elderly (45 to 65 years old). Pathological changes include degeneration of nerve cells and atrophy of the cerebral cortex due to a decrease in the number of nerve cells. However, pathologically, many senile plaques and neurofibrillary tangles are found in the brain. Senile dementia due to so-called spontaneous aging that occurs in the senile period of 65 years or older is also called Alzheimer-type senile dementia because there is no essential difference in pathology.
  • amyloid 9 protein a major component of senile plaque
  • PHFs paired helical filaments
  • Tau protein usually has a molecular weight of 48--6 by SDS polyacrylamide gel electrophoresis. A group of closely related proteins that form several bands at 5 kD, and are known to promote microtubule formation.
  • the evening protein incorporated into the PHF of Alzheimer's disease brain is normally more abnormally phosphorylated than the tau protein in the brain, suggesting that polyclonal antibodies against PHF (anti-ptau; J. Biochem., 99) 1807-1810 (1986)) and monoclonal antibodies against tau protein (tau-1 antibody; Pro Natl. Acad. Sci. USA, 83. 4913-4917 (1986)).
  • polyclonal antibodies against PHF anti-ptau; J. Biochem., 99) 1807-1810 (1986)
  • monoclonal antibodies against tau protein tau-1 antibody
  • Pro Natl. Acad. Sci. USA 83. 4913-4917 (1986)
  • tau-1 antibody Pro Natl. Acad. Sci. USA, 83. 4913-4917 (1986)
  • the mechanism of tau protein in Alzheimer's disease is being elucidated, for example, the phosphorylation site of phosphorylated tau protein incorporated in PHF is determined (Japanese Patent Application Laid-Open
  • an antibody which comprises, as an immunogen, a partial peptide containing a phosphorylation site of a phosphorylated tau protein in a paired 'helical' filament (Paired Helical Filament).
  • the phosphorylation site of the phosphorylated tau protein is the 198th serine, the 199th serine, the 202th amino acid in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • the above antibody which is one or more amino acid residues selected from the fourth serine, the 409th serine, the 41st serine, the 43rd serine, and the 42nd serine;
  • the phosphorylation sites of the phosphorylated tau protein are as follows: Serine 199, Serine 202, Threonine 205, and Thr31 in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • the above-mentioned antibody which is one or more amino acid residues selected from the second serine; the partial peptide containing a phosphorylation site is composed of the amino acid residue at the phosphorylation site and a plurality of amino acids before and / or after Z;
  • the above-mentioned antibody which is a peptide containing an acid residue;
  • the above-mentioned antibody, wherein the partial peptide containing a phosphorylation site is represented by the amino acid sequence described in any of SEQ ID NOs: 2 to 16 in the sequence listing.
  • a reagent kit comprising at least any one of the above antibodies and used for detecting Alzheimer's disease.
  • a method for detecting Alzheimer's disease comprising examining the reactivity of any one of the above antibodies with a sample obtained from an individual suspected of having Alzheimer's disease. Is done.
  • the tau protein examples include a tau having a primary structure of amino acid residues of 325-241 as described in Goedert et. Al., Neuron, 3, 519-526 (1989). And proteins.
  • the tau protein whose primary structure is represented by the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 of the sequence listing is used, the 198th serine, the 199th serine, and the 202nd serine of the same sequence are used.
  • One or more amino acid residues selected from serine, 409th serine, 412th serine, 413th serine and 422th serine are phosphorylated (J. Biol. Chem. , 270, 823-829 (1995) and Neurosci. Lett.. 189. 167-170 (1995)).
  • a peptide which is a partial peptide of a tau protein whose group is phosphorylated and which contains one or more of these phosphorylation sites.
  • a peptide containing an amino acid residue at the above-mentioned phosphorylation site and a plurality of amino acid residues before, after, or after Z is preferable.
  • a peptide containing 1 to 7 amino acid residues, more preferably 3 to 5 amino acid residues before or after the amino acid residue at the phosphorylation site or both is preferable.
  • those represented by the amino acid sequence described in any of SEQ ID NOs: 2 to 16 in the sequence listing are most preferred.
  • the antibody of the present invention can be obtained by immunizing an animal using a partial peptide containing the phosphorylated site of the phosphorylated tau protein as an immunogen, and preparing serum from the animal. At this time, an amino acid having a reactive functional group at the amino or carboxyl terminus of the peptide, such as cystine, lysine, glutamic acid, or aspartic acid, is introduced as a hapten and bound to the carrier protein, thereby excluding it. It is preferably used for epidemiology.
  • the partial peptides represented by SEQ ID NOs: 3, 13, 15, and 16 are used for phosphorylation sites as described in Tetrahedron Lett., 32, 7083-7086 (1991). It is synthesized by a peptide synthesis method by a solid phase method using a fluorine group as a protecting group.
  • the compound has an aromatic amino acid, a sulfur-containing amino acid, or a heterocyclic amino acid, such as a phosphorylated peptide represented by a sequence number other than the above, it is described in P-label Chemistry 1993, 109-112 (1994).
  • the partial peptide synthesized as described above is bound to a carrier protein such as bovine serum albumin (BS ⁇ ), thyroid globulin, and keyhole limpet hemosinin.
  • BS ⁇ bovine serum albumin
  • the conjugation can be easily carried out using a suitable condensing agent, for example, maleimide, glutaraldehyde, carpoimide or the like.
  • the animal is immunized with the peptide bound to the carrier protein thus obtained. Animal immunity What is necessary is just to carry out similarly to manufacture of a normal antibody.
  • a solution containing a peptide bound to a carrier protein is mixed with an adjuvant, if necessary, and subcutaneously or intraperitoneally into an animal usually used for producing antibodies, such as a mouse, a rat, a heron, a guinea pig, and a sheep.
  • Administer. A booster immunization every 2-3 weeks after the initial immunization will result in a highly titrated antiserum. Blood is collected from the immunized animal and serum is prepared.
  • the obtained antiserum can be used as it is without purification, but after heat treatment of the serum to inactivate complement, salting out with ammonium sulfate, ion exchange chromatography, etc.
  • the immunoglobulin fraction may be purified by the method described above. Further, by purifying the antibody using a peptide column on which a specific partial peptide is immobilized, an antibody that specifically recognizes the above-described phosphorylation site or its vicinity can be obtained.
  • antibody-producing cells are collected from the immunized animal, and fused with cultured cells such as myeloma cells derived from syngeneic animals to produce a hybridoma by a conventional method, and the immunoglobulin fraction is extracted from the culture solution of the hybridoma.
  • cultured cells such as myeloma cells derived from syngeneic animals to produce a hybridoma by a conventional method
  • the immunoglobulin fraction is extracted from the culture solution of the hybridoma.
  • the antibody obtained by the present invention is immunoreacted with a sample obtained from an individual suspected of having Alzheimer's disease by a commonly used method known per se, and an antigen-antibody reactant is detected to obtain a sample and an antibody.
  • Alzheimer's disease can be detected by examining the reactivity of the DNA.
  • a reagent kit for use in detecting Alzheimer's disease including the above-described immune reaction and detection step, can be prepared. Such a kit is provided by a configuration similar to that of a kit using a normal immune reaction.
  • the reagent kit of the present invention contains at least the antibody of the present invention, and further contains, as optional components, a sample diluent, a washing solution, a labeled antibody or a labeled antigen, a dye, a peptide for a positive control, and the like.
  • Alzheimer's disease can be detected as follows.
  • a sample is obtained from an individual suspected of having Alzheimer's disease, and then reacted with the antibody obtained as described above.
  • the sample include tissues such as cerebral cortex, cerebrospinal fluid, and body fluids such as blood. Detecting a sample of tissue according to the present invention If necessary, about 0.1 mg of tissue is required. When cerebrospinal fluid or blood is used as a sample, about 0.5 to 0.01 m1 is required.
  • the sample is homogenized in a physiological buffer, centrifuged, and the resulting supernatant is first fractionated to remove potential immunoglobulin and then A test is performed using the reactivity with the antibody obtained above as an index.
  • the fraction obtained above is subjected to electrophoresis, and the antibody obtained above is added to perform immunoblotting.
  • the antibody may be detected by attaching a commonly used label, or may be detected by reacting the antibody with a secondary antibody having immunoreactivity with the antibody.
  • Alzheimer's disease can be detected by the present invention.
  • FIG. 1 is a diagram of a dot plot showing the specificity of an antibody obtained by immunizing a partial peptide containing a phosphorylation site of a phosphorylated tau protein.
  • FIG. 2 is a photograph of electrophoresis showing the reactivity of the TS fraction obtained in the example (a fraction from which IgG was removed from the supernatant of the human cerebral cortex suspension) with the antibody used in the present invention. (Immune Lot).
  • FIG. 3 is a photograph (immunoplot) of electrophoresis showing the reactivity of the SDS precipitate fraction obtained in the example with the antibody used in the present invention.
  • FIG. 4 is a photograph (immunoplot) of electrophoresis showing the reactivity of the SDS precipitate fraction obtained in the example with the antibody used in the present invention.
  • FIG. 5 is a calibration curve in the competitive RIA measurement system obtained in the examples.
  • FIG. 6 shows the results of measuring the phosphorylated protein concentration in the cerebrospinal fluid of Alzheimer's disease patients and non-demented patients obtained in the examples.
  • BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited thereto.
  • Preparation Example 1 Preparation of a partial peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing (hereinafter, this peptide may be referred to as “PS202” and an antibody against this peptide may be referred to as “ant: i-PS202”)
  • H-Lys-Ser-Ser- Pro-Gly-Ser H 2 P03 -Pro-Gly-Thr-Pro-Gly-Ser-Arg- NH 2 the following way a peptide represented by (SEQ ID NO: 3) Manufactured by The symbols used in the following description indicate the following, respectively.
  • MBHA resin P-methylbenzhydrylamine resin; Boc: t-butyloxycarbonyl group; Bzl: benzyl group; Ph: phenyl group; Tos: P-toluenesulfonyl group: Z (2-C1): 2-chlorobenzene Roxycarbonyl group.
  • the phosphate-protected peptide 9 Omg and platinum oxide 8 Omg (catalyst) obtained in the above (mouth) were mixed with 1 ml of acetic acid and stirred at room temperature under hydrogen pressure of 5 to 6 atm for 12 hours. Afterwards, the catalyst was filtered. The filtrate and washings are collected, lyophilized, purified by preparative HPLC and the final product, H-Lys-Ser-Ser-Pro-Gly-Serd PO ⁇ -Pro-Gly-Thr-Pro- 55 mg of a phosphorylated peptide represented by Gly-Ser-Arg-NH 2 was obtained. The structure of this substance was confirmed by FAB mass spectrometry.
  • Preparation Example 5 Preparation of a partial peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the Sequence Listing (hereinafter, this peptide may be referred to as “PS199”, and an antibody against this peptide may be referred to as “anti-PS199”)
  • H-Lys-Ser-Gly- Tyr-Ser-Ser H z P0 3 -Pro-Gly-Ser-Pro-Gly-Thr-NH 2 peptide represented by (SEQ ID NO: 2) Manufactured.
  • the symbols used in the following description are as follows.
  • MBHA resin P-methylbenzhydrylamine resin; Boc: t-butyloxycarbonyl group: Bzl: benzyl group; cHex: cyclohexyl group: Z (2-Br): 2-bromobenzyloxycarbonyl group; Z (2-C1): 2-chlorobenzyloxycarbonyl group.
  • Boc-Ser (Bzl) -Bzl resin 7 mg (ammonia content 0.70 mmol / g resin) was set in a Biosearch 9500 type automatic peptide synthesizer, and Boc-Ser (Bzl) was added thereto.
  • Preparation Example 7 Preparation of partial peptide having an amino acid sequence described in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing (hereinafter, this peptide is referred to as “PS396”, and an antibody against this peptide is referred to as “anti-PS3l”) H_Cys- Glu-Ile-Va Bok Tyr-Lys- Ser (H 2 P0 3) - Pro- was prepared by described below how a peptide represented by Val-Va Bok Ser- Gly_NH 2 (SEQ ID NO: 1 1). The symbols used in the following description indicate the following, respectively.
