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WO1996011212A1 - Nouveau ligand de tyrosine kinase de type recepteur - Google Patents

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WO1996011212A1
WO1996011212A1 PCT/JP1995/002069 JP9502069W WO9611212A1 WO 1996011212 A1 WO1996011212 A1 WO 1996011212A1 JP 9502069 W JP9502069 W JP 9502069W WO 9611212 A1 WO9611212 A1 WO 9611212A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
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amino acid
seq
sequence
acid sequence
ligand
Prior art date
Application number
PCT/JP1995/002069
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English (en)
French (fr)
Inventor
Seiji Sakano
Mitsuharu Ohno
Original Assignee
Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha filed Critical Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha
Priority to AU36198/95A priority Critical patent/AU3619895A/en
Publication of WO1996011212A1 publication Critical patent/WO1996011212A1/ja

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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans

Definitions

  • the present invention relates to a novel receptor pig tyrosine kinase type ligand. More specifically, the present invention binds to the extracellular portion of a specific receptor tyrosine kinase involved in the differentiation and proliferation of blood undifferentiated cells, and reduces the tyrosine kinase activity of the intracellular portion.
  • the present invention relates to a novel receptor tyrosine kinase ligand that is activated to cause phosphorylation of the tyrosine kinase.
  • the present invention also provides a complex comprising the novel receptor tyrosine kinase ligand described above, and at least one member selected from the group consisting of the ligand and a compound other than the ligand.
  • red blood cells carry oxygen in the body
  • platelets provide a haemostatic effect
  • white blood cells make up the immune system to protect against infection.
  • These diverse cells are derived from hematopoietic stem cells in the bone marrow.
  • hematopoietic stem cells have been clearly influenced by various hematopoietic factors and environmental factors in the body and differentiated into various blood cells, osteoclasts, mast cells, and the like.
  • EPO Erythropoietin
  • G-CSF granulocyte colony-stimulating factor
  • Mp 1 -L platelet growth factor
  • Tyrosine kinase an enzyme that specifically phosphorylates tyrosine, an amino acid present in proteins, transmits signals from the outside of the cell to the inside of the cell, and the gene in the cell nucleus. It is an important substance that controls transcription. Recent studies have revealed that tyrosine kinases and activators that activate tyrosine kinase enzyme activity are significantly involved in the development and differentiation of animals and insects. It is considered that tyrosine kinase and its activator are greatly involved in cell differentiation and proliferation.
  • the physiologically active site of tyrosine kinase is composed of about 250 amino acid residues.
  • amino acid sequences of the tyrosine kinase group there is a very conserved amino acid sequence (Hanks et a 1. Science 241: 42, 1988).
  • C-kit which is a type of receptor pig type 1 osteosynkinase and is expressed on the surface of blood undifferentiated cells, is a mast cell growth factor and one of the growth factors of blood undifferentiated cells. It has been found that stem cell factor (SCF) is activated by binding to its extracellular portion (Witte. Cell 63: 5, 1992). Cell differentiation is controlled through the tyrosine kinase kit.
  • SCF stem cell factor
  • ELK a receptor type 1 tyrosine kinase
  • LERK-2 a receptor type 1 tyrosine kinase
  • the present inventors have previously described a novel receptor tyrosine kinase gene different from the receptor tyrosine kinase c-kit described above, which is involved in the differentiation and proliferation of blood undifferentiated cells. Cloning was performed from the blast leukemia cell line UT-7, and the entire nucleotide sequence was determined. Then, a method for genetically producing the receptor type 1 tyrosine kinase was established [refer to International Patent Publication No. WO 95/15386 (this receptor type tyrosine kinase). Nucleotide sequence and amino acid sequence The sequence considered to be the same is also described in Bennett el a 1., J. ⁇ i ⁇ 1. Chem., 269, 14211-14218 ⁇ , 1994)]).
  • a ligand for a receptor tyrosine kinase specifically binds to an extracellular portion of a certain receptor tyrosine kinase, activates a tyrosine kinase enzyme activity in that intracellular portion, and It is defined as a substance having the property of inducing the phosphorylation of tyrosine kinases.
  • one kind of receptor-type tyrosine kinase has one kind of ligand in the living body.
  • organs expressing the receptor tyrosine kinase, specific cells expressing the same, and changes in expression due to some stimuli are detected by the antisense oligonucleotide of the receptor tyrosine kinase.
  • organs expressing the receptor tyrosine kinase, specific cells expressing the same, and changes in expression due to some stimuli are detected by the antisense oligonucleotide of the receptor tyrosine kinase.
  • In situ using a nucleotide Detecting by a staining method using hybridization, Northern blot, or an antibody, etc., in the body where the ligand acts Since the site and the cell can be specified, it is possible to estimate the physiological action of the ligand to some extent.
  • the extracellular domain of the receptor pig type 1 ostium syncinase polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 in the attached sequence listing previously disclosed by the present inventors was specific.
  • Cells that express a novel compound (ligand) that bind specifically and promote the proliferation of blood undifferentiated cells were successfully identified, and the ligand was purified and isolated from the expressed cells.
  • the amino acid sequence of the amino terminal (N-terminal) of the ligand is determined, a primer is prepared based on the amino acid sequence, and c A DNA probe was prepared and cDNA encoding the full-length amino acid sequence was isolated. Using this cDNA, a cell expressing the ligand was prepared, and the ligand was further isolated.
  • the resettiva type 1 tyrosine kinase ligand of the present invention significantly promoted the proliferation of blood undifferentiated cells.
  • the extracellular domain of the receptor type 1 oral synthase polypeptide containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 is added to other known receptor type tyrosine kinase ligands.
  • the receptor tyrosine kinase ligand of the present invention bound very tightly, causing phosphorylation of the tyrosine kinase, compared to almost no binding.
  • the ribose pig type 1 tyrosine kinase ligand of the present invention comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the receptor tyrosine kinase ligand of the present invention is one of the factors that significantly promote the differentiation and proliferation of blood undifferentiated cells.
  • the present inventors further provide a complex of one or more molecules of the ligand of the present invention with a heterologous protein or a complex comprising two or more molecules of the ligand of the present invention (dimer or more) Was found to have an activity equal to or greater than the physiological activity of one molecule of the ligand.
  • an antibody was produced that specifically recognizes and binds to the novel receptor pig type 1 tyrosine kinase ligand described above. The present invention has been completed based on the above findings.
  • one object of the present invention is to provide a novel ligand that specifically binds to a specific receptor tyrosine kinase involved in the differentiation of blood undifferentiated cells and activates the tyrosine kinase activity, And a DNA encoding the same.
  • Another object of the present invention is to provide one or more molecules of the above-mentioned receptor type tyrosine kinase ligand having a bioactivity equivalent to or higher than that of the above-mentioned receptor type 1 tyrosine kinase ligand and a heterologous protein. And a complex comprising two or more molecules of the ligand.
  • Still another object of the present invention is to specifically bind to the ligand of the present invention, which can be advantageously used for purification of the ligand. To provide an antibody.
  • Still another object of the present invention is to provide a sense DNA fragment and an antisense which can be advantageously used for confirming the gene expression of the ligand of the present invention and for regulating gene expression in cells.
  • An object of the present invention is to provide a DNA fragment and a derivative thereof, and a sense RNA fragment and an antisense RNA fragment and a derivative thereof.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is the sequence of the extracellular domain of the receptor pig type 1 tyrosine kinase to which the ligand of the present invention specifically binds, excluding the signal peptide.
  • the amino acid sequence of the receptor type 1 tyrosine kinase shown in SEQ ID NO: 3 corresponds to amino acid numbers 1 to 522 of the entire amino acid sequence;
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 corresponds to the extracellular domain and membrane permeation of the ribosomal type 1 lipoprotein kinase to which the ligand of the present invention specifically binds, excluding signal peptide.
  • SEQ ID NO: 3 is the entire amino acid sequence of the receptor tyrosine kinase to which the ligand of the present invention specifically binds, and the entire cDNA sequence of the receptor tyrosine kinase. ;
  • SEQ ID NO: 4 is the sequence of the 8 amino acid residues at the N-terminal side of the ligand of the present invention, and the amino acid sequence of the entire amino acid sequence of the ligand of the present invention shown in SEQ ID NO: 7 is SEQ ID NO: 7.
  • SEQ ID NO: 5 corresponds to the amino acid Nos. 1 to 8;
  • SEQ ID NO: 5 is the sequence of the extracellular domain of the ligand of the present invention excluding the signal peptide, and is represented by SEQ ID NO: 7.
  • SEQ ID NO: 6 is the sequence of all the domains of the extracellular domain, transmembrane domain, and intracellular domain of the ligand of the present invention except for the signal peptide.
  • 7 corresponds to amino acid numbers 1 to 308 of the entire amino acid sequence of the ligand of the present invention shown in FIG. 7;
  • SEQ ID NO: 7 is the entire amino acid sequence and the entire cDNA sequence of the ligand of the present invention.
  • SEQ ID NO: 8 is a nucleotide sequence of sense primer used in Reference Example 2;
  • SEQ ID NO: 9 is the base sequence of antisense primer used in Reference Example 2;
  • SEQ ID NO: 10 is the nucleotide sequence of primer 11 used in Reference Example 8
  • SEQ ID NO: 11 is the nucleotide sequence of primer 2 used in Reference Example 8;
  • SEQ ID NO: 12 is the nucleotide sequence of primer 3 used in Reference Example 8;
  • SEQ ID NO: 13 is the nucleotide sequence used in Reference Example 8 and the amino acid sequence of the oligopeptide FLAG which it encodes;
  • SEQ ID NO: 14 is the primer sequence used in Reference Example 8. A sequence of 14 bases;
  • SEQ ID NO: 15 is the nucleotide sequence of primer 15 used in Reference Example 8;
  • SEQ ID NO: 16 is the base sequence of primer 6 used in Reference Example 8;
  • SEQ ID NO: 17 is the nucleotide sequence of primer 7 used in Reference Example 8;
  • SEQ ID NO: 18 is the nucleotide sequence of primer 8 used in Reference Example 8;
  • SEQ ID NO: 19 is the N-terminal sequence of the ligand of the present invention determined by the peptide sequencer in Example 9, and comprises the entirety of the ligand of the present invention shown in SEQ ID NO: 7.
  • SEQ ID NO: 20 is the nucleotide sequence of primer 19 used in Example 10;
  • SEQ ID NO: 21 is a fragment of the primer 10 used in Example 10 In base sequence
  • SEQ ID NO: 22 is the nucleotide sequence of the cDNA probe prepared in Example 10 and the amino acid sequence encoded by it.
  • SEQ ID NO: 23 is the LERK-2 gene of Example 19 in Example 19. A sense primer used for crossing; and
  • SEQ ID NO: 24 is an antisense primer used in Example 19 to close the LERK-2 gene.
  • each amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 1 to 4 and 7 are the N-terminal and C-terminal, respectively, and the base sequence represented by SEQ ID NOs: 4 to 7 Are the 5 'and 3' ends, respectively.