  • MBHA resin P-methylbenzhydrylamine resin; Boc: t-butyloxycarbonyl group; Bzl: benzyl group; MBzl: 4-methoxybenzyl group; cHex: cyclohexyl group; Z (2-Br) : 2-bromobenzyloxycarbonyl group; Z (2-C1): 2 chlorobenzyloxycarbonyl group.
  • Production Examples 8 to 10 Partial peptides having the amino acid sequences described in SEQ ID NOs: 4, 12, and 14 in the sequence listing were also obtained in the same manner as in Production Examples 5, 6, and 7 (hereinafter, these are referred to as " The peptides may be referred to as “PT205”, “PS404” and “PS422”, respectively, and the antibodies against these peptides may be referred to as “anti-PT205J,“ anti-PS404 ”and“ anti-PS422 ”, respectively).
  • Preparation Example 1 1 Preparation of partial peptide having an amino acid sequence described in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing (hereinafter, this peptide may be referred to as “PS235”, and an antibody against this peptide may be referred to as “anti-PS235”)
  • Fmoc-Lys (Boc) -Alko resin (amino acid content 0.65 mmol / g resin) was set on an Applied Biosystems Co., Ltd. type 431 A automatic peptide synthesizer, and Fmoc-Ala- 0H, Fmoc-Ser (tBu) -0H, Fmoc-Ser (tBu) -0H, Fmoc-Pro-OH, Fmoc-Ser [P0 (0H) (0Bzl)]-0H.
  • Fmoc-Lys (Boc) -OH Supply Fmoc-Pro-OH, Fmoc-Pro-OH, Fmoc- Thr (tBu) -0H, Fmoc-Arg (Pmc) _0H, and supply HBTU [2- (1H-benzotriazole small yl) -1, 1, 3, 3, -tetramethyluronium hexaf luorophosphate] as a condensing agent
  • HBTU 2- (1H-benzotriazole small yl) -1, 1, 3, 3, -tetramethyluronium hexaf luorophosphate
  • Production Examples 12 to 15 Partial peptides having the amino acid sequences described in SEQ ID NOs: 5, 8, 9 and 10 in the sequence listing were also obtained in the same manner as in Production Example 11 described above (hereinafter referred to as “ Peptides were identified as “PS199.202”, “ratPS235”, “PT231, PS235J,” “PS262”, and antibodies against these peptides as “anti-PS199, 202”, “anti-ratPS235”, “anti-ratPS235”, respectively. PT231, PS235 ”and“ anti-PS262 ”).
  • Trt trityl group.
  • Fmoc-NH-SAL resin 4- (2 ', 4'-dimethoxyphenyl-Fmoc-aminoethy U-phenoxyfela; Boc: t-Bunanoloxycanolephoninole group; tBu: t-butyl group: Bzl: benzyl group Fmoc: 9-fluorenylmethoxycarbonyl group; Trt: trityl group; Pmc: pentamethylchroman-6 sulfonyl group.
  • Fmoc-NH-SAL resin (amine content 0.47 mmo1 / g resin) was set on an A43 type A1 automatic peptide synthesizer manufactured by AB1, and Fmoc-Cys (Trt) -OH, Fmoc -G lu (0tBu) -0H, Fmoc- et-OH. Fmoc-Val-OH. Fmoc-Glu (0tBu) -0H.
  • Example 1 Preparation of Antibody An immunogen was prepared by binding the partial peptides obtained in the above Production Examples 1 to 17 to hemocyanin of an equal weight of a keyhole linker. 0.2 mg of the immunogen was dissolved in 0.3 ml of physiological saline, emulsified with an equal volume of Freund's adjuvant, and immunized every three weeks with a egret. The obtained antiserum was purified by elution from an Affigel 15 (Bio-Rad) column to which each antigen peptide was bound, using an I band unopure gentle Ag / Ab buffer system (Pierce). Thus, an antibody that specifically recognizes the phosphorylation site shown above was obtained. Antibody specificity was confirmed by dot plot.
  • the membrane was washed three times for 5 minutes with TB S (TB ST) containing Tween 20.
  • TB ST TB S
  • Tween 20 Tween 20
  • Anti-Egret IgG antibody (secondary antibody) covalently linked to alkaline phosphatase is diluted 500 fold with TBST, and the membrane is immersed in the diluted solution at 4 ° C for 2 hours to bind the antigen-primary antibody conjugate on me nibrane.
  • BCIP 5-bromo-4- 4-chloro-3-indolyl phosphate
  • NBT NBT at a concentration of 0.165 mg Zml and 0.333 mg Zm1, respectively (100 mM Tris-HCl (pH 9.5), 100 mM NaCl, 5 It was detected by immersing the membrane in mM MgC 12 ) and developing a purple color. The reaction was stopped by immersing the membrane in water.
  • the primary antibodies used in this example were all the anti-sperm of the egret, but it was confirmed that similar results were obtained with IgG purified from the antisera by affinity using a peptide column.
  • Anti-serum dilution ratios were 100-fold for anti-PS199, 250-fold for anti-PS202, 500-fold for anti-PT205, 250-fold for anti-PT231, 25-fold for anti-PS235, and 25-fold for anti-PS235.
  • rat PS235 (anti-rPS235) 25x, anti-PS262 500x, anti-PS396 1 000x, anti-PS404 500x, anti-PS413 500x, anti-PS422 500x It is.
  • a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19 (in FIG. 1, indicated by K1; A peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20), a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 (indicated by K2 in FIG. Peptide), a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 21 (in FIG. 1, indicated by AK-K3, a peptide represented by the 384- to 438-amino acid sequence of SEQ ID NO: 1) and SEQ ID NO: Of a peptide represented by 22 amino acid sequences (in FIG. 1, indicated by K1; A peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20), a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 (indicated by K2 in FIG. Peptide), a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 21 (in FIG. 1, indicated by AK-K3, a peptide represented by the 384
  • Figure 1 shows the results of the dot blot.
  • the horizontal axis shows the peptide adsorbed on the membrane by the dot, and the vertical axis shows the antibody. It can be seen that the antibodies obtained above specifically bind to the respective phosphorylation sites.
  • Example 2 Examination of reactivity between antibody and sample
  • a human brain extract was prepared using 8 normal human brains and 19 Alzheimer's disease patient brains. The following operations were all performed at 4 ° C.
  • Centrifugation was performed at 80,000 rpm for 15 minutes to obtain a supernatant.
  • the human IgG in the supernatant was removed by Protein G-Sepharose 4 Fast Flow (Pharmacia), and the resulting fraction was used as the TS fraction.
  • the precipitate is made into a suspension in the above-mentioned TS inh 2 m ⁇ by sonication and homogenizer, and washed by centrifugation at 80,000 rpm for 15 minutes.
  • the suspension was made into a suspension by sonication and homogenizer in riton X-100, TS inh 2 ml.
  • the suspension was centrifuged at 80,000 rpm for 15 minutes to obtain a supernatant (TX fraction).
  • the precipitate is made into a suspension by sonication and homogenizer in l% Triton X-100, TS inh 2 ml, washed by centrifugation at 80, 000 rpm for 15 minutes, and then washed.
  • the suspension was sonicated in 2% SDS, TS inh 2 ml and made into a suspension by a homogenizer. After centrifugation at 80,000 rpm for 15 minutes, a supernatant (SDS supernatant fraction) was obtained.
  • the precipitate was suspended in 2 ml of 2% SDS and TS inh by sonication and homogenizer, and washed by centrifugation at 80,000 rpm for 15 minutes.
  • the suspension was sonicated in 2 ml of SDS and TS inh, and the suspension was made into a 'suspension fraction' (SDS precipitate fraction) with a homogenizer.
  • Laemmli sample treatment solution (Nature, 227.680-685 (1970)) was added to each of the fractions obtained above, heated at 95 ° C for 5 minutes, and subjected to SDS polyacrylamide gel electrophoresis. Transferred to mobilon P-membrane (Millipore). After blocking with 5% skim milk and TBS for 2 hours, the phosphorylation site-specific antibody obtained in Example 1 above was reacted as a primary antibody for 14 hours. After washing with Tween 20, TBS, secondary antibody treatment was performed with ProtoBlot AP of Promega to develop the antigen-antibody reaction product on the membrane.
  • the primary antibodies were all 1 gG of Egret, and the dilution ratio of the primary antibodies was indicated by the number next to X under the name of each antibody in FIGS. Most primary antibodies were affinity-purified using an antigen peptide column, but PS262 and PS422 remained antisera and were distinguished by adding an S under these antibody names in the figure.
  • Tau-N and Tau-C are peptides obtained in Production Examples 16 and 17, respectively.
  • Tau-N is the second to 12th Tau-C, which corresponds to the amino acid sequence of the eye, corresponds to the amino acid sequence at positions 42 to 438, and was used as a control indicating the presence of tau protein.
  • Juvenile tau protein is known as a highly phosphorylated tau protein in PHF (J. Biol. Chem., 268. 25712-25717 (1993)).
  • FIG. 2 shows the results of the immunoblotting of the TS fraction
  • FIGS. 3 and 4 show the results of the immunoblotting of the SDS precipitated fraction.
  • a in the column of AD / N indicates the result of the brain extract of Alzheimer's disease patient
  • N indicates the result of the normal brain extract
  • M lane indicates the molecular weight marker
  • the number next to it indicates the molecular weight of the marker. Shown in D units.
  • the lane of rat P8 shows the results of the immunoblotting of the positive control, and the band indicated by the arrow indicates the band of the phosphorylated tau protein.
  • the TS fraction contains a readily soluble tau protein
  • the SDS precipitated fraction contains a poorly soluble tau protein. Therefore, according to the method of the present invention, not only the presence of phosphorylated tau protein in the tissue but also the The presence of phosphorylated tau protein in cerebrospinal fluid or blood that seems to contain soluble tau protein is also recognizable, indicating that not only tissue but also cerebrospinal fluid or blood can be used as a sample.
  • RIA Radioimmunoassay
  • a reversed-phase column (4 mm id, 25 cm long) Purified by HP LC using. Elution was carried out in 0.1% trifluoroacetic acid while increasing the concentration of acetonitrile to 60% with a concentration gradient of 1% / min. The flow rate of the eluate was 1 ml / min, and the eluate was fractionated every 0.5 minutes. A part of the fraction near the peak monitored by the radioactivity detector was measured with a scintillation counter to confirm the target fraction. In this fraction, a phosphate buffer (Du containing 2% serum albumin (BSA), 0.05% sodium azide, 0.05% Tween 20) was added.
  • BSA serum albumin
  • peptides having a cysteine added to the amino terminal were manufactured by A peptide having tyrosine added to the amino terminus instead of cysteine was synthesized by the Fmoc method according to Example 11 and a 125- labeled product was produced by the method described below. 10 g of the peptide was dissolved in 501 of 0.2 M phosphate buffer (pH 7.3), and Na 125 I 18.5 MB q (500 ⁇ ; DuPont, NEZ-033) H) was added and stirred.
  • anti-PS 262J The following is an example of “anti-PS 262J” among the antibodies prepared in Production Example 18.
  • 125 I—YPS 262 obtained in (1) was used in a RIA buffer (0.1% BSA, 0.05% Sodium chloride, dissolved in Du [becco's PBS (-)) containing 0.05% Tween 20, and added to an assay tube at 100 1 (about 10,000 cpm).
  • RIA buffer 100 1 containing peptide YPS 262 in the range of 0 to 100 00 fmo 1 / m 1 was added, followed by addition of RIA buffer 300 1 and 10,000-fold with RIA buffer.
  • the diluted “anti-ichi PS 262” 1001 was added and stirred. Four.
  • a calibration curve was obtained by plotting the standard substance concentration f mo 1 / m 1 on the horizontal axis and the ratio of the count at each concentration to the standard substance concentration 0 f mo 1 Zm 1 on the vertical axis. .
  • This calibration curve is shown in FIG. FIG. 5 shows that the measurement method of the present invention can accurately measure up to 30 fmo 1 / m 1.
  • a derivative peptide S262 of SEQ ID NO: 10 in the sequence listing, in which cysteine was not added to the amino terminal and serine was not phosphorylated was synthesized by the Fmoc method according to Production Example 11, and the antibody anti-PS 262 was synthesized.
  • the specificity of PS262 was evaluated, the count did not decrease even when S262 was added to a concentration of 2000 fmo1 / m1, and the antibody of the present invention specifically inhibited PS262 containing phosphorylated serine. It turned out to be aware.
  • the concentration of phosphorylated tau protein in the cerebrospinal fluid of eight Alzheimer's disease patients (AD) was measured.
  • Phosphorylated protein concentration in cerebrospinal fluid of seven non-demented patients was measured as control (CTL).
  • Figure 6 shows the results. As shown in FIG. 6, whereas the phosphorylated tau protein either in CTL is not detected, phosphorylated tau protein in AD 45 ⁇ 76 fmo 1 Z m 1 is detected.
  • Industrial Applicability According to the present invention, it is possible to provide an antibody that specifically recognizes a phosphorylated tau protein using a partial peptide containing a phosphorylated site of a phosphorylated tau protein in PHF as an immunogen. it can.
  • phosphorylated tau protein in brain extracts and tissue sections can be confirmed using the obtained antibodies. Furthermore, the method for measuring a phosphorylated protein of the present invention using this antibody can easily measure the phosphorylated protein in a body fluid, and is useful for detecting Alzheimer's disease.
  • Lys Lys lie Glu Thr His Lys Leu Thr Phe Arg Glu Asn Ala Lys Ala
  • Cys Lys Ser Lys lie Gly Xaa Thr Glu Asn Leu Lys 1 5 10
  • Cys Lys Ser Lys lie Gly Ser Thr Glu Asn Leu Lys

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Description

- ト 明細書 抗リン酸化タウ蛋白質抗体及びそれを用いるアルツハイマー病の検出方法 技術分野 本発明はアルツハイマー病の検出に用い得る抗体に関し、 更に詳細には、 ペア
—ド 'ヘリカル ' フィラメント （Paired Helical Filament) 中のリン酸化タウ蛋 白質のリン酸化部位を含む部分ペプチドに対する抗体、 それを含む試薬キッ ト、 及び前記抗体又はキッ トを用いたアルツハイマー病の検出方法に関する。 背景技術 アルツハイマー病は初老期 （4 5〜6 5才） に発病する進行性の痴呆で、 病的 な変化として神経細胞の変質および神経細胞数の減少による大脳皮質の萎縮が認 められ、 また、 病理学的には、 その脳内に多数の老人斑と神経原線維変化が認め られる。 6 5才以上の老年期に発症するいわゆる自然老化による老年痴呆も、 病 理学的に何ら本質的な差は認められないため、 アルツハイマー型老年痴呆と呼ば れている。
この疾患の患者数は、 高齢者人口の増加とともに増大し、 社会的に重要な疾患 となっている。 しかし、 この疾患の原因については諸説あるものの結果的には未 だ不明であり、 早期の解明が望まれている。
アルツハイマー病の病理変化のひとつである老人斑の主要成分が、 アミロイ ド 9プロテインであることが解明されている （Annu. Rev. Neurosci. , 12, 463-49 0( 1989) ) 。 また、 もうひとつの病理変化である神経原線維変化は、 神経細胞内に P H F (ペア一ド 'ヘリカル ' フィラメント ： Paired helical filament) が蓄積 してくるものであり、 その構成成分のひとつとしてタウ蛋白質が同定されている (J. Biochem. , 99. 1807- 1810(1986) ; Proc. Natl. Acad. Sci. ISA, 83, 4913 -4917( 1986))。
タウ蛋白質は、 通常 S D Sポリアクリルアミ ドゲル電気泳動で分子量 4 8〜6 5 kDに数本のバンドを形成する一群の近縁蛋白質であり、 微小管の形成を促進す ることが知られている。
アルツハイマー病脳の P H F中に組み込まれた夕ゥ蛋白質は、 通常脳中のタウ 蛋白質よりも異常にリン酸化されていることが、 P H Fに対するポリクロ一ナル 抗体 （抗 ptau; J. Bioc em. , 99. 1807- 1810(1986) )や、 タウ蛋白質に対するモノ クローナル抗体 （tau- 1抗体； Pro Natl. Acad. Sci. USA, 83. 4913-4917( 198 6) ) を用いて証明されている。 また、 P H F中に組み込まれたリン酸化タウ蛋白 質のリン酸化部位も決定されるなど （特開平 6-239893) 、 アルツハイマー病にお けるタウ蛋白質の機構が判明しつつある。
しかし、 P H F中のリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位に着目してアルッハイ マー病の検出を行うことについては現在までに知られておらず、 また、 種々の抗 体を使用したアルツハイマー病の検出方法が提案されてはいるが、 臨床上有効な 新たな検出方法が求められているのが現状であった。 発明の開示 本発明者らは、 P H F中のリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位に着目し、 該リ ン酸化部位を含む部分べプチドを免疫原とする抗体がアルツハイマー病の検出に 有用であることを見出し本発明を完成するに至った。
即ち本発明によれば、 ペア一ド 'ヘリカル ' フィラメント （Paired Helical F ilament) 中のリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位を含む部分べプチドを免疫原と する抗体が提供される。
この発明の好ましい態様によれば、 リン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位が、 配 列表の配列番号 1で表されるアミノ酸配列中の 1 9 8番目のセリン、 1 9 9番目 のセリン、 2 0 2番目のセリ ン、 2 0 5番目のスレオニン、 2 3 1番目のスレオ ニン、 2 3 5番目のセリン、 2 6 2番目のセリン、 3 9 6番目のセリン、 4 0 3 番目のスレオニン、 4 0 4番目のセリン、 4 0 9番目のセリン、 4 1 2番目のセ リン、 4 1 3番目のセリン及び 4 2 2番目のセリンから選ばれる 1以上のァミノ 酸残基である上記抗体； リン酸化タウ蛋白質のリ ン酸化部位が、 配列表の配列番号 1で表されるァミノ 酸配列中の 1 9 9番目のセリン、 2 0 2番目のセリン、 2 0 5番目のスレオニン、 2 3 1番目のスレオニン、 2 3 5番目のセリン、 2 6 2番目のセリン、 3 9 6番 目のセリン、 4 0 4番目のセリン、 4 1 2番目のセリン、 4 1 3番目のセリン及 び 4 2 2番目のセリンから選ばれる 1以上のァミノ酸残基である上記抗体； リン酸化部位を含む部分べプチドが、 そのリン酸化部位のァミノ酸残基とその 前および Zまたは後の複数個のァミノ酸残基を含むぺプチドである上記抗体； リン酸化部位を含む部分べプチドが配列表の配列番号 2から 1 6のいずれかに 記載のァミノ酸配列で表される上記抗体が提供される。
また、 本発明の別の態様によれば、 少なくとも、 上記いずれかの抗体よりなる、 アルツハイマー病の検出に用いるための試薬キッ 卜が提供される。
さらに、 本発明の別の態様によれば、 上記いずれかの抗体と、 アルツハイマー 病の疑いのある個体から得られた試料との反応性を調べることを特徴とするアル ッハイマー病の検出方法が提供される。
本発明を以下に詳細に説明する。
本発明においてタウ蛋白質の具体例としては、 Goedert et. alの Neuron, 3, 5 19- 526( 1989)に記載の 3 5 2アミノ酸残基〜 4 4 1アミノ酸残基の一次構造を有 するタウ蛋白質等が挙げられる。 例えば、 一次構造が配列表の配列番号 1に記載 のアミノ酸記列で表されるタウ蛋白質を使用した場合、 同配列の 1 9 8番目のセ リン、 1 9 9番目のセリン、 2 0 2番目のセリン、 2 0 5番目のスレオニン、 2 3 1番目のスレオニン、 2 3 5番目のセリン、 2 6 2番目のセリン、 3 9 6番目 のセリン、 4 0 3番目のスレオニン、 4 0 4番目のセリン、 4 0 9番目のセリン、 4 1 2番目のセリン、 4 1 3番目のセリンおよび 4 2 2番目のセリンから選ばれ る 1以上のアミノ酸残基がリン酸化される （J. Biol. Chem. , 270, 823-829( 199 5)および Neurosci. Lett. . 189. 167- 170( 1995) )。
本発明においては、 上記配列の 1 9 9番目のセリン、 2 0 2番目のセリン、 2 0 5番目のスレオニン、 2 3 1番目のスレオニン、 2 3 5番目のセリン、 2 6 2 番目のセリン、 3 9 6番目のセリン、 4 0 4番目のセリン、 4 1 2番目のセリン、 4 1 3番目のセリンおよび 4 2 2番目のセリンから選ばれる 1以上のァミノ酸残 基がリン酸化されたタウ蛋白質の部分べプチドであって、 これらのリン酸化部位 を 1以上含むぺプチドを使用することが好ましい。
本発明で好ましく用いられるタウ蛋白質の部分べプチドとしては、 上記リン酸 化部位のァミノ酸残基とその前および Zまたは後の複数個のァミノ酸残基を含む ペプチドが好ましい。 特に、 リン酸化部位のアミノ酸残基の前または後ろの一方 又は両方に、 1〜 7アミノ酸残基、 より好ましくは 3〜 5アミノ酸残基含むぺプ チドが好ましい。 更に、 これら部分べプチドの中では、 配列表の配列番号 2から 1 6のいずれかに記載のァミノ酸配列で表されるものが最も好ましい。
本発明の抗体は、 上記のようなリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位を含む部分 ぺプチドを免疫原として動物を免疫し、 その動物から血清を調製することによつ て得られる。 その際、 上記ペプチドのァミノ末端若しくはカルボキシル末端に反 応性の官能基を有するアミノ酸、 例えばシスティン、 リジン、 グルタミ ン酸、 ァ スバラギン酸等を導入したものをハプテンとして担体蛋白質に結合し、 それを免 疫原に用いることが好ましい。
上記のペプチド中、 配列番号 3、 1 3、 1 5及び 1 6で表される部分ペプチド は、 Tetrahedron Lett. , 32, 7083-7086 ( 1991 )に記載されているように、 リン酸 化部位に対する保護基としてフ 二ル基を使用した固相法によるべプチド合成法 により合成される。
上記以外の配列番号で表されるリン酸化べプチドのように、 芳香族ァミノ酸、 含硫アミノ酸及び複素環式アミノ酸を有する場合には、 P印 tide Chemistry 1993, 109- 112( 1994)に記載されているように、 リン酸化部位に対する保護基としてシ クロへキシル基を使用したペプチド固相法、 あるいは Chem. Lett. , 1099 1112 (1994)に記載されているように、 リン酸化部位に対する保護基としてベンジル基 を使用したぺプチド固相法により合成される。
抗体の調製に際して、 上記のようにして合成された部分ペプチドを、 牛血清ァ ルブミ ン （B S Α ) 、 甲状腺グロプリン、 キーホール · リンぺッ 卜のへモシァニ ン等の担体蛋白質に結合させる。 結合は、 適当な縮合剤、 例えばマレイ ミ ド、 グ ルタールアルデヒド、 カルポジイミ ド等を用いて容易に行うことができる。 かく して得られる担体蛋白質に結合されたぺプチドを動物に免疫する。 動物の免疫は、 通常の抗体の製造と同様にして行えばよい。 すなわち、 担体蛋白質に結合された ペプチドを含む溶液を、 必要に応じてアジュバントと混合し、 マウス、 ラッ ト、 ゥサギ、 モルモッ ト、 ヒッジ等、 通常抗体の製造に用いられる動物の皮下または 腹腔内に投与する。 初回免疫後、 2〜 3週間毎に追加免疫を行うと、 力価の高い 抗血清が得られる。 免疫した動物から血液を採取し、 血清を調製する。 本発明に おいては、 得られた抗血清は、 精製することなくそのまま用いることもできるが、 血清を熱処理して補体を失活させた後、 硫酸アンモニゥムによる塩析、 イオン交 換クロマトグラフィ一等によってィムノグロプリン画分を精製してもよい。 また、 特定の部分べプチドを固定化したぺプチドカラムを用いて抗体を精製することに より、 上記で示したリン酸化部位又はその近傍を特異的に認識する抗体が得られ る。