  • FIG. 1 is a graph showing the results of measuring the binding activity of the ligand in the cell supernatant of C-11 cells (unstimulated) to ostium synkinase in Example 2;
  • FIG. 2 is a graph showing the results of measurement of the fluorescence peak of the cells expressing the ligand of the present invention by the flow site meter in Example 3;
  • FIG. 3 is a photograph of a Western blot of cells expressing the ligand of the present invention by phosphorylation in Example 4;
  • FIG. 4 is a photograph showing the result of electrophoresis of the primary purified ligand of the present invention in Example 5;
  • FIG. 5 is a graph showing a chromatographic pattern obtained by gel filtration in Example 6.
  • FIG. 6 is a graph showing the measurement results of the ligand binding activity of each fraction of the separated solution by gel filtration in Example 6;
  • FIG. 7 is a photograph showing the result of electrophoresis of the ligand of the present invention purified by gel filtration in Example 6;
  • FIG. 8 is a photograph showing the result of electrophoresis of the finally purified ligand of the present invention in Example 7;
  • FIG. 9 is a graph showing the result of comparing the ligand binding activity of the ligand of the present invention and LERK-2 in Example 19;
  • FIG. 10 shows a photograph of a Western blot comparing the ligand of the present invention with LERK-2 ⁇ for phosphorylation activity.
  • an isolated amino acid sequence having a receptor tyrosine kinase activity and containing an amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 1 and 2 in the sequence listing is provided.
  • Has the ability to bind to a polypeptide and a homologous mutant having a receptor tyrosine kinase activity of the polypeptide is analyzed by polyacrylamide gel electrophoresis.
  • an isolated polypeptide comprising at least a portion of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing is provided.
  • Compounds are provided.
  • a compound containing at least a part of a polypeptide containing an amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in a sequence listing a compound containing at least a part of a polypeptide containing an amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in a sequence listing
  • At least one kind of the compound containing at least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing and the amino acid of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing At least one member selected from the group consisting of compounds other than compounds containing at least a part of the polypeptide containing an acid sequence;
  • a conjugate comprising:
  • an isolated DNA encoding at least a part of a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing.
  • a method is provided.
  • the present invention comprises the above-described compound of the present invention or the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
  • the present invention provides an antibody that specifically recognizes a compound containing at least a part of the polypeptides.
  • Item 1 having the property of phosphorylating at least one tyrosine residue of the polypeptide when reacted with a cell expressing a homologous mutant having a septa type 1 tyrosine kinase activity.
  • At least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing is at least partially containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing. 7.
  • At least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing is at least partially derived from the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
  • At least one kind of a compound containing at least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing and the amino acid of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing At least one member selected from the group consisting of compounds other than compounds containing at least a part of a polypeptide having an acid sequence;
  • At least a portion of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing is at least partially a protein of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing. 21.
  • At least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing is a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
  • a method for producing an isolated compound comprising at least a portion of a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing:
  • DNA encoding at least a part of the polypeptide is linked to a replicable expression vector, and the DNA is operably incorporated into the replicable expression vector.
  • At least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the above sequence listing is a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
  • the method of item 14 which is at least part of the code.
  • a single DNA selected from the group consisting of a sense DNA containing at least 12 consecutive nucleotide sequences of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, and an antisense DNA complementary to the sense DNA
  • the isolated DNA fragment, and the sense DNA and the antisense DNA are methylated, methylphosphorylated, thiophosphorylated, or deaminated, respectively.
  • An antisense RNA comprising at least 12 consecutive nucleotide sequences complementary to the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, and a sense RNA complementary to the antisense RNA.
  • the selected isolated RNA fragment, and the antisense RNA and the sense RNA are methylated, methylphosphorated, thiophosphorylated, or deamino, respectively.
  • preparation of cDNA necessary for gene manipulation examination of expression by Northern blot, screening by hybridization, preparation of recombinant DNA, determination of DNA base sequence,
  • a series of molecular biology experiments, such as preparation of a cDNA library can be performed by the method described in an ordinary experiment manual.
  • the usual test book mentioned above is, for example,
  • the receptor tyrosine kinase ligand of the present invention has an amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 1 and 2 in the sequence listing, having receptor type 1 tyrosine kinase activity. And has the ability to bind to the isolated polypeptide and a homologous mutant of the polypeptide having a receptor-type thymic synthase activity, and is capable of binding to a polyacrylamide gel.
  • the term “receptor tyrosine kinase activity” refers to an enzyme activity that tyrosine kinase originally possesses for phosphorylating tyrosine residues, and the extracellular domain of receptor tyrosine kinase.
  • the “reset pig type 1 tyrosine kinase ligand activity” refers to a receptor type 1 tyrosine kinase having at least the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • An activity of binding to a polypeptide that is, an extracellular domain of the receptor pig type 1 tyrosine kinase
  • a receptor type containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing Tyrosine kinase lipopeptide (ie, a polypeptide composed of an extracellular domain, a transmembrane domain, and an intracellular domain excluding the signal peptide of the receptor-type tyrosine kinase).
  • mutations such as intra-species mutations and allelic mutations that are known to occur in nature and can be artificially produced Homologous mutants having a receptor tyrosine kinase ligand activity, which are caused by mutations such as point mutations, are also included in the receptor tyrosine kinase ligand of the present invention.
  • the chromosomal DNA or cDNA isolated from the natural environment can cause the amino acid sequence encoded by the DNA to be reduced due to the degeneracy of the genetic code. There are often cases where the DNA base sequence is mutated without change.
  • the DNA sequences of those regions are easily mutated.
  • the nucleotide sequence obtained by such degeneracy or mutation of the gene, and the amino acid sequence of the above-described ligand homologous mutant having the receptor type 1 tyrosine kinase activity are described below.
  • the nucleotide sequence to be coded is also included in the DNA of the present invention.
  • the step of obtaining the cDNA of the receptor type 1 tyrosine kinase used in the present invention is performed as described in Reference Examples 1 to 6 described below. You.
  • PCR is performed using primers corresponding to the amino acid sequence characteristic of the tyrosine kinase gene.
  • Preparation of PCR primers and PCR can be performed by the method of Wi 1 ks (Proc. Nat 1. Acad. Sci. USA 86: 1603, 1989). Specifically, an oligonucleotide is synthesized and purified using a commercially available DNA synthesizer to obtain a primer for PCR.
  • the PCR primer was used to transform human megakaryoblastic leukemia cell line UT-7 (Japan, Kumamoto University School of Medicine, Division of Developmental Medicine, Division of Developmental Medicine, Toshio Suda (Available from Lecturer, Department of Hematology, Jichi Medical University, Japan, Lecturer Norio Komatsu) and perform PCR to amplify specific sites. As a result, about 200 bp, which is a part of a specific tyrosine kinase, can be expanded.
  • the PCR product DNA fragment is separated by agarose gel electrophoresis or the like, and purified and recovered.
  • nucleotides 2644 to 2812 of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing encodes the central portion of the active site of the chicokinase enzyme and encodes an amino acid sequence that plays an important role in intracellular signaling.
  • the cDNA fragment cloned by the method described above is labeled with an isotobe, and the cDNA of the UT-7 cell line is cloned. It can be obtained by screening a DNA library by a method such as hybridization. Is a labeling eye Seo bets Ichipu was example, if [32 P] y - how to label the end with ATP and T 4 port I J click Reochi Dokina one peptidase and other two click DOO Labeling methods such as the lanceration method or the primer extension method can be used.
  • the cDNA base sequence of the receptor tyrosine kinase used in the present invention is shown as SEQ ID NO: 3 in the sequence listing together with the amino acid sequence encoded by it.
  • the nucleotide sequence is longer than 409 bases. 5 'untranslated region, followed by a region coding for the receptor tyrosine kinase consisting of 2961 bases, and further followed by 3' consisting of 919 bases Consists of untranslated regions.
  • the amino acid sequence of this receptor tyrosine kinase is a signal peptide composed of 15 amino acids corresponding to amino acids 15 to 11 of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing. And the extracellular portion composed of amino acids 5 to 22 of amino acid sequence No. 1 to SEQ ID No.
  • amino acid sequence of SEQ ID No. 3 in the sequence listing amino acid sequence of SEQ ID No. 3 in the sequence listing
  • the transmembrane portion composed of 26 amino acids corresponding to Nos. 52 3 to 54 8 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing
  • the intracellular portion composed of 4 2 4 amino acids is composed of the same.
  • 260 amino acid corresponding to amino acids 600 to 859 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing is a tyrosine kinase enzyme active portion.
  • the transformed cell obtained by transfecting Escherichia coli JM109 (manufactured by Toyobo, Japan) with the vector pBSRTKFULL containing the entire nucleotide sequence of this resettle pig type 1 tyrosine kinase cDNA was produced by the Ministry of International Trade and Industry of Japan. Deposited at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, National Institute of Biotechnology, under the deposit number FE RM BP—4883, on January 11, 1994.
  • polypeptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing is obtained by removing the amino acid in the portion excluding the signal peptide in the extracellular portion of the receptor type 1 lipoprotein kinase. Has an acid sequence Equivalent to a polypeptide.
  • polypeptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing is a polypeptide having an amino acid sequence excluding the signal peptide of the receptor tyrosine kinase described above. Equivalent to a peptide.
  • the receptor tyrosine kinase used in the present invention is human EPH (Hirai eta, Science, 238, 1717—1720, 1987), a cloned receptor type 1 tyrosine kinase. ECK (Lindberg and Hunter, Mo 1. Cel l.
  • the methods for obtaining the receptor tyrosine kinase gene used in the present invention include the methods described in Reference Examples 1 to 6 and commercially available human placenta or fetal liver cDNA. Uses the cDNA library directly as a template, and A sense primer and an antisense primer of about 2 O mer of the DNA sequence described in No. 3 are prepared and subjected to PCR, or by using this PCR product as a probe.
  • the library can be obtained by screening using the method described in Reference Examples 1 to 6.
  • the cDNA of the receptor type 1 tyrosine kinase used in the present invention is not only UT-7 but also a human chronic myelogenous leukemia cell line, K5662, a blood cell line.
  • RCB 027 and human acute megakaryoblastic leukemia cell line CMK (Blood 74: 42, 1989), and liver for non-blood cell lines.
  • Cell carcinoma cell line Hep3B American 'Type' Culture 'Collection (hereinafter referred to as ATCC) available as HB8064] and human fetal lung fibroblast cell line MRC — 5 (available from the National Institute of Physical and Chemical Research, Cell Development Bank, No. RCB0211), etc., and can be obtained in substantially the same manner as Reference Examples 1 to 6 described below. You.
  • the degeneracy of the gene code causes The desired recombinant DNA can be prepared by changing the gene sequence without changing the acid sequence.