また、 免疫した動物から抗体産生細胞を採取し、 常法によって、 同系動物由来 のミエローマ細胞等の培養細胞と融合させてハイプリ ドーマを作製し、 そのハイ プリ ドーマの培養液からィムノグロブリン画分を調製することによって、 特定の ェピトープを認識するモノクローナル抗体が得られる。
本発明によって得られた抗体とアルツハイマー病の疑いのある個体から得られ た試料とを、 それ自体既知の通常用いられる方法により免疫反応させ、 抗原—抗 体反応物を検出して試料と抗体との反応性を調べることによりアルツハイマー病 を検出できる。 また、 得られた抗体を用いて、 上記免疫反応及び検出工程等を含 むアルツハイマー病の検出に用いるための試薬キッ トを調製できる。 このような キッ トは、 通常の免疫反応を利用したキッ 卜と同様の構成によって提供される。 すなわち、 本発明の試薬キッ トは、 少なくとも本発明の抗体を含み、 さらに任意 の要素として、 試料希釈液、 洗浄液、 標識化抗体または標識化抗原、 色素、 陽性 コントロール用のぺプチド等を含む。
本発明の抗体又は試薬キッ 卜を用いると、 例えば次の通りアルツハイマー病を 検出できる。
先ず、 アルツハイマー病の疑いのある個体から試料を入手し、 次いで上記のよ うにして得られた抗体と反応させる。 前記試料としては、 大脳皮質等の組織、 脳 脊髄液または血液等の体液が挙げられる。 組織の試料を本願発明に従って検出す る場合、 組織が約 0 . l m g程度必要である。 また脳脊髄液や血液を試料として 用いる場合、 約 0 . 5〜 0 . 0 1 m 1程度が必要である。
上記のような試料が得られたあと、 その試料を生理的緩衝液中でホモジナイズ し、 遠心分離し、 次いで得られた上清はまず分画して潜在している免疫グロプリ ンを除去したのち、 上記で得られた抗体に対する反応性を指標として試験を行う。 上記で得られた画分を電気泳動にかけ上記で得られた抗体を加えて免疫ブロッ トを行う。 このとき抗体には通常使用されるような標識を付けることにより検出 してもよく、 この抗体と免疫反応性のある二次抗体と反応させることにより検出 してもよい。
このようにして、 アルツハイマー病の疑いのある個体について、 試料と抗体と の反応性を調べ、 アルツハイマー病でない個体のコントロールと比較して反応性 が増大している場合は、 その個体はアルツハイマー病であると確認される。 また、 アルツハイマー病である個体のコントロールと比較して反応性が低下している場 合は、 その個体はアルツハイマー病でないと、 確認される。 このようにして、 本 発明によってアルツハイマー病の検出を行うことができる。
本発明においては、 リン酸化タウ蛋白質全体、 あるいは P H Fを免疫原として 得られる抗体と異なり、 各リン酸化部位に対する特異性の高い抗体が得られ、 抗 原認識の特異性を解析することなく、 リン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位特異的 検出に有用である。 更に、 各リン酸化部位について、 部位特異的な種々の抗体を 効率的に得ることができる。 かく して得られる種々の抗体とアルツハイマー病個 体の試料との反応性を検討することにより、 アルツハイマー病の検出に最も適し た抗体を簡便に選択することができる。 図面の簡単な説明 図 1は、 リン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位を含む部分べプチドを免疫して得 られた抗体の特異性を示すドッ トプロッ 卜の図である。
図 2は、 実施例で得られた T S画分 （ヒ ト大脳皮質懸濁液の上清から I g Gを 除去した画分） と本発明で用いる抗体との反応性を示す電気泳動の写真 （免疫プ ロッ ト） である。
図 3は、 実施例で得られた S D S沈殿画分と本発明で用いる抗体との反応性を 示す電気泳動の写真 （免疫プロッ ト） である。
図 4は、 実施例で得られた S D S沈殿画分と本発明で用いる抗体との反応性を 示す電気泳動の写真 （免疫プロッ ト） である。
図 5は、 実施例で得られた競合法 R I A測定系における検量線である。
図 6は、 実施例で得られたアルツハイマー病患者および非痴呆患者の脳脊髄液 中のリン酸化タゥ蛋白質濃度の測定結果を示す。 発明を実施するための最良の形態 以下に実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、 本発明はこれらに 限定されるものではない。 製造例 1 配列表の配列番号 3に記載のアミノ酸配列を有する部分べプチド (以下、 本ペプチドを 「PS202」 、 本ペプチドに対する抗体を 「ant:i -PS202」 と称 することもある） の調製
H-Lys-Ser-Ser-Pro-Gly-Ser(H2 P03 )-Pro-Gly-Thr-Pro-Gly-Ser-Arg- NH 2 (配列 番号 3 ) で表されるペプチドを次に述べる方法により製造した。 なお、 以下の説 明で用いる記号は各々次のものを示す。 MBHA樹脂： P-メチルベンツヒ ドリルアミ ン樹脂； Boc： t-ブチルォキシカルボニル基； Bzl：ベンジル基； Ph： フヱニル基 ； Tos： P-トルエンスルホニル基： Z(2- C1 )： 2-クロルべンジルォキシカルボニル 基。
(ィ） H-Lys[Z(2-Cl) ]-Ser(Bzl )-Ser(Bzl )-Pro-Gly-Ser[P0(0Ph) 2 ]-Pro-Gly-T hr(Bzl)- Pro-Gly- Ser(Bzl )-Arg(Tos)-MBHA樹脂の製造
MBHA樹脂 0 . 9 4 g (ァミ ン含量 0 · 6 4 m m ο 1 / g樹脂） をバイオサーチ 社製 9 5 0 0型自動べプチド合成機にセッ トし、 これに Boc-Arg(Tos)- OH, Boc-S er(Bzl)- OH, Boc-Gly-OH, Boc- Pro- OH, Boc- Thr(Bzl )- OH, Boc-Glv-OH, Boc -Pro OH, Boc- Ser[P0(0Ph)2]- OH, Boc-Gly-OH, Boc-Pro- OH, Boc Ser(Bzl)-OH, Boc- Ser(Bzl)-0H, Boc-Lys[Z(2- C1)]-0Hを供給して、 ジイソプロピルカルポジイミ ド を縮合剤として順次縮合させて上記の側鎖保護べプチド -MBHA樹脂 2. 38 gを得 た。
(口） フッ化水素処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護ペプチド- MBHA樹脂中の 1. 34 gを採取し、 これを 蛋白質研究奨励会ペプチド研究所製のフッ化水素反応装置にセッ トし、 1. 5m 1のァニツールの存在下で 1 3 m 1のフッ化水素と氷冷下 1時間反応させた。 反 応終了後、 フッ化水素を減圧下留去し、 残留物を酢酸ェチルで洗浄した後、 2M 酢酸 1 50m lで抽出処理して H- Lys-Ser- Ser-Pro- Gly_Ser[P0(0Ph)2」- Pro-Gly- Thr- Pro-Gly- Ser- Arg-NH2で表されるリン酸基を保護した粗ペプチド 35 Omgを 得た。
これを 3◦ %酢酸 20 m 1に溶解してセフアデックス G— 25のカラム （内径 5 cm、 長さ 1 09 cm) にかけ、 同じ溶媒を用いて溶出して目的物を含む画分 を集めた。 次いでこれを少量の蒸留水に溶解し OD S (ォクタデシルシラン） を シリ力に結合した逆相系のカラム （内径 2 c m、 長さ 25 c m) を用いた H P L C (高速液体クロマトグラフィー） により精製した。 溶出は 0. 1 %トリフルォ 口酢酸中、 5から 65 %のァセトニトリルの直線濃度勾配により行った。 精製物 の収量は 1 1 Omgであった。 本物質の構造は F A B質量分析により確認された。 測定値 [M + H] + ; 1 445、 計算値 （C H N tBO P t + H) ； 1445。
(ハ） 加水素分解
上記 （口） で得たリン酸基を保護したぺプチド 9 Omg及び酸化白金 8 Omg (触媒） を 1 m 1の酢酸と混合して 5〜6気圧の水素圧下、 室温で 1 2時間撹拌 した後、 触媒を濾過した。 濾液及び洗液を集めて凍結乾燥し、 分取 H P L Cによ り精製して最終目的物である H- Lys-Ser- Ser-Pro- Gly-Serd PO^-Pro-Gly- Thr- P ro-Gly-Ser-Arg-NH2 で表されるリン酸化ペプチド 55mgを得た。 本物質の構造 は F A B質量分析により確認された。 測定値 [M + H] +； 1 294、 計算値 （C 49Η 85Ν ι8θ 2ΐ P i + H) ； 1 294。 製造例 2〜 4 配列表の配列番号 1 3、 1 5及び 1 6に記載のアミノ酸配列を有する部分ぺプ チドについても上記製造例 1と同様にして得た（以下、 これらのぺプチドをそれぞ れ 「PS413」 、 「PS412」 、 「PS412,413」 、 これらのペプチドに対する抗体をそれ ぞれ 「anti-PS413」 、 「anti-PS412」 、 「anti-PS412, 413」 と称することもある） 。 製造例 5 配列表の配列番号 2に記載のアミノ酸配列を有する部分べプチド（以 下、 本ペプチドを 「PS199」 、 本ペプチドに対する抗体を 「anti-PS199」 と称する こともある） の調製
H-Lys-Ser-Gly-Tyr-Ser-Ser(HzP03)-Pro-Gly-Ser-Pro-Gly-Thr-NH2 (配列番号 2) で表されるペプチドを次に述べる方法により製造した。 なお、 以下の説明で 用いる記号は各々次のものを示す。 MBHA樹脂： P-メチルベンツヒ ドリルァミ ン樹 脂； Boc： t-ブチルォキシカルボニル基： Bzl：ベンジル基； cHex： シクロへキシ ル基： Z(2- Br)： 2-プロモベンジルォキシカルボニル基； Z(2-C1)： 2-クロルベン ジルォキシカルボニル基。
(ィ） H-Lys[Z(2-Cl)]-Ser(Bzl)-Gly-Tyr[Z(2-Br)]-Ser(Bzl)-Ser[P0(0cHex)2 -Pro- Gly- Ser(Bzl)-Pro- Gly-Thr(Bzl)- MBHA樹脂の製造
MBHA樹脂 1 3 l mg (アミ ン含量 0. 76mmo 1 / g 樹脂） をバイオサーチ 社製 9500型自動べプチド合成機にセッ トし、 これに Boc-Thr(Bzl)-0H, Boc-G ly-OH, Boc-Pro-OH, Boc- Ser(Bzl)- OH, Boc-Gly-OH, Boc- Pro- OH, Boc-Ser[P0(0 cHex)2]-0H, Boc-Ser(Bzl)-0H( Tyr[Z(2-Br)]-0H, Boc-Gly-OH, Boc- Ser(Bzl) 0 H, Boc-Lys[Z(2-Cl)]- OHを供給し、 ジイソプロピルカルポジイミ ドを縮合剤とし て順次縮合させて上記の側鎖保護べプチド -MBHA樹脂 307 mgを得た。
(口） トリフルォロメタンスルホン酸処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護ペプチド- MBHA樹脂中の 1 5 Omgを採取し、 これに 1 M濃度のメタンスルホン酸とチオア二ソールを含むトリフルォロ酢酸 1 0m l と m-クレゾール 0. 05m lを加え、 氷冷下 4時間反応させた。 反応終了後、 氷 冷したジェチルエーテル 200 m lを加えてぺプチドを沈殿させた。 全内容物を グラスフィルターで濾取し、 冷ジェチルェ一テルで洗浄した後 2 M酢酸 200 m
1で抽出処理して H-Lys- Ser-Gly- Tyr- Ser- Ser(H2P0s)-Pro_Gly- Ser- Pro-Gly- Thr -NH2 で表される粗ペプチド 53 m gを得た。
(ハ） ぺプチドの精製
これを蒸留水 6m 1に溶解し ODS (ォクタデシルシラン） をシリカに結合し た逆相系のカラム （内径 2 c m、 長さ 25 c m) を用いた H P L Cにより精製し た。 溶出は 0. 1 %トリフルォロ酢酸中、 5から 35 %のァセトニトリルの直線 濃度勾配により行った。 精製物の収量は 29 mgであった。 本物質の構造は F A B質量分析により確認された。 測定値 [M+H] +； 1 204、 計算値 （C47H7 6N14021P, + H) ; 1 204。 製造例 6 配列表の配列番号 6に記載のァミノ酸配列を有する部分べプチド（以 下、 本ペプチドを 「PT231」 、 本ペプチドに対する抗体を 「anti- PT231J と称する こともある） の調製
H-Cys-Val-Ala-Val-Val-Arg-Thr(H2P03)-Pro-Pro-Lys-Ser-Pro-Ser-Ser-0H (配 列番号 6) で表されるペプチドを次に述べる方法により製造した。 なお、 以下の 説明で用いる記号は各々次のものを示す。 Bzl樹脂：ベンジルアルコール樹脂； B oc： t-ブチルォキシカルボニル基： Bzl：ベンジル基； MBzl： 4-メ トキシベンジル 基； Mts： メチレンスルホニル基； cHex： シクロへキシル基； Z(2- ）： 2-クロル ベンジルォキシカルボニル基。
(ィ） H-Cys(MBzl)-Val-Ala-Val-Val-Arg( ts)-Thr[PO(OcHex)2]-Pro-Pro-Lys [Z(2- Cl)]-Ser(Bzl)- Pro- Ser(Bzl)- Ser(Bzl)- Bzl樹脂の製造