  • the properties of the receptor tyrosine kinase used in the present invention are as described in Reference Example 7. That is, when an undifferentiated blood-derived cell line is differentiated by a stimulator and loses its proliferative ability, Expression of mRNA of receptor tyrosine kinase gene is not observed. Therefore, it is presumed that this receptor-type tyrosine kinase is a receptor for a differentiation / growth factor of particularly unknown blood undifferentiated cells.
  • the receptor type 1 tyrosine kinase when the receptor type 1 tyrosine kinase is to be expressed under more stable conditions, it is preferable to use a nucleated cell, particularly an animal cultured cell, as a host.
  • the polypeptide outside the cell can be purified by affinity chromatography, and an antibody can be produced by using this as an antigen.
  • three mouse monoclonal antibody-producing hybridomas that specifically recognize this receptor type 1 tyrosine kinase, namely, clones 38-1E and 66-6-3 6 8 — 38 are deposit numbers FERBP—4884, BP—4885, and BP—488 at the Research Institute of Biotechnology, Industrial Technology, Institute of Industrial Science and Technology, Ministry of International Trade and Industry of Japan. 6 deposited on January 11, 1974.
  • cells producing ligands that specifically bind to the receptor tyrosine kinase are identified and selected.
  • Examples of the method include a method using a biosensor BIACORE (manufactured by FANORE Masia Co., Sweden), as described in Example 1, Cara 4.
  • This instrument can detect protein binding based on the principle of plasmon resonance on the surface of a substance. That is, a ligand molecule present in the culture of various human cell lines or on the cell membrane and a receptor type 1 tyrosine kinase containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • a cell line producing a substance that binds to the receptor tyrosine kinase polypeptide can be selected.
  • a supernatant or cells of various cell lines and a cell line expressing the receptor type 1 lipoprotein kinase polypeptide described in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing may be used. Were cultured together and the presence or absence of phosphorylation of tyrosine residues in the intracellular domain of the receptor type 1 tyrosine synthase polypeptide was determined. You can select a cell line that expresses the ligand that binds to the kinase.
  • an antibody recognition site for example, an antibody recognition site such as a receptor tyrosine kinase polypeptide described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing or a nucleotide sequence encoding this polypeptide is used.
  • Examples 1 to 4 of the present application as the ligand-expressing cell of the present invention, a human colon cancer-derived cell line C-1 (reproducible from the Japan Institute of Immunology and Biology, Inc. Te Sato medicine Ayumi, 9 6:. 8 7 6, 1 9 7 6 years) t identified the following cells:
  • the ligand of the present invention is purified from cells expressing the same. Purification of the ligand, measurement of molecular weight, evaluation of physical properties, and identification of the N-terminal amino acid sequence in the present invention are described in Example 5. This is the communication described in Nos. To 9. That is, a culture supernatant or a cell membrane fraction of a ligand-expressing cell line, a solution prepared by treating cells with a specific enzyme, or the like contains an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing. And purified using a carrier such as affinity gel to which the polypeptide is bound, and further purified by using the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • a carrier such as affinity gel to which the polypeptide is bound
  • the ligand of the present invention can be purified by a separation operation such as gel filtration or ion exchange using the activity of phosphorylating the cysteine synthyl residue of the polypeptide as an index. It can be.
  • the thus purified compound (ligand) of the present invention is an isolated polypeptide containing an amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NOs: 1 and 2 in the sequence listing. And a binding ability of the polypeptide to a homologous mutant having a receptor tyrosine kinase activity, and having a molecular weight of at least 4 as measured by polyacrylamide gel electrophoresis.
  • the ligand of the present invention an isolated polypeptide having a receptor type 1 tyrosine kinase activity and containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing, Alternatively, when the polypeptide is reacted with a cell expressing a homologous mutant having a receptor tyrosine kinase activity, at least one tyrosine residue of the polypeptide is phosphorylated. Those having characteristics are preferred.
  • the ligand of the present invention also includes a polypeptide containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing, and the amino acid sequence is preferably More preferably, it is located at the amino terminal of the above-mentioned polypeptide.
  • the ligand of the present invention is preferably capable of undergoing both a Coomassie brilliant staining reaction and a PAS staining reaction (detecting the presence or absence of sugar chain binding).
  • the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing was determined by the Protein Sequencer (manufactured by Applied Biosystems, USA), and the amino terminal (N The amino acid sequence of amino acid Nos. 1 to 8 of the sequence at the end) is shown.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 in this sequence listing was converted into a protein database, NBRF-PDB (National Institute of Biomedical Research, Research Foundation, Release 4.0, 1). March 1994) and SWISS — PROT (Eurobian 'Molecular' Biology 'Laboratories, Release 29.0, June 1994). At that time, no known protein having the same sequence was found, and it was a novel amino acid sequence.
  • the ligand of the present invention that is, an isolated polypeptide having an amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NOs: 1 and 2 in the sequence listing, It has the ability to bind the peptide to a homologous mutant having receptor type 1 tyrosine kinase activity, and has a molecular weight of at least 41 measured by polyacrylamide gel electrophoresis.
  • SEQ ID NO: 19 in the sequence listing contains the purified ligase of the present invention.
  • the amino acid sequence identified from the N-terminus of the protein by the protein sequencer is shown.
  • a sense primer and an antisense primer were synthesized based on the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19 in the sequence listing, and the cDNA of the entire cDNA sequence of the ligand of the present invention was synthesized. Can be used for cloning.
  • the ligands can be fragmented by treatment with a protease such as trypsin or a chemical treatment to determine their amino acid sequences, or to determine the amino acid sequence at the carboxyl terminus (C-terminus). It is possible to determine the acid sequence.
  • a protease such as trypsin or a chemical treatment to determine their amino acid sequences, or to determine the amino acid sequence at the carboxyl terminus (C-terminus). It is possible to determine the acid sequence.
  • the ligand of the present invention is a cell membrane-associated protein as evident from the analysis results of the amino acid sequence, but as shown in Examples 5 to 7,
  • the ligands of the invention can be purified from the cell culture supernatant of the expression cells. This is considered to be because extracellular domains were released into the cell supernatant due to cleavage of the amino acid sequence on the cell membrane by a protease such as metalob lipase.
  • the ligand-expressing cell of the present invention also contains the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 (which has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3) of the receptor type 1 tyrosine kinase. (Excluding extracellular domains, transmembrane domains, and intracellular domains, excluding domains), and binding to polypeptides; A receptor containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 3 (the entire amino acid sequence of the receptor type 1 tyrosine kinase); When a cell expressing the tyrosine kinase polypeptide is reacted with a cell expressing the ligand, the tyrosine residue of the receptor tyrosine kinase zepolipide is phosphorylated; As shown, the results of analysis of the amino acid sequence deduced from the total cDNA sequence of the ligand indicate that the ligand of the present invention has a transmembrane portion.
  • the ligand of the present invention can be purified from cell membranes.
  • the ligand of the present invention contains not only extracellular domains but also transmembrane domains and intracellular domains. The size also increases.
  • the amino acid sequence of the ligand is modified by a genetic engineering technique.
  • the gene can be obtained by obtaining the gene to be cloned, introducing the gene into a nucleated cell such as an animal cell, or a prokaryotic cell such as Escherichia coli, producing and isolating the ligand. .
  • an oligo DNA probe was prepared according to the method described in Example 10.
  • One-shot method or PC The gene encoding the amino acid sequence of the full length of the ligand can be screened by the method or a method combining the both.
  • a cDNA library of a ligand-expressing cell is incorporated into an appropriate expression vector and expressed in a COS cell or the like.
  • An example of a method for isolating the cDNA of the ligand of the present invention is an expression cloning technique for screening genes. The expression cloning is performed by a cell sorter utilizing the binding of the receptor-type tyrosin kinase polypeptide containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing to the ligand.
  • a method such as a fractionation method, a detection method using a film emulsion using a radioisotope, or a cell line transfected with the cDNA library itself or its cell culture.
  • a cell line expressing a receptor tyrosine kinase polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing, the tyrosine residue of the polypeptide was reduced.
  • a method based on the fact that phosphorylation is used can be used.
  • the cDNA base sequence coding for the ligand thus obtained is shown in the Sequence Listing along with the non-coding region before and after it and the amino acid sequence coding for it.
  • Figure 7 shows the results.
  • the amino acid sequence predicted from the cDNA sequence was determined by the method of Kyte — Doo 1 itt 1 e U. Mol. Biol. 157: 105, 19 82), the hydrophobic part and the hydrophilic part were analyzed.
  • the ligand of the present invention has a permeable domain consisting of a hydrophobic amino acid sequence and an intracellular and extracellular domain consisting of a hydrophilic amino acid sequence. It was revealed that it was a peptide anchor type cell membrane protein.
  • the extracellular domain of the receptor type 1 tyrosine kinase is released from the intracellular domain of the receptor type 1 tyrosine kinase. May cause oxidation.
  • the amino acid sequence of the ligand of the present invention is obtained from the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 from the 25th amino acid residue to the 25th amino acid residue of the 1st amino acid sequence.
  • Signal peptide extracellular domain consisting of 1-95 amino acid residues from amino acids 1 to 195 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, SEQ ID NO in the sequence listing
  • the amino acid sequence of No. 7 is a transmembrane ifi domain consisting of amino acids Nos. 196 and 225 of the amino acid sequence No. 22 and No. 25 of the amino acid sequence No. 7 in the sequence listing. It is composed of an intracellular domain consisting of 83 amino acid residues from No.226 to No.308.
  • each part other than the signal peptide part has the domain configuration deduced from the amino acid sequence, and its actual form may be slightly different from the above configuration.
  • the constituent amino acids of each domain specified above may be around 5 to 10 amino acids.
  • amino acid sequence described in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing is the amino acid sequence of amino acids 1 to 195 of the amino acid sequence in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing.
  • Amino acid sequence, ie the amino acid sequence of the above-mentioned extracellular domain excluding the signal peptide
  • amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing is SEQ ID NO: 7 in the sequence listing.
  • 1 shows the amino acid sequence from No. 1 to No. 308 of the amino acid sequence of the present invention, that is, the amino acid sequence of the entire ligand of the present invention excluding the signal peptide.
  • amino acid sequence at the N-terminus determined by the above-described blot sequencer that is, an amino acid sequence consisting of 48 amino acid residues shown in SEQ ID NO: 19, and a sequence number deduced from the cDNA sequence
  • amino acid sequences Nos. 1 to 48 of the amino acid sequence No. 7 are the same as those of the amino acid sequence No. 19 in the sequence listing except for the three XXX portions that could not be determined.
  • the noic acid sequences were completely identical.
  • the transformed cell obtained by transfecting Escherichia coli DH5 ⁇ with vector pUCMEKL containing the entire nucleotide sequence of the receptor type 1 tyrosine kinase ligand of the present invention was produced by the Ministry of International Trade and Industry of Japan. Deposit number FER ⁇ at Biotechnology Research Institute
  • the polypeptide that is an extracellular domain of the receptor type 1 tyrosine kinase containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing contains At least a part of the extracellular domain of the ligand of the invention, that is, the polypeptide containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5 binds to the receptor type 1 tyrosome. It is thought to activate receptor tyrosine kinase activity of synkinase.
  • the term “part” used herein refers to at least 12 consecutive amino acid residues that are the active centers of ligands having receptor-type synthase ligand kinase activity. Can be used as an indicator to identify polyreceptor tyrosine kinase activity.
  • N-acetyl-D-darcosamine is a part capable of N-glycosidic bond, and is defined as amino acids 11 and 114 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing.
  • Asparagine residue did not affect the measurement at all in the amino acid sequence analysis by the protein sequencer performed in Example 9 and thus at least C-paragine used in the present invention was not used.
  • the asparagine No. 11 did not affect the measurement at all in the amino acid sequence analysis by the protein sequencer performed in Example 9 and thus at least C-paragine used in the present invention was not used.
  • the ligand produced by one cell it is considered that no sugar chain is added to the asparagine residue at position 11 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7.
  • N-acetyl-D-galactosamine is an O-dalicoside-bondable moiety, and the amino acid of SEQ ID NO: 7 in the frequently occurring sequence list of serine or threonine residues is used.
  • the most probable parts are the threonine at position 155 and the serine from position 168 to position 172 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing.
  • Serine residue or threonine And a serine residue from serine No. 18 to threonine No. 183 or a threonine residue are more stable to degradation in vivo and have stronger bioactivity than those without sugar chains. It is considered that
  • the ligand of the present invention is purified from the cell culture supernatant, and this ligand is produced by proteolytic enzymes such as metalloproteases.
  • proteolytic enzymes such as metalloproteases.
  • the extracellular domain is considered to be a molecule released into the cell supernatant.
  • the cleavage site is located between the extracellular domain and the transmembrane domain described above, that is, isoleucine 195 and 196 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing. It is thought to be between the lysines, but it may have been digested and digested with proteolytic enzymes in other parts as well.
  • this LERK-2 is a binding type of receptor type 1 tyrosine kinase ELK having a relatively homologous receptor type 1 tyrosine kinase to which the ligand of the present invention specifically binds. It is a substance identified as a protein or ligand.
  • the common points between the amino acid sequence encoded by the entire cDNA sequence of the ligand of the present invention and the above amino acid sequence of LERK-2 are as follows. First, four cysteine residues expected to have a disulfide bond, that is, amino acids 37, 64, 76, and 12 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing The position of cystine residue 8 on the amino acid sequence is common. Also, the amino acid at the portion where N-acetyl-D-dalcosamine can bind N-glycosidic, ie, the asparagine residue at position 114 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing. The positions on the array are also common. In addition, the sequence consisting of 33 amino acid residues from amino acids 276 to 308 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, which is an intracellular domain, is completely absent. It is the same.
  • the ligand of the present invention and LERK-2 may have the same physiological action, as shown in Example 19, the ligand of the present invention and the above LERK-2
  • the gene of LERK-2 was obtained from human placenta cDNA by PCR and expressed, and the effect on the receptor tyrosine kinase bound by the ligand of the present invention was obtained. Analysis was performed. As a result, although the receptor was weakly bound to the receptor type 1 tyrosine kinase, the binding was much weaker than that of the ligand of the present invention, and the action of causing the phosphorylation of the receptor was extremely low. It was weak. Therefore, LERK-2 is a substance that has structural similarity to the ligand of the present invention, but has a completely different physiological action.
  • the ligand of the present invention is preferably at least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing.
  • a genetic engineering technique may be used. It can be prepared as at least a part of a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 or 5.
  • the ligand of the present invention can be produced by genetic engineering techniques.
  • the obtained ligand can be purified by the above-mentioned known method.
  • the ligand of the present invention expresses cDNA encoding a polypeptide having an amino acid sequence described in SEQ ID NO: 6 in the sequence listing.
  • SEQ ID No. 5 in the sequence listing which is a domain containing a bioactive center, was used. It is preferable to produce only the amino acid sequence, ie, the extracellular domain of the ligand. That is, it is preferable to use DNA encoding at least a part of the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, and to produce the protein as a secretory protein.
  • the form in which the ligand of the present invention is expressed may be a ligand.
  • the compound may be a single compound, or may be in the form of a complex.
  • the “complex” refers to a compound containing at least a part of the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6, preferably SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
  • the conjugate of the present invention can be preferably used because it has the same or higher physiological activity as compared with one molecule of the ligand described above.
  • the ligand is expressed as a chimera protein of the Fc portion of human IgG, Furthermore, a dimer that forms a disulfide bond with the Hinge region of the IgG Fc; a specific antigen (for example, Fc portion of human IgG, FLAG, etc.) is added to the ligand. It is expressed as a chimera protein expressed at the C-terminal or N-terminal side of the amino acid sequence, and reacted with an antibody that specifically recognizes the antigen to form an antigen-antibody complex.
  • SEQ ID NO: 6 in the sequence listing preferably May be a multimer obtained by linking two or more DNAs encoding at least a part of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 so as to match the reading frame of translation.
  • the complex of the present invention is obtained by cross-linking the extracellular domain of the ligand, which is expressed and purified, using a cross-linking agent, in addition to the above.
  • a cross-linking agent such as Daltar aldehyde that cross-links amino and amino groups, it is possible to form a ligand complex by performing a cross-linking reaction of protein and carbohydrate.
  • Example 13 and Example 16 when expressed using an expression vector having a DNA encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing, it was expressed on a natural cell membrane.
  • a ligand having the same physiological activity as the existing ligand is obtained.
  • Polypeptide having sequence has micellar or liposomal morphology by mimicking biological membranes such as lipids, phospholipids, etc. When present on a substance, it can exert the same physiological activity as when expressed as a molecule on the cell membrane.
  • the ligand of the present invention and the complex containing the ligand have an action of promoting the differentiation and proliferation of undifferentiated blood cells, they are effective for leukemia, an early recovery agent at the time of bone marrow transplantation, and a bone marrow at the time of administration of an anticancer agent. Suppression It is useful as an active ingredient of pharmaceuticals such as a recovery agent and its preventive agent. Further, as described above, a substance in which the ligand is present on a substance having a morphology similar to a biological membrane (eg, micellar liposome) is also useful as an active ingredient of a similar drug. It is.
  • a lipid is covalently bonded to a part of the ligand, and this part is ligated to the lipid of the liposome micelle.
  • the ligand of the present invention can be used for a medical method in which blood cells extracted from a human body are proliferated and activated in an extracorporeal medium, and the cells are returned to the body again.
  • the ligand of the present invention can be added directly to the medium, but it is desirable that the ligand be immobilized in a cell culture vessel.
  • the ligand is shared with the culture vessel by using the amino group / carboxyl group of the ligand and using an appropriate spacer. It can be immobilized by bonding.
  • Examples of the spacer when an amino group of a ligand is used include an ⁇ -carboxyalkyl group derivative, a bromoacetyl derivative, a diazonium derivative and the like.
  • An example of a spacer when the carboxyl group of the ligand is used is an ⁇ -aminoalkyl derivative / hydrazide derivative.
  • As another immobilization method there is a method based on CNB r activation. For details of the ligand immobilization method, see, for example, “Experiment and Application Affinity Chromatography” Chiba
  • the present invention also includes a compound containing at least a part of the polypeptide.
  • the ligand of the present invention produced by a genetic engineering technique can utilize the polypeptide of the extracellular portion of the receptor type 1 tyrosinase used in the present invention as described above. It can be purified, but as shown in Example 15, a polyclonal mono- or monoclonal antibody prepared by immunizing a suitable animal with the ligand. Purification can also be performed by using an affinity-based matrix using antibodies.
  • the ligand of the present invention has an effect of promoting colony formation of human cord blood mononuclear cells, thereby promoting the proliferation of undifferentiated blood cells (the ligand of the present invention and the ligand). Since it has the effect of promoting the differentiation and proliferation of complex blood undifferentiated cells containing gand, it can be used as an early recovery agent for leukemia bone marrow transplantation, a myelosuppressive recovery agent for administration of anticancer drugs and its preventive agent. When the ligand of the present invention is used as a pharmaceutical, the ligand of the present invention is useful. It is desirable to use the lyophilized product of the solution dissolved or suspended in distilled water for injection.
  • the physiological activity of the inviting mouth of the ligand of the present invention can be confirmed by administering various disease model mice or animals such as rats and monkeys exhibiting symptoms similar to those of a similar disease.
  • various disease model mice or animals such as rats and monkeys exhibiting symptoms similar to those of a similar disease.
  • a bone marrow suppression model mouse was prepared by administering a 5-FU anticancer drug, and the compound of the present invention was administered to this mouse. This is clarified by examining the number of bone marrow cells and peripheral blood cells and the physiological function of each group.
  • mouse bone marrow cells were cultured using an incubator or the like, and the compound of the present invention was added at that time. After culture in the group and the group without Cells can be transplanted to a lethal irradiation mouse, and the degree of recovery can be examined by using the survival rate, blood cell count fluctuation, etc. as indicators. Since the results of these experiments can be extrapolated to humans, they can be used as effective data for evaluating the efficacy of the compound of the present invention.
  • Example 12 which showed in which organ the mRNA encoding the polypeptide of the compound of the present invention is expressed, and in which organ the mRNA of the receptor was expressed Comparing the results of Reference Example 7 showing whether or not the compound is expressed, lung and kidney are mentioned as organs in which the compound of the present invention may produce some physiological activity or a similar drug effect. Organ-related diseases are expected to be treated with the compounds of the present invention. Regarding the liver, it was found that the receptor type 1 tyrosine kinase gene of the present invention was strongly expressed in liver cancer. 3 B Northern blot results and a paper by Bennett et al. (Bennetteta 1., J. Bio 1.
  • the ligand of the present invention is related to liver cancer, the growth of normal liver tissue, etc., and is a drug effective for diseases related to these, or a screening system for an effective drug. Applicable to
  • drugs for diseases associated with hematopoietic cells such as leukemia, an early recovery agent at the time of bone marrow transplantation, a bone marrow suppression / recovery agent at the time of administration of an anticancer agent, and a prophylactic agent thereof, may be used.
  • the dosage at this time depends on the form of the drug and the activity of the ligand, but the dose may be about 0.1 mg / kg to 10 Omg / kg.
  • Example 12 an isolated antisense DNA fragment paired with a sequence from 12 mer to 16 mer or more, which is a part of the gene sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing. And the antisense RNA fragments and derivatives thereof that are methylated, methylphosphorylated, deaminated, or thiophosphorylated, and the ligands of the present invention.
  • Gene expression can be examined by Northern blot. In a manner similar to that described in Example 12, it can be used for detection of homologues of the gene of the present invention in other organisms such as mice and rats, and for gene cloning. .
  • the present invention can be similarly used for detection and cloning of genes on genomics including human genomics.
  • inventive ligand can also be revealed. For example, with the use of recent gene manipulation techniques, all methods such as transgenic mice, jet-getting mice, and double knockouts in which the gene related to the gene of the present invention is inactivated are used. You can do this. If there is an abnormality in a portion on the genome corresponding to the gene of the present invention, Applications to gene diagnosis and gene therapy are also possible.