Boc-Ser(Bzl)-Bzl樹脂 7 】 mg (ァミ ン含量 0. 70mmo l /g 樹脂） をバ ィォサーチ社製 9500型自動べプチド合成機にセッ トし、 これに Boc- Ser(Bzl) - OH, Boc-Pro-OH, Boc-Ser(Bzl)-OH, Boc-Lys[Z(2- C1)]-0H, Boc-Pro-OH, Boc-P ro-OH, Boc-Thr[P0(0cHex)2]-0H, Boc-Arg(Mts)-OH, Boc-Val-OH, Boc-Val-OH, Boc-Ala-OH, Boc-Val-OH. Boc- Cys(MBzl)- OHを供給し、 ジイソプロピルカルポジ ィミ ドを縮合剤として順次縮合させて上記の側鎖保護ペプチド- Bzl樹脂 62mg を得た。
(口） トリフルォロメタンスルホン酸処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護べプチド -Bzl樹脂 62 mgにトリフルォロメタンス ルホン酸 0. 9 m 1 とチオア二ソール 1. 2 m 1 とトリフルォロ酢酸 6. 6m l と m-クレゾール 0. 9 m 1 とエタンジチオール 0. 4 m 1を加え、 氷冷下 5分、 続いて室温で 3時間反応させた。 反応終了後、 氷冷したジェチルエーテル 200 m 1を加えてペプチドを沈殿させた。 全内容物をグラスフィルターで濾取し、 冷 ジェチルエーテルで洗浄した後 2 M酢酸 1 70m〗で抽出処理して H- Cys-Val-Al a-Val-Val-Arg-Thr(H2P03)-Pro-Pro-Lys-Ser-Pro-Ser-Ser-0H で表される粗ぺプ チド 2 1 mgを得た。
(ハ） ぺプチドの精製
これを 30 %酢酸 1 0m lに溶解してセフアデックス G— 25のカラム （内径 5 cm、 長さ 1 07 c m) にかけ、 同じ溶媒を用いて溶出して目的物を含む画分 を集めた。 この精製物の収量は 1 2 mgであった。
これを 30 %酢酸 5 m 1に溶解し OD S (ォクタデシルシラン） をシリカに結 合した逆相系のカラム （内径 2 c m、 長さ 25 c m) を用いた H P L Cにより精 製した。 溶出は 0. 1 %トリフルォロ酢酸中、 1 3 %のァセトニトリルにより行 つた。 精製物の収量は 7m gであった。 本物質の構造は F A B質量分析により確 認された。 測定値 [M + H] + ; 1509、 計算値 （C61H1。7N18022P1 S 1 + H) ; 1 508。 製造例 7 配列表の配列番号 1 1に記載のァミノ酸配列を有する部分べプチド (以下、 本ペプチドを 「PS396」 、 本ペプチドに対する抗体を 「anti-PS3 l と称 ^こと^ある） の調製 H_Cys- Glu-Ile-Va卜 Tyr-Lys- Ser(H2P03)- Pro- Val-Va卜 Ser- Gly_NH2 (配列番号 1 1 ) で表されるペプチドを次に述べる方法により製造した。 なお、 以下の説明 で用いる記号は各々次のものを示す。 MBHA樹脂： P-メチルベンツヒドリルアミ ン 樹脂； Boc： t-プチルォキシカルボニル基； Bzl：ベンジル基； MBzl： 4-メ トキシ ベンジル基； cHex： シクロへキシル基； Z(2- Br)： 2-ブロモベンジルォキシカルボ ニル基； Z(2- C1)： 2 クロルべンジルォキシカルボニル基。
(ィ） H-Cys(MBzl)-Glu(OBzl)-lle-Val-Tyr[Z(2-Br)] Lys[Z(2-Cl)]-Ser[PO(0 cHex)2]- Pro- Val-Vaレ Ser(Bzl)-Gly- MBHA樹脂の製造
MBHA樹脂 1 3 l mg (アミ ン含量 0. 76mmo 1 / g 樹脂） をバイオサーチ 社製 9500型自動べプチド合成機にセッ トし、 これに Boc- Gly- 0H， Boc-Ser(Bz D-Oli, Boc- Va卜 OH, Boc-Val-OH, Boc-Pro-OH, Ser[P0(0cHex)2]-0H, Boc- Lys[2 (2- CI)] - OH, Tyr[Z(2-Br)]-0H, Boc-Val-OH, Boc - lle-OH, Boc-Glu(0Bzl)-0H, B oc-Cys(MBzl)- OHを供給し、 ジイソプロピルカルポジイミ ドを縮合剤として順次縮 合させて上記の側鎖保護べプチド - HA樹脂 376 mgを得た。
(口） トリフルォロメ夕ンスルホン酸処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護ペプチド- MBHA樹脂中の 1 88 mgを採取し、 これに 1 M濃度のメタンスルホン酸とチオア二ソ一ルを含むトリフルォロ酢酸 1 0m 1 と m-クレゾール 0. 05m lを加え、 氷冷下 4時間反応させた。 反応終了後、 氷 冷したジェチルエーテル 200 m lを加えてぺプチドを沈殿させた。 全内容物を グラスフィルタ一で濾取し、 冷ジェチルエーテルで洗浄した後 2 M酢酸 200 m 1で抽出処理して H- Cys- Glu- Ile-Val- Tyr- Lys-Ser(H2P03)-Pr()- Va卜 Val-Ser- Gly -NH2で表される粗べプチド 87 mgを得た。
(ハ） ぺプチドの精製
これを 30 %酢酸 9 m 1に溶解し OD S (ォクタデシルシラン） をシリカに結 合した逆相系のカラム （内径 2 cm、 長さ 25 cm) を用いた H P L Cにより精 製した。 溶出は 0. 1 %トリフルォロ酢酸中、 1 6 %のァセトニトリルにより行 つた。 精製物の収量は 4 5mgであった。 本物質の構造は F A B質量分析により 確認された。 測定値 [M + H] +； 1 3 6 0、 計算値 （C 57H95N 02。P 1 S 1 + H) ; 1 3 6 0。 製造例 8〜： 10 配列表の配列番号 4、 1 2及び 1 4に記載のアミノ酸配列を有する部分べプチ ドについても上記製造例 5、 6および 7と同様にして得た（以下、 これらのぺプチ ドをそれぞれ 「PT205」 、 「PS404」 、 「PS422」 、 これらのペプチドに対する抗体 をそれぞれ 「anti- PT205J 、 「anti-PS404」 、 「anti- PS422」 と称することもあ る） 。 製造例 1 1 配列表の配列番号 7に記載のァミノ酸配列を有する部分べプチド (以下、 本ペプチドを 「PS235」 、 本ペプチドに対する抗体を 「anti-PS235」 と称 することもある） の調製
H-Cys-Arg-Thr-Pro-Pro-Lys-Ser(H2P03)-Pro-Ser-Ser-Ala-Lys-0H (配列番号 7 ) で表されるペプチドを次に述べる方法により製造した。 なお、 以下の説明で用い る記号は各々次のものを示す。 Alko樹脂： P-アルコキシベンジルアルコール樹脂 ； Boc： t-ブチルォキシカルボニル基； tBu： t-ブチル基； Bz】 ：ベンジル基； Fmo c： 9-フルォレニルメ トキシカルボニル基； Trt： トリチル基： Pmc：ペンタメチル クロマン- 6-スルホニル基。
(ィ） H-Cys(Trt)-Arg(Pmc)-Thr(tBu)-Pro-Pro-Lys(Boc)-Ser[PO(OH)(OBzl)]- Pro-Ser(tBu)-Ser(tBu)- Ala-Lys(Boc)- Alko樹脂の製造
Fmoc- Lys(Boc)-Alko樹脂 385 mg (アミノ酸含量 0. 65mmo l /g 樹脂） をアプライ ドバイオシステムズ社製 4 3 1 A型自動べプチド合成機にセッ トし、 これに Fmoc-Ala-0H， Fmoc-Ser(tBu)-0H, Fmoc-Ser(tBu)-0H, Fmoc-Pro-OH, Fmoc -Ser[P0(0H)(0Bzl)]-0H. Fmoc-Lys(Boc)-OH, Fmoc-Pro-OH, Fmoc-Pro-OH, Fmoc- Thr(tBu)-0H, Fmoc- Arg(Pmc)_0Hを供給し、 HBTU [2- (1H- benzotriazole小 yl)- 1， 1, 3, 3, -tetramethyluronium hexaf luorophosphate]を縮合剤として順次縮合させ て側鎖保護ペプチド- Alko樹脂中間体 71 6mgを得た。 この中間体 358 mgに Fmoc- Cys(Trt)-0Hを縮合し上記の側鎖保護べプチド- Alko樹脂 395 m gを得た。
(口） トリフルォロ酢酸処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護ペプチド- Alko樹脂中の 1 96mgを採取し、 これに トリフルォロ酢酸 8. 25mし 精製水 0. 5 m 1、 チオア二ソール 0. 5mし フエノール 0. 75m 1、 エタンジチオール 0. 25 m 1よりなる混合液を加え、 室温で 1. 5時間反応させた。 反応終了後、 氷冷したジェチルエーテル 200 m 1を加えてペプチドを沈殿させた。 全内容物をグラスフィルターで濾取し、 冷ジ ェチルエーテルで洗浄した後 2 M酢酸 80m lで抽出処理して H- Cys-Arg- Thr-Pr o-Pro-Lys-Ser(H2P03)- Pro- Ser-Ser- Ala-Lys-0Hで表される粗ぺプチド 82mgを 得た。
(ハ） ぺプチドの精製
これを 0. 1 %トリフルォロ酢酸 7 m Iに溶解し OD S (ォクタデシルシラン） をシリカに結合した逆相系のカラム （内径 2 c m、 長さ 25 c m) を用いた H P L Cにより精製した。 溶出は 0. 1 %トリフルォロ酌酸中、 7%のァセトニトリ ルにより行った。 精製物の収量は 62mgであった。 本物質の構造は F A B質量 分析により確認された。 測定値 [M+H] + ； 1 339、 計算値 （C52H92N170 2oP 1 S i + H) ; 1 339。 製造例 1 2〜： 1 5 配列表の配列番号 5、 8、 9及び 1 0に記載のアミノ酸配列を有する部分ぺプ チドについても上記製造例 1 1と同様にして得た（以下、 これらのペプチドをそれ ぞれ 「PS199.202」 、 「ratPS235」 、 「PT231， PS235J 、 「PS262」 、 これらのぺプ チドに対する抗体をそれぞれ 「anti-PS199, 202」 、 「anti-ratPS235」 、 「anti- PT231,PS235」 、 「anti- PS262」 と称することもある） 。 製造例 1 6 配列表の配列番号 1 7に記載のァミノ酸配列を有する部分べプチ ド（以下、 本ペプチドを 「Tau- (：」 、 本ペプチドに対する抗体を 「anti- Tau- (：」 と 称することもある） の調製
H-Ser-Pro- Gin- Leu-Ala- Thr- Leu- Ala- Asp- Glu-Val-Ser- Ala-Ser-Leu-Ala-Lys- OH (配列番号 1 7 ) で表されるアミノ酸配列をもつペプチドを次に述べる方法に より製造した。 なお、 以下の説明で用いる記号は各々次のものを示す。 Alko樹脂
： p-アルコキシベンジルアルコール樹脂； Boc： t-ブチルォキシカルボニル基； t Bu： t-ブチル基； Bzl：ベンジル基； Fmoc： 9-フルォレニルメ トキシカルボニル基
； Trt： トリチル基。
(ィ） H-Ser( tBu)-Pro-Gln(Trt)-Leu-Ala-Thr(tBu)-Leu-Ala-Asp(OtBu)-Glu(0 tBu)- Val- Ser(tBu)-Ala- Ser- Leu- Ala- Lys(Boc)-Alko樹脂の製造
Alko樹脂 2 8 4 m g (アミ ン含量 0 . 8 8 m m o 1 / g樹脂） を ABI社製 A 4 3
1型自動ペプチド合成機にセッ 卜し、 これに Fmoc-Lys(Boc)- 0Hをジメチルァミノ ピリジンとジイソプロピルカルポジイミ ドを縮合剤として結合し、 これに Fmoc - A la-OH, Fmoc -Leu -OH, Fmoc-Ser(tBu) -0H, Fmoc-Ala-OH, Fmoc-Ser(tBu)-0H, Fmo c-Val-OH, Fmoc-Glu(0tBu)-0H, Fmoc-Asp(0tBu)-0H, Fmoc-Ala-OH, Fmoc-Leu-OH,
Fmoc-Thr(tBu) -0H, Fmoc-Ala-OH, Fmoc-Leu-OH, Fmoc-Gln(Trt) -0H, Fmoc-Pro- 0H, Fmoc-Ser(tBu)-0Hを供給し、 HBTU [2-(lH-benzotriazole- l -yl )- l, 1, 3, 3, - tetramethyluronium hexafl直 ophosphate]を縮合剤として順次縮合させて上記の 側鎖保護べプチド- Alko樹脂 9 0 5 m gを得た。
(口） トリフルォロ酢酸処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護ペプチド- Alko樹脂中の 5 4 3 m gを採取し、 これに トリフルォロ酢酸 9 . 5 m 1 とエタンジチオール 0 . 2 5 m l と蒸留水 0 . 5 m 1を加え、 氷冷下 5分、 続いて室温で 1 . 5時間反応させた。 反応終了後、 氷冷 したジェチルェ一テル 2 0 0 m lを加えてぺプチドを沈殿させた。 全内容物をグ ラスフィルタ一で濾取し、 冷ジェチルエーテルで洗浄した後 2 M酢酸 1 0 0 m】 で抽出して H-Ser- Pro- Gin- Leu-Ala- Thr- Leu-Ala- Asp-Glu-Val -Ser-Ala-Ser-Leu- Ala- Lys- OHで表される粗ぺプチド 25 Omgを得た。 (ハ） ぺプチドの精製