  • an isolated sense DNA fragment and an antisense DNA fragment having a part of the base sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing or derivatives thereof, and an isolated sense RNA fragment and an antisense having a sequence corresponding thereto Gene expression in cells can also be regulated by RNA fragments or their derivatives.
  • the compounds of the present invention can be detected and measured, and the above-mentioned diseases and the like can be diagnosed.
  • Useful as medicine
  • the culture and subculture of UT-7 cells contain 10% fetal bovine serum (FCS; all FCSs used in this patent are manufactured by Finoletron, Australia) as a medium.
  • FCS fetal bovine serum
  • hGM-CSF Human granulocyte macrophage colony stimulating factor
  • IMDM Skov-modified Dulbecco's medium
  • RNA Lithium Chloride / U Tota 1 RNA was extracted by the rea method (Eur. J. Biochei 107: 303 (1980)). Next, Poly (A) + RNA was separated and purified using Oligotex-dT30 (Takara Shuzo, Japan).
  • Synthetic oligonucleotides were prepared using a fully automatic DNA synthesizer based on the solid-phase method. As a fully automatic DNA synthesizer, Applied Biosystems Inc. 39.1 PCR-MATE in the United States was used. Nucleotide, 3'-nucleotide-immobilized carriers, solutions, and reagents were used according to the company's instructions. Complete the specified coupling reaction, and remove the 5'-terminal protecting group with trichloroacetic acid to remove the oligonucleotide carrier in concentrated ammonia. The oligonucleotide was released from the carrier by allowing to stand at room temperature for 1 hour at room temperature.
  • the reaction solution containing the nucleic acid is left in a sealed vial at 55 ° C for 14 hours or more in a concentrated ammonia solution in a sealed vial.
  • Purification of each of the oligonucleotides from which the carrier and protecting groups were released was performed using an OPC force cartridge from Applied Biosystems in the United States and detrityled with 2% trifluoroacetic acid. It has become.
  • the purified primer was dissolved in deionized water to a final concentration of 1 ⁇ g / ⁇ and used for PCR.
  • CDNA was synthesized using the Po1y (A) + RNA obtained in Reference Example 1. That is, 2 g of Poly (A) + RNA was dissolved in 12.3 £ of deionized water, and 10X buffer solution (500 mM MKC 1, 100 mM MTris — HC)
  • Amplification by PCR was performed as follows. Using 20 ⁇ of the cDNA solution obtained in Reference Example 3, 10 ⁇ buffer (500 mM MKC 1, 100 mM M ris—HC 1 (pH 8.3), 1 ⁇ 5 mM g C 1 2, 0 . 0 1% gelatin) 8 ⁇ ⁇ , d NTPM ixture ( Japan, Takara Shuzo) 6. 4 ⁇ ⁇ , sense primer specific for the above-mentioned tyrosine kinases [rho T kappa
  • the entire amount of the PCR product was electrophoresed on a 2% agarose gel prepared using low melting point agarose (GIBCO-BRL, USA). After staining with Etudemub mouth, a band of about 210 bp was cut out under UV irradiation, and the same volume of distilled water as the gel was added. After heating for 1 minute to completely dissolve the gel, add an equal volume of TE-saturated phenol (manufactured by Nippon Gene, Japan), centrifuge at 1500 rpm for 5 minutes, and remove the supernatant. Separation was performed, and the same separation operation was performed using a TE-saturated phenol: chloroform (1: 1) solution, and furthermore, chlorophore.
  • TE-saturated phenol manufactured by Nippon Gene, Japan
  • cDNA was recovered by ethanol precipitation.
  • the recovered cDNA was digested with restriction enzymes EcoRI (Takara Shuzo, Japan) and Sa1I (Takara Shuzo, Japan), and then used for incorporation into vectors.
  • pBIuescript IIKS manufactured by Stratagene, USA; hereinafter, referred to as pBluescript
  • pBluescript digest with the restriction enzymes EcoRI and Sa1I before incorporating the cDNA above. Then, it was refined by the above method. A mixture of the vector subjected to these treatments and the preceding cDNA in a molar ratio of 1: 5 was mixed with T4 DNA ligase manufactured by New England BioLab in the United States. The cDNA was incorporated into the vector with the enzyme.
  • pBIuescript into which E. coli was incorporated was introduced into E.
  • the nucleotide sequence of the incorporated cDNA was determined for the confirmed clone using a fluorescence sequencer of Applied Biosystems, Inc. of the United States.
  • a tyrosine kinase gene fragment was obtained that was cloned from unstimulated UT-7 cells, but was not cloned when UT-7 was differentiated into megakaryocytes.
  • This gene fragment was No. 2664 of the SEQ ID No. 3 in the sequence listing, and No. 2812 of the sequence.
  • these cDNA libraries are Li Daizesho down of also rather plaque hive Li Daizeshi ® 5 X 1 0 5 corresponding to the search phrase loans with a total length c DNA in emissions co-Roni one also properly went from plaque.
  • the resulting colonies or plaques were transferred to nylon finole letters (Hybond N +: manufactured by Amersham, UK), and the transcribed nylon finole letters were treated with alkali (1.5 MNaCl, 0.1 M NaCl).
  • a cDNA probe labeled with 32 P radioisotope was prepared as follows. That is, pB1uescript in which the partial cDNA of tyrosine kinase was incorporated was cut out from vector with Sa1I and EcoRI, and the DNA fragment was obtained from the low melting point agarose gel. Was purified and recovered. The obtained cDNA fragment was used as a DNA labeling kit (Megaprime DNA). labeling system: Amersham, UK). That is, to 5 ng of DNA, add 5 ⁇ l of the primer solution and deionized water to make a total volume of 33 ⁇ , perform a boiling water bath for 5 minutes, and then add 10 mL of reaction buffer containing dNT 1.
  • the filter prepared by the above method is used for the SSP E solution with the final concentration of each component of 5 times and the Denhardt solution with the 5 times concentration.
  • pre-hybridase a denatured salmon sperm DNA denatured in a lOmg Z ml boiling water bath. After immersion in shaking solution and shaking at 65 ° C for 2 hours, a prehybridization solution containing the 32 P-labeled probe by the above-mentioned method was used. The sample was immersed in the rehydration solution, shaken at 65 ° C for 16 hours, and subjected to hybridization.
  • the final letter was immersed in an SSPE solution containing 0.1% SDS, shaken at 65 ° C, washed twice, and further diluted 10-fold containing 0.1% SDS. It was immersed in the SSPE solution and washed four times at 65 ° C. ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ Autoradiography was performed using As a result, the strongly exposed part of the clone was picked up, the colony and the black were sown again, and the screening was performed in the manner described above, thereby completely separating the single clone. .
  • cDNA was purified by low melting point agarose electrophoresis and incorporated into pB1uescript. The size of the incorporated cDNA was approximately 3.0 kbp and 1.6 kbp.
  • phage DNA was purified from two clones isolated from the human placenta library, which had a large insert size, according to the method described in the experimental manual by Maniatis et al. It was digested with coRI and similarly incorporated into pB1uescript. The size of the incorporated cDNA was approximately 3.8 kbp (clone 2) and 3.5 kbp (clone 9).
  • the gene sequences at both ends of the cDNAs of these clones were used for labeling kits for ALFDNA Sequencer (Swedish, Pharmacia) and ALF Sequencer (Swedish, Pharmacia) using the attached kit. The decision was made according to the book. In order to determine the full-length nucleotide sequence, there is also a delugetion module for kilosequence manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd. in Japan. Using a kit, according to the attached instruction manual, a dilution medium was prepared, and the nucleotide sequence in both directions of the cDNA was determined.
  • the nucleotide sequence of the gene prepared as described above is shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing.
  • MOLT-4 available from ATCC, CCL1582
  • this gene was expressed in an undifferentiated state of blood cells, and its expression disappeared as blood cells differentiated. Therefore, it was considered that this receptor type 1 tyrosine kinase is linked to fV: maintenance of blood stem cells and megakaryocyte differentiation.
  • Step 1 A cell line expressing a receptor tyrosine kinase polypeptide having an amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing, Ba /
  • DNA encoding the polypeptide was transformed into an expression vector containing the SRct promoter and the neomycin resistance gene pMK IT neo (Maruyama et al., Proceedings of the 91st Molecular Biology Society of Japan, (Available from Tokyo Medical and Dental University Maruyama), respectively, to produce expression vectors.
  • the PCR product is purified by the method described in Reference Example 5, and treated with the restriction enzymes XhoI and EcoRI.
  • the purified gene was ligated to the treated pBluescript using T4 DNA ligase manufactured by New England BioLab, USA, and subcloned. Then four clones
  • the plasmid DNA is purified from the colony and sequenced to confirm the gene sequence.
  • the gene sequence is correct and the target gene sequence, that is, the DNA sequence of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing It was confirmed that the fragment had the sequence from No. 3230 to No. 3337.
  • the vector having this fragment is referred to as p BSF1.
  • r Lys Asp Asp Asp Asp Asp An expression vector having a gene sequence encoding a polypeptide to which a polypeptide (FLAG, described in SEQ ID NO: 13 in the sequence listing) is added.
  • primers were used in the same manner as described above, and the primers were primers of the primers 1 and 5'-GGGAATTCATTTATCATCATCATCTTTATAATCGTACTG CGGGGCCGGTCCTCCTGT-3 '(primer 13 and SEQ ID NO: 12 in the sequence listing).
  • PCR subcloning into pB1uescript, sequencing the 4 clones, confirming the gene sequence, and confirming the gene sequence of interest, that is, the DNA sequence of SEQ ID NO: 3 in the Sequence Listing. 3 2 3 0 3 to 3 3 0 It was confirmed that the fragment was a fragment having a sequence in which 5′—GATTATA AAGATGATGATGATAAATGA-3 ′ (described in Iris No.
  • PBSF2 the vector having this fragment
  • p BSRTKFULL was digested with the restriction enzyme BamHI (Takara Shuzo Co., Ltd., Japan) and purified by the same method as described above.
  • the PUCRTKFULL thus prepared is digested with the restriction enzymes Sa1I and Bg1II, and the fragment of about 3 kbp is subjected to agarose gel electrophoresis. Fragment in which the portion from Sa1I to BamHI of the restriction enzyme site for PUC19 is connected to the end of the 5th end of the sequence from No. 384 to No. 3230 of the DNA sequence No. 3
  • the sample was cut out and purified by the method described above. This gene fragment is designated as F 3.
  • restriction enzymes Sa1I and Bg1II were digested with pBSF1 and PBSF2, and the fragment Bg1II in the vector from the Sa1I siteka of the multi-cloning site.
  • the gene fragment except for the 30 bP gene fragment was purified by the above method. These gene fragments are referred to as F 1 and F 2, respectively. Then, F1 and F3, and F2 and F3 are connected by the above-described method, respectively, and the polypeptide of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing is coded by restriction enzymes Sa1I and NotI.