これを 30 %酢酸 20 m 1に溶解してセフアデックス G— 25のカラム （内径 5 c m、 長さ 1 07 c m) にかけ、 同じ溶媒を用いて溶出して目的物を含む画分 を集めた。 この精製物の収量は 1 22m gであった。 本物質の構造は FAB質量 分析により確認された。 測定値 [M+H] + : 1 702、 計算値 （C73H125N19 027 S 2 + H) ； 1 70 1。 製造例 1 7 配列表の配列番号 1 8に記載のァミノ酸配列を有する部分ぺプチ ド（以下、 本ぺプチドを 「Tau-N」 、 本べプチドに対する抗体を 「anti-Tau- N」 と 称することもある） の調製
H-Ala-Glu-Pro-Arg-Gln-Glu-Glu-Phe-Glu-Val-Met-Glu-Cys-NH2 (配列番号 1 8 ) で表されるアミノ酸配列をもつぺプチドを次に述べる方法により製造した。 なお、 以下の説明で用いる記号は各々次のものを示す。 Fmoc-NH-SAL樹脂： 4-(2'，4' -di methoxyphenyl -Fmoc-aminoethy U -phenoxyfela； Boc： t—ブナノレォキシカノレホニノレ 基； tBu： t-ブチル基： Bzl：ベンジル基； Fmoc： 9-フルォレニルメ トキシカルボ ニル基； Trt： トリチル基 ； Pmc： ペンタメチルクロマン- 6 スルホニル基。
(ィ） H-Ala-Glu(0tBu)-Pro-Arg(Pmc)-Gln(Trt)-Glu(0tBu)-Phe-Glu(0tBu)-Va 1- Met- Glu(OtBu)-Cys(Trt)- NH- SAL樹脂の製造
Fmoc- NH-SAL樹脂 532 m g (アミ ン含量 0. 4 7mmo 1 / g 樹脂） を AB1社 製 A 43 1型自動ペプチド合成機にセッ トし、 これに Fmoc-Cys(Trt)- OH, Fmoc- G lu(0tBu)-0H, Fmoc- et-OH. Fmoc-Val-OH. Fmoc-Glu(0tBu)-0H. Fmoc-Phe-OH, F moc-Glu(0tBu)-0H, Fmoc-Gln(Trt)-01l. Fmoc-Arg(Pmc)-0H, Fmoc- Pro-OH, Fmoc- Clu(0tBu)-0H, Fmoc-Ala-OHを供給し、 HBTU [2-(lH-benzotriazole-l-yl)-l, 1, 3, 3, -tetramethyluronium hexafluorophosphate]を縮合剤として順次縮合させて上 記の側鎖保護べプチド- NH- SAL樹脂 1 1 22 m gを得た。 (口） トリフルォロ酢酸処理
上記 （ィ） で得た側鎖保護ペプチド- NH- SAL樹脂中の 673 mgを採取し、 これ にフヱノール 0. 75 m 1 とチオア二ソール 0. 5 m 1と トリフルォロ酢酸 8. 25m】 とエタンジチオール 0. 25m l と蒸留水 0. 5m lを加え、 氷冷下 5 分、 続いて室温で 1. 5時間反応させた。 反応終了後、 氷冷したジェチルエーテ ル 200 m】 を加えてぺプチドを沈殿させた。 全内容物をグラスフィルターで濾 取し、 冷ジェチルエーテルで洗浄した後 2 M酢酸 50m 1 と蒸留水 250 m 1で 抽出処理して H- Ala-Glu- Pro-Arg- Gin- Glu-Glu-Phe- Glu-Val-Met-Glu- Cys- NH2 で 表される粗べプチド 1 82mgを得た。
(ハ） ぺプチドの精製
これを 30 %酢酸 20 m 1に溶解してセフアデックス G— 25のカラム （内径 5 cm、 長さ 1 07 cm) にかけ、 同じ溶媒を用いて溶出して目的物を含む画分 を集めた。 この精製物の収量は 1 36 mgであった。
これを 20%ァセトニトリル 20m 1に溶解し ODS (ォクタデシルシラン） をシリカに結合した逆相系のカラム （内径 2 c m、 長さ 25 c m) を用いた H P L Cにより精製した。 溶出は 0. 1 %トリフルォロ酢酸中、 22%のァセトニ卜 リルにより行った。 精製物の収量は 96 m gであった。 本物質の構造は FAB質 量分析により確認された。 測定値 [M + H] +； 1 467、 計算値 （C^H N, 7021 S 2 + H) ； 1467。 実施例 1 抗体の調製 上記製造例 1〜 17で得られた部分べプチドを、 等重量のキーホール · リンぺ ッ トのへモシァニンに結合させて免疫原を調製した。 免疫原 0. 2mgを 0. 3 m 1の生理食塩水に溶解し、 等容量のフロイントアジュバントと乳濁させて、 3 週間毎にゥサギに免疫した。 得られた抗血清を I匪 unopure gentle Ag/Ab buffer system(Pierce社製） を使用し、 それぞれの抗原ペプチドを結合させた Affigel 15 (Bio- Rad社製） カラムから溶出させることにより精製して、 上記で示したリン 酸化部位を特異的に認識する抗体が得られた。 抗体の特異性は、 ドッ トプロッ トで確認した。
即ち、 i匪 obilon P-membrane (Millipore社製） に 70 % D M S 0溶液の各種 ぺプチドを 1 8 pmo 1ずつ点 （ドッ ト） になるように並べて吸着させ乾燥させ た。 この membraneを 5%スキムミルク入りの TB S ( 20 mM Tris-HCl (p H 7. 5) , 1 5 0 mM N a C 1 ) に 1時間浸して、 以後の操作で加える抗体が非特 異的に membraneに結合することを防いだ。 その後 T B Sで 5分間 3回洗い、 目的 の抗体 （一次抗体） を加えた TB Sに浸しパラフィルムに挟み湿箱中で 4 °C 1 4 時間反応させ、 memmbrane上の抗原ペプチドに一次抗体を結合させた。 0. 05%
Twe e n 20入りの TB S (TB S T) で membraneを 5分間 3回洗った。 以 下、 発色までの操作は ProtoBlot Western Blot AP System (Promega社製） を用い た。
アルカリホスファターゼの共有結合した抗ゥサギ I gG抗体 （二次抗体） を T B S Tで 50 00倍希釈し、 その希釈液に membraneを 4 °Cで 2時間浸すことで me nibrane上の抗原—一次抗体結合物に二次抗体を介してアル力リホスファタ一ゼを 結合させた。 T B S Tで membraneを 5分間 3回、 TB Sで 5分間 2回洗い、 その 後 membrane上のアルカリホスファターゼの存在を、 発色剤 5-bromo- 4- chloro-3- indolyl phosphate ( B C I P ) と nitro blue tetrazolium (N B T) をそれぞれ 0. 1 6 5mgZm l と 0. 3 3 m g Zm 1の濃度で含む反応液 （ 1 00 mM Tris-HCl ( p H 9. 5 ) , 1 0 0 mM N a C l , 5 mM M g C 1 2) に membr aneを浸し紫色に発色させることで検出した。 membraneを水に浸すことで反応を停 止させた。
この実施例で用いた一次抗体はすべてゥサギの抗血清のままであるが、 抗血清 からべプチドカラムによってァフィ二ティ精製した I g Gでも同様な結果が得ら れることを確認した。 抗血清の希釈率は、 anti- PS199が 1 00 0倍、 anti-PS202 が 2 50倍、 anti-PT205が 5 00倍、 anti- PT231が 25 0倍、 anti-PS235が 2 5 倍、 anti-rat PS235(anti-rPS235)が 2 5倍、 anti- PS262が 5 00倍、 anti- PS39 6が 1 000倍、 anti-PS404が 500倍、 anti-PS413が 500倍、 anti-PS422が 5 00倍である。 なお、 コントロールとして配列番号 1 9のアミノ酸配列で表され るぺプチド （図 1中、 K1で示す、 K列番号 1の 2 26番目から 240番目のァミ ノ酸配列で表されるペプチド） 、 配列番号 20のアミノ酸配列で表されるぺプチ ド （図 1中、 K2で示す、 配列番号 1の 1 9 1番目から 224番目のアミノ酸配列 で表されるペプチド） 、 配列番号 2 1のアミノ酸配列で表されるペプチド （図 1 中、 AK-K3で示す、 配列番号 1の 384番目から 4 38番目のァミノ酸配列で表さ れるぺプチド） および配列番号 22のァミノ酸配列で表されるぺプチド （図 1中、 S262で示す、 配列番号 1の 257番目から 267番目のアミノ酸配列で表される ぺプチドの N末端にシスティンを付加させたもの） の非リン酸化べプチドを使用 した。 これらのペプチドは、 上記製造例 1の （ィ） ~ (口） と同様にして製造し た。
図 1にドッ トブロッ 卜の結果を示す。 横軸にドッ トでメンブレンに吸着させた ペプチド、 縦軸に抗体を示す。 上記で得られた抗体がそれぞれのリン酸化部位に 対して特異的に結合していることがわかる。 実施例 2 抗体と試料との反応性の検討
( 1 ) ヒ ト脳抽出液の調製
正常ヒ ト脳 8例とアルツハイマー病患者脳 19例を用いてヒト脳抽出液の調製 を行った。 また、 以下の操作はすべて 4 °Cで行った。
死後のヒト大脳皮質の凍結標品から 1 gを取り出し、 T S i n h溶液 [50m M Tris - HC1 (p H 7. 6) 、 0. 1 5M N a C 0. 5 mM D I FP (ジ ィソプロピルフルオロフォスフェート） 、 1 g /m 1アンチパイン 、 0. 5 m M PMS F、 （フヱニルメタンスルフォニルフルオリ ド） l mg/m l T L C K (トリシルーリシン一クロロメチルケ トン） 、 1 g/m 1 ロイぺプチン、 0. 1〃 g/m 1ぺプス夕チン] 3m 1中で剃刀で細かく刻み、 超音波破砕し、 さらにホモジナイザーにより懸濁液にした。 80， 000 r pmで 1 5分の遠心 分離を行い、 上清を得た。 この上清中のヒ ト I gGを Protein G-Sepharose 4 Fa st Flow (Pharmacia社製） により除去して得た画分を T S画分とした。 沈殿を前 述の T S i n h 2 m〗 中で超音波破砕とホモジナイザーにより懸濁液にし 80， 000 r pm、 1 5分の遠心分離を行うことで洗浄し、 その後この沈殿を 1 %T r i t o n X— 1 00、 T S i n h 2 m 1 中で超音波破砕とホモジナイザー により懸濁液にした。 この懸濁液に対し、 80， 000 r pm、 1 5分の遠心分 離を行い、 上清 （TX画分） を得た。 沈殿を l %T r i t o n X— 1 00、 T S i n h 2 m 1 中で超音波破砕とホモジナイザーにより懸濁液にし、 80, 0 00 r pm、 1 5分の遠心分離を行うことで洗浄し、 その後 2%SD S、 T S i n h 2 m 1 中で超音波破砕とホモジナイザーにより懸濁液にした。 80， 00 0 r pm、 1 5分の遠心分離を行い上清 （S D S上清画分） を得た。 沈殿を 2 % S D S、 T S i n h 2 m 1 中で超音波破砕とホモジナイザーにより懸濁液にし、 80, 0 00 r pm、 1 5分の遠心分離を行うことで洗浄し、 その後この沈殿を 2%SD S、 T S i n h 2 m 1 中で超音波破砕とホモジナイザーにより懸濁液 ' (SD S沈殿画分） にした。
(2) リ ン酸化部位特異抗体による免疫ブロッ ト
上記で得られた各画分に Laemmliのサンプル処理液 （Nature, 227. 680-685(19 70))を加え、 95°Cで 5分間加熱し、 S D Sポリアクリルアミ ドゲル電気泳動し、 1匪 mobilon P-membrane (Millipore社製） に転写した。 5%スキムミルク、 TB Sで 2時間ブロッキングした後、 上記実施例 1で得られたリ ン酸化部位特異抗体 を一次抗体として 1 4時間反応させた。 Tw e e n 20、 T B Sで洗った後、 Pr omega社の ProtoBlot APにより二次抗体処理してメンプレン上の抗原抗体反応物を 発色させた。
一次抗体はすべてゥサギの 1 g Gで、 一次抗体の希釈率は実施例の図 2〜図 4 中の各抗体の名称の下に Xの次の数字で示した。 ほとんどの一次抗体は抗原ぺプ チドカラムによってァフィ二ティ精製してあるが、 PS262と PS422は抗血清のまま であり、 図中のこれらの抗体名称の下に Sを付して区別した。
Tau-Nおよび Tau-Cはそれぞれ製造例 1 6および製造例 1 7で得られたぺプチド で、 配列表の配列番号 1で表されるヒトタウ蛋白質中、 Tau-Nは 2番目から 1 2番 目のァミノ酸配列に対応し、 Tau-Cは 4 2 2番目から 4 38番目のァミノ酸配列に 対応し、 それぞれタウ蛋白質の存在を示すコントロールとして使用した。