  • the vector from which the gene fragment is cut out is p FLAG amino acid sequence at the C-terminus of the polypeptide of SEQ ID NO: 2 with BSFULLl and restriction enzymes Sa1I and N0tI.
  • a vector PBSFULL2 from which a gene fragment corresponding to a portion coding for a polypeptide having the above was cut out was prepared.
  • the thus prepared vectors-PBSFULLl and pBSFULL2- are digested with restriction enzymes Sa1I, NotI and Pvul, and a gene fragment of approximately 3 kbp is obtained by electrophoresis. That is, a gene fragment containing the gene fragment encoding the amino acid sequence of receptor type 1 tyrosine kinase was separated and purified. These two gene fragments were treated with the above-mentioned pMKIT neo using the restriction enzymes Sa1I and NotI to remove a portion of the staff, and then subjected to T4 DNA ligation. As a result, an expression vector for the receptor tyrosine kinase was constructed.
  • the vector prepared without the FLAG sequence as described above is referred to as p MK FULL, and the vector including the FLAG sequence is referred to as p MK FULLFLAG.
  • the cell lines to be transfected are mouse pro-Bce11 1 ineBano F3 (available from RIKEN, Cell Development Bank, Japan, No. RCB0805) and mouse. Fibroblast B alb // 3 T 3 clone A 31 (available from RIKEN, Cell Development Bank, Japan, No. RCB 005).
  • Ba / F3 was RPM 1 1640 (GIBCO—BRL, USA), 10% FCS, 100 OOig / ml mouse IL—3 (US, Intergen Ba1bZ3T3 was cultured in D-MEM (Dalbecco's modified MEM medium, GIBCO-BRL, USA) 10% FCS.
  • the expression vector was digested with a restriction enzyme NruI (Takara Shuzo Co., Ltd., Japan) to make it into a linear form and then transfected.
  • NruI restriction enzyme
  • the cells were cultivated in a 0 cm cell culture dish with 10 ml of the above medium. The next day, centrifuge the above medium into G418 (US, S),
  • a cell line which transfects the thus-produced Ba / F3 and stably expresses the polypeptide containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing is obtained from Ba / F3 / FULL, stable expression of a polypeptide having a FLAG amino acid sequence at the C-terminus of a polypeptide containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing
  • the cell line was named BanoF3 / FULLFLAG.
  • a control transformed cell line into which 1 ⁇ 1: 1 1116 itself was transfected was prepared and named Ba / F3ZCON.
  • Preparation of a transgenic cell line using Ba1b / 3T3 was carried out as follows. That is, the medium of the cells was changed the day before, the number of cells was changed to 5 ⁇ 10 6 cells for a cell culture dish with a diameter of 10 cm, 10 ml of the above medium was added, and the cells were cultured overnight. . The next day, to precipitate the cells by centrifugation fraction away, PBS (-) 2 times after centrifugation washed with, 1 m MM g C 1 2 , PBS - a to 1 X 1 0 7 eel 1 s Z ml () Thus, cells were prepared.
  • Gene transfer was performed by an electroporation method using a gene transfer device manufactured by Bio-Rad, USA. Transfer the above cell suspension (500 ⁇ fi) to a dedicated electroporation cell (0.4 mm), add 20 / g of the expression vector, and place on ice for 5 minutes. put. Thereafter, the soda was allowed to stand at room temperature for 1 minute, and two 3 F, 450 V voltages were applied. Then, after leaving it on ice for 5 minutes, it is cultured for 3 days in the above culture medium (10 ml) in a 10 cm diameter cell culture dish. I got it.
  • the medium was replaced with a medium containing G418 (Sigma, USA) at a concentration of 400 ⁇ g / m ⁇ , and the medium was replaced every other day with 1Z3
  • the culture was continued for about 10 days after the exchange. After 10 days, the colonies formed on the dish were peeled off using a Tribsin solution (GIBCO — BRL, USA) to obtain a cell line stably expressing the cloned gene. .
  • the cell line that stably expresses the polypeptide containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing of Ba1b / 3T3 prepared in this manner was transformed into Ba1FULL.
  • a cell line that stably expresses a polypeptide having a FLAG amino acid sequence at the C-terminus of the polypeptide containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing. was named Balb ZFULLFLAG.
  • a control-transformed cell line into which PMKIT neo itself was transfected was prepared, and named Ba1bZCON.
  • Step 2 Preparation of a cell line expressing a receptor tyrosine kinase polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing Also, the extracellular portion of receptor type 1 tyrosine kinase, namely, An expression vector was constructed which allows animal cells to produce a polypeptide containing the polypeptide described in SEQ ID NO: 1 of the Sequence Listing.
  • oligo DNA (primer 15, described in SEQ ID NO: 15 in the sequence listing) as the primer.
  • PCR was performed using pB1uescript containing the gene of SEQ ID NO: 3 in the column list as a template. After confirming that a DNA of about 150 bp is amplified by agarose gel electrophoresis, the PCR product is purified by the method described in Reference Example 5 and digested with the restriction enzyme EcoRI. restriction enzyme treatment was, by connecting gene p B 1 uescript that was de-phosphate processing terminal in United States N ew E ngland B io L ab Co.
  • a clone was selected so that the S a1 I site of the 1 pt multi-cloning site and the N0tI site were located downstream of the gene sequence encoding the 3 'FLAG sequence.
  • this vector is referred to as pBSF4.
  • the above vector pUCRTKFULL was digested with restriction enzymes Sa1I and AatII (Toyobo, Japan), and a gene fragment of about 1.6 kbp was purified by the above method.
  • This gene fragment contains the sequence from No. 384 to No. 182 of the DNA sequence of SEQ ID NO: 3 in the Sequence Listing.
  • PBSF3 was digested with the restriction enzymes Sa1I and AatII, and approximately 3.
  • the 2 kbp gene fragment was purified.
  • the vector prepared by connecting these two gene fragments was further digested with restriction enzymes Sa1I and NotI and connected to the above-mentioned expression vector PMKIT neo.
  • a vector producing a polypeptide having a FLAG sequence at the C-terminus of the amino acid sequence was prepared. This expression vector is designated as PMKEXFLAG.
  • the Fc portion of the polypeptide below the hinge portion of the immunoglobulin IgG1 is located at the C-terminus of the polypeptide having the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • a vector capable of producing a polypeptide having an amino acid sequence was prepared as follows. 73
  • the fusion protein was synthesized with the method of Zett 1 meiss 1 et al. (Zet t lmeissl eta 1.
  • a gene using intron-containing genomic DNA was used in accordance with DNA Cell Bio, 9, 347-354, 1990), and the gene was prepared by PCR. That is, using the human genome DNA as a template, the gene sequence encoding the human IgGI Fc portion was replaced with the 5'-A ACCATCCCCGAGGGTGTCTGCTGGAAGCCAGGCTCA with restriction enzyme BamHI site.
  • oligo DNA (primer 7, described in SEQ ID NO: 17 in the sequence listing), restriction enzyme XbaI site, 5'-CCTCTAGAGTCGCGGCCGT CGCACTCATTTACC-3, PCR was performed using oligo DNA (primer—8, described in SEQ ID NO: 18 in the sequence listing) having a systematic primer as a primer, and a band of about 1.4 kbp was purified.
  • oligo DNA primer—8, described in SEQ ID NO: 18 in the sequence listing
  • Treated with HI and XbaI (Takara Shuzo Co., Ltd., Japan) and sent to the same restriction enzyme-treated PB1uescript using T4 DNA1 igase from New England BioLab, USA. The child was connected and sub-cropped.
  • the brassmid DNA was purified and sequenced to confirm the gene sequence, confirming that the gene sequence was indeed genomic DNA corresponding to the hinge portion of the heavy chain of human IgGI. (See Kabateta I., Sequence of Immunological Interest, NIH pub cat ion No 91-3242, 1991 for the sequence.)
  • this vector is referred to as p BS hlg F c.
  • the above vector p BSF5 is replaced with the restriction enzymes BamHI and Ec o Digestion with RI, purify a gene fragment of approximately 150 bp by the above method, and then convert the above vector pBShIgFc to restriction enzymes BamHI and EcoRI. Then, a gene fragment of about 4.4 kbp is purified by the above method, and the both are ligated to each other with T4D ⁇ ligase manufactured by New England BioLab in the United States.
  • the vector thus prepared was digested with restriction enzymes Sa1I and AatII, and a gene fragment of about 4.4 kbp was purified by the above method.
  • the above vector PUCRTKFULL was digested with restriction enzymes Sa1I and AatII, and a gene fragment of about 1.6 kb P was purified by the above method.
  • the vector prepared by connecting these two gene fragments was further digested with restriction enzymes Sa1I and N0tI, and connected to the above-described expression vector PMKIT neo.
  • a polypeptide production vector having the amino acid sequence of human IgGI Fc at the C-terminus of the amino acid sequence was prepared. This expression vector is referred to as pMKEXIg.
  • the expression vectors pMKEXFLAG and pMKEXIg were transfected with COS-7 (RCB0539, available from RIKEN, Cell Development Bank, Japan). The method of culturing COS-7 and introducing the gene were performed in the same manner as in BaIb / 3T3, and cells into which the gene had been introduced were obtained.
  • cell culture supernatant serum-free D-MEM (GIBCO-BRL, USA) was replaced every 4 days, and the culture supernatant was collected for 2 weeks. Each of the collected culture supernatants was exchanged with PBS (-) from the medium and centrifuged 10 times with Centricon 30 (Amicon, USA).
  • the concentrated culture supernatant was purified using an SDS-PAGE electrophoresis tank and SDS-PAGE polyacrylamide gel (gradient gel 5 to 10%) manufactured by ACI Japan of Japan. SDS-PAGE was performed in accordance with the instructions.
  • the sample was prepared by adding 2-mercaptoethanol (2-ME) and heat-treating the sample under non-reducing conditions, and the non-reducing sample under non-reducing conditions.
  • the sample was prepared using a Rainbow Marker 1 (for high molecular weight) manufactured by Amersham, Inc., according to the instruction manual attached to the sample, the electrophoresis buffer, and the end plate. After completion of SDS—PAGE, acrylamide gel is applied to the PVDF membrane label.
  • a Rainbow Marker 1 for high molecular weight manufactured by Amersham, Inc.
  • the filter thus prepared was subjected to 5% BSA (manufactured by Sigma, USA), TBS-T (20 mM MTris, 1337 mNaC1 (pH 7.6)) , 0.1% T weem 20) Blocked while rubbing at 4 ° C.
  • BSA manufactured by Sigma, USA
  • TBS-T 20 mM MTris, 1337 mNaC1 (pH 7.6)
  • T weem 20 0.1% T weem 20
  • polypeptide-producing cell containing the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1 of the target sequence listing was obtained.
  • the extracellular portion was approximately 20 kilodaltons larger than the molecular weight expected from the amino acid composition, and was expected to be glycosylated.
  • the vectors PMKEXFLAG obtained in Step 2 of Reference Example 8 and Five liters of each of the culture supernatants of the cells transformed with pKEXIg were prepared. These culture supernatants were applied to an Anti-FLAGM 2 Affinity Gel column manufactured by Kodak, USA and a pr0tein G Sepharose column or a Protein A Sepharose column manufactured by Pharmacia, Sweden. Each protein was absorbed into the column. The size of each column was 1 cm ⁇ 3 cm, the volume was about 2 ml, and the flow rate was all 1 ml Zmin. After the adsorption, the column was washed with PBS (-) 2 O ml, and then eluted with 0.5 Tris-glycine (PH 3.0).
  • the FLAG chimera and IgGFc chimera protein purified by the above method were purified by gel filtration.
  • the eluate from the affinity column is exchanged for buffer with PBS (-) at Centricon 30 manufactured by Amicon, USA.
  • the gel flow was carried out using a FPLC system manufactured by Pharmacia in Sweden and at the company's Superose 12 column.
  • Reference Example 8-2 The main peak eluted at the same molecular weight position as the result of the Western blot under the condition without ME was collected.
  • EXFLAG PTN
  • EXI g Shown as PTN.
  • Reference Example 10 Establishment of a monoclonal antibody that recognizes receptor type 1 thyrokinase and confirmation of expression of receptor type thycosine kinase
  • a mouse monoclonal antibody was prepared according to the method described in the written document. Immunization was performed three times, and one animal was immunized with 30 / ig each time. Blood was collected before the third immunization, blood samples were collected, and the antibody titer using the immunized EXFLAG-PTN was used. The cell culture supernatant was used for screening, and the cell culture supernatant was used to recognize both EXFLAG-PTN and EXIg-PTN. As a result, three hybridomas producing mouse monoclonal antibodies, namely clones 38-1E, 66-3A and 68-3A, were established.
  • the following experiments were performed using the monoclonal antibody 38 produced by the clone 38-1E.
  • XJT_7, MRC-5, and the above-mentioned transformed cell lines BaZF3 / FULL, Ba / F3 / FULLFLAG, Balb FULL and Ba1bZFULLFLAG were subjected to cell surface antigen analysis using a flow cytometer EPICS Elite manufactured by Coulter, USA.
  • Antibody staining was performed according to the method described in the written literature. The antibody was purified from the hybridoma culture supernatant as a primary antibody using Matratra GII (Pharmacia, Sweden) according to the attached instructions, and the secondary antibody was used as a secondary antibody.
  • the assay was performed with a goat anti-mouse Ig FITC label manufactured by Incorporated. As a result, it was confirmed that cells transfected with UT-7, MRC-5, and Receptor type 1 osteosynkinase gene were stained with the above-mentioned monoclonal antibody.
  • the preparation of the cell lysate was performed as follows.
  • the 2 X 1 0 6 cells cells re Shisuba' file one (5 0 mM H epes (p H 7. 5), 1% T riton X 1 0 0, 1 0% glycerol, 1 0 mM N a 4 P 407, 100 mM NaF, 4 mM EDTA, 2 mM Na3VO4, 50 ⁇ g / m ⁇ A protinin, 100 ⁇ ML eupe ptin, 25 ⁇ Pepstatin A, 1 m MPMSF) Suspend in 200 / fi, leave on ice for 20 minutes, centrifuge at 140 rpm for 20 minutes, remove supernatant, and disrupt cells Thing was obtained.
  • a sample to be measured with the BIA core was prepared as follows. .
  • Table 1 summarizes cell names, cell types, culture media for cell culture passages, and cell sources.
  • EXI g — PTN and EXFLAG — PTN prepared and purified by the method described in Reference Example 9 were combined with 100 mM sodium acetate buffer (pH 4) to give a concentration of 100 / g Zml. 0) and activated BIA core sensor chip CC-certified (Fanoremasia, Sweden) according to the instructions in the attached instruction manual. And bonded. Injection was performed twice with 5O ⁇ , combined, blocked with ethanolamine, and washed with HSB buffer until the baseline was stable. The flow rate was 5 ⁇ min, including the measurement of the following samples. The difference between the response unit (RU) before and after binding of SenShip to EXIg-PTN and EXFLAG-PTN was about 100 RU.
  • BIA c 0 re The conditions for sample introduction and measurement of BIA c 0 re were as follows. A flow of 30 ⁇ (6 min) was applied to the sensor chip to which the above peptide was bound. As a representative profile, a graph showing the measurement results of the binding activity of ligand contained in the culture supernatant of C-11 cells (unstimulated) to tyrosine kinase is shown in Fig. 1.
  • the RU value is the part of the baseline before the sample is introduced, the mass transit due to the entry of the sample (the top of the baseline is re-aligned) and the ligand is " t: Changes occur in the part that binds to the tyrosine kinase, which is a puter, and in the part that is replaced by the normal HSB buffer, as indicated by the two points indicated by the arrows in Fig. 1.
  • the value of the baseline (30 seconds before sample introduction; indicated by arrow A in Figure 1) and the value immediately after the final replacement with HSB buffer (ie, 6 minutes after sample introduction)
  • the difference between the two values of the value after 10 seconds was defined as the ligand binding activity.Every time the sample was measured once, 5 OmM sodium acetate was added. 0.5 M Flow N a C 1 (pH 4.0) by 15 ⁇
  • C-1 is a typical cell line of candidate ligand-expressing cells that showed high ligand binding activity to both EXIg—PTN and EXFLAG—PTN.
  • BT-20 cells were revealed as a cell line that did not express the cells or ligand.
  • Example 2 the ligand-expressing cells were identified by examining various cell culture conditions.If the ligand was also present on the cell membrane, cells were prepared in Reference Example 9. Ligand-expressing cells should be stained with polypeptides containing the extracellular portion of the receptor tyrosine kinase. Therefore, identification of a ligand-expressing cell was carried out using a polypeptide EXIg—PTN containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 in the sequence listing prepared as shown in Reference Example 9. It was performed at a low-site meter.
  • Figure 2 shows the results.
  • the vertical axis in FIG. 2 indicates the number of cells.
  • the horizontal axis shows the relative fluorescence intensity, which becomes stronger as going to the right. From this result, a shift in the fluorescence peak was observed for C-1 as compared to the control to which EXIg-PTN was not added, and it was found that ligand was also present on the cell surface. With respect to BT-20, such a shift of the peak was not observed, indicating that the ligand was not expressed on the cell membrane.
  • C-1 cells which are one of the cell lines that are considered to express the ligand, are not only bound, but also transformed cells B described in Step 1 of Reference Example 8
  • the following experiment was performed to determine whether the phosphorylation of receptor type 1 tyrosin kinase expressed on the cell membrane surface of a / F3ZFULLFLAG was caused.
  • the C-1 cell prepared by the method described in Example 2 Cell culture supernatant concentrate, C-11 cells themselves, and mouse anti-blood sample collected at the time of antibody titer measurement during monoclonal antibody production described in Reference Example 10 react with receptor tyrosine kinase. And examined whether it could be phosphorylated.
  • Reaction solution 1 Medium (RPMI 1640, 10% FCS, 100 / g Zml mouse IL-13) only;
  • Reaction mixture 2 suspension of 5 ⁇ 10 6 C-11 cells in the medium of reaction mixture 1;
  • Reaction solution 3 A solution obtained by diluting the mouse anti-blood serum described in Reference Example 10 100-fold with the medium of reaction solution 1;
  • Reaction Solution 4 A solution obtained by diluting the mouse antiserum described in Reference Example 10 by 500 times with the medium of Reaction Solution 1;
  • Reaction solution 5 The cell culture supernatant of C-11 cells prepared by the method described in Example 2 was concentrated 50-fold with Centriprep 10 (Amicon, USA). And the solution was exchanged for the medium of Reaction Solution 1.
  • the cells are immediately placed on ice, and the cells containing 2 mM sodium vanadate (Na 3 VOford), which has been cooled in advance, are added.
  • a cell disruption solution was obtained in the manner described.
  • This gel precipitate was subjected to Western blotting according to the method described in Reference Example 8.
  • Gel precipitate 30 ⁇ SDS-PAGE sample buffer was added, and the mixture was subjected to a boiling water bath for 5 minutes in the presence of 2—ME, and 15 ⁇ was passed through one lane for SDS-PAGE.
  • Two sets of PVDF membranes to which the same sample was transcribed were prepared, and one set was a polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing having the target FLAG sequence.
  • the presence of phosphorylation of tyrosine residues It was used for the judgment of nothing.
  • Figure 3 shows a photograph of this Western blot.
  • a and B are the results of the polypeptide B a ZF3 ZFULLFLAG containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the target sequence listing, and C and D are the controls thereof, Ba / This is the result of F 3 CON.
  • Antibody staining was performed with A and C using an anti-phosphorylated tyrosine antibody (UBI, USA), and B and D with Anti-FLAGM2 (Kodak, USA).
  • the number of each lane corresponds to the number of the reaction solution described above.
  • the arrow indicates the position of the polypeptide described in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing having the FLAG sequence.
  • the concentration condition of mouse antiserum was changed, it was not phosphorylated as strongly as co-culture with C-1 cells.
  • the effect of the ligand of the present invention is apparently stronger than that of the ligand of the present invention, but it clearly increases the enzymatic activity of receptor tyrosine kinase and strongly reduces the phosphorylation of tyrosine residues. It is thought to cause a bioactive effect on cells through receptor tyrosine kinase.
  • the ligand was narrow. It can be seen that it is present in the cell culture supernatant, but the 50-fold concentrate from the culture of C-11 cells caused only very weak phosphorylation of tyrosine residues. This is powerful because the amount of ligand in the cell culture supernatant is extremely small and a concentration of about 50-fold concentration does not sufficiently increase the tyrosine kinase activity of the intracellular portion of the receptor type 1 tyrosine kinase. It is unknown whether the ligand has a high activity, which is partially high on the cell surface, but it is presumed that the result was very weak phosphorylation. Was.
  • Example 4 From the results up to Example 4, it is considered that the colon cancer-derived cell line C-11 surely expresses the receptor tyrosine kinase ligand. — PT An attempt was made to purify using an N-linked affinity gel column.
  • the supernatant of C-11 was prepared by the method described in Example 1 and finally collected in an amount of 54 O ml.
  • the concentrated solution obtained in Step 1 was used.
  • the value of BIAc0 ree of this concentrated liquid measured by the method described in Example 2 was 134 RU.
  • the affinity column was prepared using CNBr-activated Sepharose 4B manufactured by Pharmacia, Sweden, according to the attached instruction manual. Finally, an affinity gel in which 4.1 mg of EXIg-PTN was bound to a 3.5 ml gel was produced. The coupling efficiency was 99.6%. A column with a size of 2 cm 2 ⁇ 1 cm was prepared from 2 ml of this gel.