なお、 ポジティブコントロールとして生後 8日目の幼若ラッ ト全脳抽出液を使 用した。 幼若タウ蛋白質は高度にリン酸化された PHF中のタウ蛋白質として知 られている （J. Biol. Chem. , 268. 25712-25717(1993))。 生後 8日目の幼若ラッ ト脳 0. 75 gを、 1 0 mM Tris-HCl ( p H 7. 4 ) 、 50 mM N a C 1、 50 mM N a F、 1 mM EDTA、 1 mM EGTA、 50 mM /3 -グリ セロリ ン酸、 1 0— 4M N a3V04、 1 mM PMS F、 l // g/m lアンチ パイン、 1〃 g /m 1 ロイぺプチン、 0. 1〃 g / m 1ぺプスタチン、 3mMベ ンズアミジンを含む培地 1. 5 m 1中でホモジナイズし、 25， O O O r pmで 20分遠心分離を行った後の上清をポジティブコントロールとして使用した。 結果を図 2、 図 3及び図 4に示す。 図 2は T S画分の免疫プロッ ト結果を示し、 図 3及び図 4は S D S沈殿画分の免疫ブロッ ト結果を示す。 図中、 AD /Nの欄 の Aはアルツハイマー病患者脳抽出液の結果を、 Nは正常脳抽出液の結果を示し、 Mのレーンは分子量マーカーを、 その隣の数字はマーカーの分子量を k Dの単位 で示す。 rat P8のレーンはポジティブコントロールの免疫ブロッ ト結果を示し、 矢印で示したバンドがリン酸化タウ蛋白質のバンドを示す。
いずれの抗体も正常脳抽出液では反応せず、 アルツハイマー病患者脳抽出液で は反応しており、 本発明の方法によりアルツハイマー病の検出が可能であること がわかる。 また、 TS画分は易溶性のタウ蛋白質を、 SD S沈殿画分は難溶性の タウ蛋白質を含むため、 本発明の方法によれば、 組織中のリン酸化タウ蛋白質の 存在だけでなく、 易溶性タウ蛋白質を含むと思われる脳脊髄液または血中のリン 酸化タウ蛋白質の存在も認識可能であり、 試料として組織だけでなく脳脊髄液ま たは血液も使用可能であることがわかる。 実施例 3 抗ヒ トリン酸化タウ蛋白抗体と試料とのラジオィムノアッセィ （R I A) による反応性の検討
( 1 ) 126 I標識抗原の調製
(ィ） B o l t o n— Hu n t e r法による標識
製造例 1〜5 (配列表の配列番号 3、 1 3、 15、 16および 2) に示したよ うにアミノ末端にリジンを付加したぺプチドについては、 次に述べる方法により 125 I標識体を製造した。
12S I— B o l t o n— H u n t e r試薬のベンゼン溶液 1 8. 5 MB q (5 0 0 β θ i ； D u P o n t社、 NEX— 1 20) を反応用試験管に取り、 ベン ゼンを窒素気流で揮散させた。 これにべプチド 20 f gを 50 1の 500 mM 塩化ナトリウム 1 6 OmMホウ酸緩衝液 （p H 8. 5) に溶解して加え、 冷却下 にときどきかき混ぜながら 2時間反応させた。 1 0%ヨウ化カリウム水溶液 10 〃 1、 0. 1 %トリフルォロ酢酸 70 0 β ] を加え、 OD S (ォクタデシルシラ ン） をシリカに結合した逆相系のカラム （内径 4 mm、 長さ 25 c m) を用いた HP LCにより精製した。 溶出は 0. 1 %トリフルォロ酢酸中、 ァセトニトリル を 1 % /分の濃度勾配で 60 %まで上昇させながら実施した。 溶出液の流速は 1 m 1ノ分であり、 溶出液を 0 · 5分毎に分画した。 放射能検出器でモニタ一した ピークに相当する付近の分画の一部をシンチレーションカウンターで測定して目 的とする分画を確認した。 この分画に 2%ゥシ血清アルブミン （B SA) 、 0. 05%アジ化ナトリウム、 0. 05 %Tw e e n 20を含むリン酸緩衝液 （D u
1 b e c c o' s P B S (—） 、 pH 7. 3) を加えて 1 00万〜 400万力 ゥン卜/分 （c pm) ずつバイアル瓶に小分けし、 凍結乾燥した。
(口） クロラミ ン— T法による標識
製造例 6〜 1 4 (記列表の配列番号 6、 1 1、 4、 1 2、 1 4、 7、 5、 8、 9) に示したようにァミノ末端にシスティンを付加したペプチドについては、 製 造例 1 1に準じた Fm 0 c法によってアミノ末端にシスティンの代りにチロシン を付加したペプチドを合成し、 次に述べる方法により 125〗標識体を製造した。 ペプチド 1 0 gを 50 1の 0. 2Mリン酸緩衝液 （p H 7. 3) に溶解し、 N a 125 I 1 8. 5MB q (500 0 ΐ ； D u P o n t社、 NE Z— 033 H) を加えてかき混ぜた。 c h r o l am i n T 3 u g ( 1 mg m 1 0. 2Mリン酸緩衝液：添加直前に溶解する） を加えてかき混ぜ、 室温で 5分間反応 させた。 ァスコルビン酸 1 7. 5 g (0. 7 mg/m 1 0. 2 Mリン酸緩衝 液：添加直前に溶解する） を加えてかき混ぜ、 室温で 1分間反応させた。 1 0% ヨウ化カリウム水溶液 1 0 1、 0. 1 %トリフルォロ酢酸 700 jt/ 1を加え、 wo 97/34145
- 23 -
(ィ） の場合と同様に逆相系 H P L Cにより精製、 分画し、 目的の分画をバイァ ル瓶に小分けし、 凍結乾燥した。
( 2 ) 競合法 R I A測定系
製造例 1 8で調製した抗体のうち 「a n t i - P S 262J の例を以下に示す。 ( 1 ) で得られた 125 I— Y P S 262を R I A緩衝液 （0. 1 %B S A、 0. 05%アジ化ナトリウム、 0. 05%Tw e e n 20を含む D u 】 b e c c o' s PB S (-) ) に溶解してァッセィチューブに 100 1 (約 1万 c p m) 加えた。 更に標準品としてァミノ酸定量したぺプチド Y P S 262を 0~ 1 00 00 f mo 1 /m 1の範囲で含有する R I A緩衝液 100 1を加えた。 続いて、 R I A緩衝液 300 1を加えた後、 R I A緩衝液にて 1万倍に希釈した 「 a n t i一 P S 262」 1 00 1を加えてかき混ぜた。 4。Cで 1晚ィンキュベー卜 した後、 R I A b u f f e rで 1 28倍に希釈した正常兎血清 1 00〃 1 と 3 2倍に希釈した抗兎 1 gG山羊血清 100〃 1、 更に 8%ポリエチレングリコー ル （P EG 6000) 、 0. 2 %セルロース粉末 （ A V i c e 1 (登録商標） ） を含む D u l b e c c o' s P B S (—） 200〃 1を加えてかき混ぜ、 4 °C で 30分間インキュベートした。 4て、 3000 r pm、 20分間遠心分離した 後、 上清を吸引除去して沈渣の放射能をシンチレ一ションカウンタ一にて測定し o
横軸に標準物質濃度 f mo 1 /m 1、 縦軸に標準物質濃度 0 f mo 1 Zm 1に おけるカウン卜に対する各濃度におけるカウン卜の比率をとつてプロッ トして検 量線を得た。 この検量線を図 5に示す。 図 5より、 本発明の測定方法を用いれば、 30 f mo 1 /m 1まで精度よく測定可能であることがわかる。
更に、 製造例 1 1に準じた Fmo c法によってァミノ末端にシスティンを付加 せず、 セリンがリン酸化されていない配列表の配列番号 1 0の誘導体べプチド S 262を合成して抗体 a n t i P S 262の特異性を評価したところ、 S 26 2を 2000 f mo 1 /m 1の濃度まで添加してもカウン卜が低下せず、 本発明 における抗体は、 リン酸化セリンを含む P S 262を特異的に認識していること が判明した。 (3) 患者脳脊髄液中のリン酸化タウ蛋白の測定
(2) の手法および検量線を用いて、 アルツハイマー病患者 （AD) 8名の脳 脊髄液中のリン酸化タウ蛋白質濃度を測定した。 コン卜ロール （CTL) として 非痴呆患者 7名の脳脊髄液中のリン酸化タゥ蛋白質濃度を測定した。 結果を図 6 に示す。 図 6に示されるとおり、 CTLではいずれもリン酸化タウ蛋白質が検出 されなかったのに対し、 ADでは 45〜76 f m o 1 Z m 1のリン酸化タウ蛋白 質が検出された。 産業上の利用可能性 本発明によれば、 PHF中のリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位を含む部分べ プチドを免疫原として用いてリン酸化タゥ蛋白質を特異的に認識する抗体を提供 することができる。 また、 得られた抗体を用いて脳抽出液、 組織切片中のリン酸 化タウ蛋白質を確認することができる。 更に、 この抗体を用いる本発明のリン酸 化夕ゥ蛋白質の測定方法は、 体液中のリン酸化夕ゥ蛋白質を簡便に測定すること が可能であり、 アルツハイマー病の検出に有用である。
配列表
(1 )一般情報
(i) 出願人： 三菱化学株式会社
(ii) 発明の名称： 抗リン酸化タウ蛋白抗体及びそれを用いるァルツハイマ' 病の検出方法
(iii ) 配列数： 22
(vi) 現行出願データ
(A)出願番号
(B)出願日
(C)分類
(vi) 先の出願データ
(A)出願番号： JP 8/56090
(B)出願日： 13-MAR- 1996
(2) 配列番号 1の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 441 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： 夕ンパク質
(xi ) 配列： SEQ ID N0: 1 :
Met Ala Glu Pro Arg Gin Glu Phe Glu Val Met Glu Asp His Ala Gly
1 5 10 15
Gin Asp Thr Tyr Gly Leu Gly Asp Arg Lys Asp Gin Gly Gly Tyr Thr
20 25 30
Met His Gin Gl u Cly Asp Thr Asp Ala Gly Leu Lys Glu Ser Pro Leu
35 40 45 9z
Ατο AID。 UT3 SIH sAq n3q usy ni ^ΜΙュ Αχο an sA J9S sAq
09Z
ΪΒΛ usy sA na dsy OJJ OJJ I¾A OJJ BIV jqi uij) na Sjy J9S o z ss2
sAq Btv J3S J3S ojj J9S sA OJJ OJd J¾ S-^V ΐ^Λ ΐ^Λ ^τν sAq
51Ζ m sAq OJd nig gjy Jqi OJJ OJJ jqi OJJ ns J9S oュ d ュ Sjy J3S 3JV
90Z 00Z 561
J3S ^IO OJJ Jqi λΐθ ojj jas Ato OJJ JSS J9S J^I 3 -i^S 3ュ V dsy
061 S81 081
i -I3S sA OJd ojj nig A\ J3S s OJJ OJJ jqx s OJJ BJV OJJ
SAl Oil 591
o-id Jill sAq BIV OJJ 9ェ【 Say Jqi BTV usy eiy iqj) A\ sAq U13 Aio
091 951 091 m
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Λ]θ s BJV sA sAq dsy dsy J3S jq dsy sAq a^ sA J3S
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0Π 501 001
OJd J¾ dsy Αχο 9Π ΑΪ BIV "19 ηχο ^ΐγ α¾ J¾ nTo OJJ 9Π
56 06 58
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08 Si 0L 99 ΐ^Λ nsq ojd BTV J MI I^A dsy njo BJV J¾ OJJ J¾ J9S sAq BIV dsy
09 SS 05
■!3Sュ iU ηΐ0 J3S !） OJd nio nio S ^1 dsy am OJJ jqx u{9
- 92 -OSO0/L6d£/lDd Snf IL6 OAV Gly Lys Val Gin l ie l ie Asn Lys Lys Leu Asp Leu Ser Asn Val Gin
275 280 285
Ser Lys Cys Gly Ser Lys Asp Asn l ie Lys His Val Pro Gly Gly Gly
290 295 300
Ser Val Gin He Val Tyr Lys Pro Val Asp Leu Ser Lys Val Thr Ser 305 310 315 320
Lys Cys Gly Ser Leu Gly Asn l ie His His Lys Pro Gly Gly Gly Gin
325 330 335
Val Glu Val Lys Ser Glu Lys Leu Asp Phe Lys Asp Arg Val Gin Ser
340 345 350
Lys l ie Gly Ser Leu Asp Asn l ie Thr His Val Pro Gly Gly Gly Asn
355 360 365
Lys Lys l ie Glu Thr His Lys Leu Thr Phe Arg Glu Asn Ala Lys Ala
370 375 380
Lys Thr Asp His Gly Ala Glu He Val Tyr Lys Ser Pro Val Val Ser 385 390 395 400
Gly Asp Thr Ser Pro Arg His Leu Ser Asn Val Ser Ser Thr Gly Ser
405 410 415
He Asp Met Val Asp Ser Pro Gin Leu Ala Thr Leu Ala Asp Glu Val
420 425 430
Ser Ala Ser Leu Ala Lys Gin Gly Leu
435 440
(2) 配列番号 2の配列の情報：
(i) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状 (ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 6
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi) 配列： SEQ ID NO: 2 :
Lys Ser Gly Tyr Ser Xaa Pro Gly Ser Pro Gly Thr 1 5 10
(2) 配列番号 3の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 13 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 6
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 3 :
Lys Ser Ser Pro Gly Xaa Pro Gly Thr Pro Gly Ser Arg 1 5 10
(2) 配列番号 4の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状 (ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： Ί
(D) 他の情報： Xaa = phosphothreonine (xi ) 配列： SEQ ID N0:4 :
Cys Pro Gly Ser Pro Gly Xaa Pro Gly Ser Arg Ser 1 5 10
(2) 配列番号 5の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 13 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 6
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 5 :
Lys Ser Xaa Pro Gly Xaa Pro Gly Thr Pro Gly Ser Arg 1 5 10
(2) 配列番号 6の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配歹 ϋの長さ： 14 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状 (ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = phosphothreonine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 6 :
Cys Val Ala Val Val Arg Xaa Pro Pro Lys Ser Pro Ser Ser 1 5 10
(2) 配列番号 7の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine
(xi ) 配列： SEQ ID NO: 7 :
Cys Arg Thr Pro Pro Lys Xaa Pro Ser Ser Ala Lys
1 5 10
(2) 配列番号 8の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配歹 IJの長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状 (ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID N0:8 :
Cys Arg Thr Pro Pro Lys Xaa Pro Ser Ala Ser Lys 1 5 10
(2) 配列番号 9の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
CA) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 3
(D) 他の情報： Xaa= phosphothreonine (ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の†ff報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 9 :
Cys Arg Xaa Pro Pro Lys Xaa Pro Ser Ser Ala Lys 1 5 10
(2) 配列番号 10の配列の情報：
(i ) 配列の性質： (A) 配歹 ljの長さ = 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 10:
Cys Lys Ser Lys l ie Gly Xaa Thr Glu Asn Leu Lys 1 5 10
(2) 配列番号 11の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： aa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 11 :
Cys Glu l ie Val Tyr Lys Xaa Pro Val Val Ser Gly 1 5 10
(2) 配列番号 12の配列の情報：
(i) 配列の性質： (A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 12 :
Cys Val Ser Gly Asp Thr Xaa Pro Arg His Leu Ser 1 5 10
(2) 配列番号 13の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： Ί
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 13:
Lys Leu Ser Asn Val Ser Xaa Thr Gly Ser l ie Asp 1 5 10
(2) 配列番号 14の配列の情報：
(i ) 配列の性質： (A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 14 :
Cys He Asp Met Val Asp Xaa Pro Gin Leu Ala Thr 1 5 10
(2) 配列番号 15の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 6
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine (xi ) 配列： SEQ ID NO: 15 :
Lys Leu Ser Asn Val Xaa Ser Thr Gly Ser l ie Asp 1 5 10
(2) 配列番号 16の配列の情報：
(i) 配列の性質： (A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii) 配列の種類： ぺプチド
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 6
(D) 他の情報： Xaa = phosphoserine
(ix) 配列の特徴：
(A) 特徴を表す記号：
(B) 存在位置： 7
(D) 他の情報： Xaa = p osp oserine
(xi) 配列： SEQ ID NO: 16:
Lys Leu Ser Asn Val Xaa Xaa Thr Gly Ser lie Asp
1 5 10
(2) 配列番号 17の配列の情報：
(i) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： Π amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii) 配列の種類： ぺプチド
(xi) 配列： SEQ ID NO: 17:
Ser Pro Gin Leu Ala Thr Leu Ala Asp Glu Val Ser Ala Ser Leu Ala Lys 1 5 10 15
(2) 配列番号 18の配列の情報'.
(i) 配列の性質： (A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(xi) 配列： SEQ ID NO: 18:
Ala Glu Pro Arg Gin Glu Phe Glu Val Met Gl u Cys
1 5 10
(2) 配列番号 19の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ = 15 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(xi ) 配列： SEQ ID NO: 19 :
Val Ala Val Val Arg Thr Pro Pro Lys Ser Pro Ser Ser Ala Lys 1 5 10 15
(2) 配列番号 20の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 34 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii ) 配列の種類： ぺプチド
(xi ) 配列： SEQ ID NO:20 :
Ser Gly Asp Arg Ser Gly Tyr Ser Ser Pro Gly Ser Pro Gly Thr Pro 1 5 10 15 Gly Ser Arg Ser Arg Thr Pro Ser Leu Pro Thr Pro Pro Thr Arg Glu 20 25 30
Pro Lys
(2) 配列番号 21の配列の情報：
(i ) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 55 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii) 配列の種類： ぺプチド
(xi) 配列： SEQ ID NO: 21 :
Ala Lys Thr Asp His Gly Ala Glu l ie Val Tyr Lys Ser Pro Val Val
1 5 10 15
Ser Gly Asp Thr Ser Pro Arg His Leu Ser Asn Val Ser Ser Thr Gly
20 25 30
Ser l ie Asp Met Val Asp Ser Pro Gin Leu Ala Thr Leu Ala Asp Glu
35 40 45
Val Ser Ala Ser Leu Ala Lys
50 55
(2) 配列番号 22の配列の情報:
(i) 配列の性質：
(A) 配列の長さ： 12 amino acids
(B) 配列の型： アミノ酸
(C) 鎖の数： 一本鎖
(D) トポロジー： 直鎖状
(ii) 配列の種類： ぺプチド
(xi ) 配列： SEQ ID NO:22:
Cys Lys Ser Lys l ie Gly Ser Thr Glu Asn Leu Lys
1 5 10

Claims

請求の範囲
1 . ペアード 'ヘリカル ' フィラメント （Paired Hel ical Fi lament) 中のリン酸 化タウ蛋白質のリン酸化部位を含む部分べプチドを免疫原とする抗体。
2 . リン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位が、 配列表の配列番号 1で表されるアミ ノ酸配列中の 1 9 8番目のセリン、 1 9 9番目のセリン、 2 0 2番目のセリン、 2 0 5番目のスレオニン、 2 3 1番目のスレオニン、 2 3 5番目のセリン、 2 6 2番目のセリン、 3 9 6番目のセリン、 4 0 3番目のスレオニン、 4 0 4番目の セリン、 4 0 9番目のセリン、 4 1 2番目のセリン、 4 1 3番目のセリン及び 4 2 2番目のセリンから選ばれる 1以上のァミノ酸である請求項 1に記載の抗体。
3 . リン酸化タウ蛋白質のリン酸化部分が、 配列表の配列番号 1で表されるアミ ノ酸配列中の 1 9 9番目のセリン、 2 0 2番目のセリン、 2 0 5番目のスレオニ ン、 2 3 1番目のスレオニン、 2 3 5番目のセリン、 2 6 2番目のセリン、 3 9 6番目のセリン、 4 0 4番目のセリン、 4 1 2番目のセリン、 4 1 3番目のセリ ン及び 4 2 2番目のセリ ンから選ばれる 1以上のァミノ酸である請求項 1に記載 の抗体。
4 . リン酸化部位を含む部分べプチドがそのリン酸化部位のァミノ酸残基とその 前および/または後の複数個のァミノ酸残基を含むぺプチドである請求項 1から 3のいずれかに記載の抗体。
5 . リン酸化部位を含む部分ぺプチドが配列表の配列番号 2から 1 6のいずれか に記載のァミノ酸配列で表される請求項 1から 4のいずれかに記載の抗体。
6 . 少なくとも、 請求項 1〜 5のいずれかに記載の抗体よりなる、 アルッハイマ 一病の検出に用いるための試薬キッ 卜。
7 . 請求項 1〜 5のいずれかに記載の抗体と、 アルツハイマー病の疑いのある個 体から得られた試料との反応性を調べることを特徴とするアルツハイマー病の検 出方法。
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