  • the above cell culture supernatant concentrate is passed through the column at a flow rate of 20 m 1 / hr, and then washed with the same flow of PBS (-) at a flow rate of 15 m 1. Eluted with sodium, 0.5 MNaCl (PH 4.0). The eluate was fractionated at a rate of 1 ml, and each fraction was neutralized by adding 200 ⁇ of lMTris-HCl (pH9.5) to each fraction.
  • each column of the column before washing, the washing solution, and the fractionated eluate (in this case, one-fifth dilution) was transferred to Ultraflow by Millipore, USA.
  • the solution was exchanged into the HBS buffer using C 3 LGC (10 K cuts), and the measurement was carried out again with the BIA c 0 re by the method described in Example 2.
  • the column for gel filtration used was Superdex 75 HR10Z30, manufactured by Pharmacia, Sweden, and the separation buffer used was PBS (-) containing 0.02% Tween20. The flow rate was 40 ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ .
  • the molecular weight at the elution position was measured using a molecular weight marker measurement kit LMW manufactured by Pharmacia, Sweden, and gel filtration of the sample was performed. fractionated into ⁇ .
  • the sample thus fractionated in molecular weight was diluted 10-fold with an HBS buffer, and BIAc0 ree was measured.
  • FIG. 5 shows the change in the absorbance of the gel fraction at 214 nm
  • FIG. 6 shows the measurement results of the BIA core of each fraction. From this result, the peak of the ligand binding to the polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in the sequence listing having peaks at the fraction numbers 13 and 14 was found. was detected. In addition, small peaks were similarly observed in the fraction numbers 21 and 22.
  • the fraction between fraction numbers 11 and 12 is 63 000 daltons and the force between 13 and 14 ⁇ 540 000 danoletone , 15 and 16 S 4 3 0 0 Daltons, fraction numbers 13 and 14
  • the molecular weight of the receptor type 1 tyrosine kinase ligand of the present invention having a peak of was determined to be 540,000 soil, 900,000 daltons from the results of gel filtration.
  • the ligand of the present invention was a smear band (shown by the right arrow in FIG. 7) at approximately 42 K daltons. Therefore, the molecular weight of the receptor type 1 tyrosin kinase ligand of the present invention was estimated to be 4150 ⁇ 7500 daltons.
  • the result of gel filtration does not match the molecular weight value of SDS-PAGE, but the estimated molecular weight of gel filtration may differ from the actual substance due to interaction with the gel. It was inferred that 410,000 ⁇ 750 daltons was the molecular weight of the receptor tyrosine kinase ligand of the present invention.
  • active fractions fraction numbers 12 to 15
  • Purification was carried out with an affinity column using a polypeptide containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 in the table.
  • the column was eluted by gravity flow using a small-scale, 150- ⁇ bet volume.
  • the above active fraction fraction numbers 12 to 15 were collected and loaded on the small-scale column described above. After that, washing was performed by flowing 8 times of PBS (-) containing 150% of 0.02% Tween 20 and then washing with 150M of 0.1 M sodium acetate, 0.5%. MNaCl (PH4.0) was flowed four times to fractionate and elute each fraction.
  • the eluate was neutralized by adding 30 ⁇ of lMTris-HCl (pH9.5). In order to confirm the purity of the final purified ligand in this way, each fraction was subjected to Ultrafree C3 LGC (10 K cut from Millipore, USA).
  • the sample buffer used here did not contain 2-ME, was used under non-reducing conditions without heating, and the gel was used using a 15-20% gradient gel.
  • the molecular weight marker LMW KitE manufactured by Pharmacia, Sweden was used.
  • silver staining was performed using a silver staining kit II manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Japan according to the attached staining method.
  • Figure 8 shows the results.
  • one of the three mixtures was one of four hundred and fifty-five ⁇ seven hundred and fifty-five danoleston banding force; fraction number It was confirmed in 1 and 2 that it was purified as a single substance.
  • the above results indicate that the receptor tyrosine kinase ligand of the present invention can be purified by these methods, and a pure product can be obtained.
  • Example 7 The pure product of the ligand purified by the method described in Example 7 was subjected to SDS-PAGE in the same manner as described in Example 5.
  • the polyacrylamide gel, on which the new ligand has been migrated in this way, is used for the protein staining method, Kumasi-Pri Lant Blue, a Wako Pure Chemical Industries, Japan
  • staining was carried out using a Quick CBB kit manufactured in accordance with the attached experimental method, the band of about 420,000 daltons, which is the ligand of the present invention, was stained. It was found that the ligand of the invention contained protein.
  • the polyacrylamide gel prepared in the same manner was detected by PAS staining, which is a specific staining method for sugar chains. That is, the polyacrylamide amide gel on which the new receptor type 1 tyrosine kinase ligand was run was immersed in a 12.5% trichloroacetic acid solution with shaking for 30 minutes. Then, the sample was immersed in distilled water while shaking for 30 seconds, and then immersed in a 3% acetic acid solution containing 1% periodic acid for 50 minutes. Thereafter, washing was performed by shaking well with distilled water. Wash once for 10 minutes I went eight times.
  • PAS staining is a specific staining method for sugar chains. That is, the polyacrylamide amide gel on which the new receptor type 1 tyrosine kinase ligand was run was immersed in a 12.5% trichloroacetic acid solution with shaking for 30 minutes. Then, the sample was immersed in distilled water while shaking for 30 seconds, and then immersed in a ace
  • fuchsin solution (1 g of basic fuchsin (Wako Pure Chemical Industries, Japan) was dissolved in 200 ml of distilled water heated to 60 ° C in a dark place.
  • it was prepared by adding lg of sodium bisulfite and 20 ml of 1N HCl 1.) for about 1 hour to stain.
  • the plate was washed by shaking with a 0.5% sodium sulfite solution for 10 minutes, and this was repeated twice.
  • the band was placed in distilled water and the band was observed.
  • a red band stained with PAS was confirmed to have a molecular weight of about 42,000 daltons. From these results, it was found that the ligand of the present invention contains sugar.
  • the ligand of the present invention was a compound containing a glycoprotein.
  • the solution containing the ligand purified according to the method described in Example 7 was placed on a prospin (manufactured by Applied Biosystems, USA), centrifuged, and the PVDF in the prospin was removed using a special punch. Removed the final note. The final letter was thoroughly washed with a 50% aqueous methanol solution and purified water, and then the N-terminal sequence was determined using a peptide sequencer analyzer. The peptide sensor was analyzed according to the attached instruction manual using Protein 'theta enhancer mode 1492 of ABB Biosystems, Inc. of the United States.
  • amino acids that have undergone some modification such as disulfide-bonded cystine residues or amino acid residues that have been modified with sugar chains, etc., have undergone some modification. It is probable that the sequence could not be determined.
  • a cDNA probe was prepared by a PCR method using an oligonucleotide mixed primer. That is, the mRNA of the C-11 cells cultured under the conditions containing the PMA described in Example 1 NA was prepared, and a mixed primer of sense and antisense 2 O mer was synthesized from the amino acid sequence found in Example 9, RT-PCR was performed, and subcloning was performed to pB1uescript The gene sequence was determined, the amino acid sequence encoded by the gene was compared with the amino acid sequence determined in Example 9, and the amino acid sequence of the ligand was certainly determined. It was confirmed that the cDNA probe partially encoded.
  • RNA separation and purification of mRNA, ie, Po y (A) + RNA, from C-1 cells were performed as follows.
  • the C-11 cells cultured under the conditions of Example 1 were detached with a cell scraper (manufactured by Corning, USA) and washed twice by centrifugation with PBS (-).
  • Cell Number 3 X 1 0 8 pieces of 4 M guanidine-I O Shiane preparative This cell precipitate, 2 0 mM acetate Na Application Benefits um (p H 5. 2), 0. 1 MDTT, 0. 5% N — Suspend in 20 ml of total RNA extraction solution composed of Raurirsarco silka, and completely dissolve and disperse by passing through a 20 G needle manufactured by Terumo of Japan.
  • Centrifugation was performed at 500 g for 20 minutes, and the supernatant was recovered. Next, after adjusting the total volume to 25 ml with the above total RNA extraction solution, centrifugation was performed with 12 ml of 5.7 M cesium chloride and 0.1 MEDTA (pH 80) solution. The mixture was layered on a tube and centrifuged at 250 ° C at 180 ° C. As a result of centrifugation, a precipitate containing total RNA was recovered. Apply 720 ⁇ of TES solution (10 mM Tris (pH 7.4), 5 mM MEDTA, 1% SDS), dissolve by leaving at room temperature for 10 minutes, and dissolve this solution.
  • TES solution 10 mM Tris (pH 7.4), 5 mM MEDTA, 1% SDS
  • the total RNA thus obtained was washed with 70% ethanol, air-dried, and then dissolved in 10 ⁇ l of sterile distilled water, and the absorbance was measured at 260: 1111. 1 ⁇ 1 ⁇ octamer was determined. As a result, it was confirmed that 24 mg of the total RNA was recovered.
  • mRNA that is, Poy (A) + RNA
  • mRNA was isolated from total RNA of C-1 cells obtained by the above method. Separation was performed using an oligo dT column according to the attached instruction using an mRNA purification Kit manufactured by Phanolemasia, Sweden. As a result, 60 ⁇ g of the total RNA 15 / ig of Poly (A) + RNA was recovered.
  • the purified Po1y (A) + RNA was purified using Life Sciences, Inc.'s First—strandc DNAS synthesis Kit (purchased from Takara Shuzo Co., Ltd., Japan). CDNA was synthesized according to the attached instruction manual. That is, 2 ⁇ g of the above Po1y (A) * RNA was diluted to a final body contamination of 16 ⁇ , whereas the oligo d attached to this kit was Apply T (12-18) solution (0.5 yg / fi) or random hexamer (100 ng / ⁇ ) for 10 minutes at 70 ° C. The mixture was allowed to stand, and then left on ice for 10 minutes.
  • the 5X buffer solution supplied with the kit was added for 5 £
  • the RNase inhibitor RN asin solution was 1 ⁇
  • 0.25 ⁇ DTT was 1 ⁇
  • Abiamero Avianmyeloblastosis reverse transcriptase (25 / ⁇ ) solution was added to each of 1 ⁇ , and left at 41 ° C for 60 minutes to synthesize cDNA.Then, at 72 ° C The enzyme was inactivated by leaving it for 10 minutes, and this was used for the next PCR.
  • PCR for preparing a cDNA probe encoding a part of the amino acid sequence of the ligand was performed as follows.
  • amino acid sequence from the N-terminus of the ligand described in SEQ ID NO: 19 to the 5th leucine to 11th asparagine in the amino acid sequence ie, Leu-Gl U- Pro-11 Encodes the amino acid sequence of e-Tyr-Trp-Asn.
  • a 20-mer oligonucleotide mixed-sense primer corresponding to all possibilities of cDNA sequence i.e.
  • Asp-11 e-1 I 20-mer oligonucleotide corresponding to all possibilities of cDNA sequence encoding amino acid sequence of e-Cys-Pro-Lys-VaI Mixed antisense primer that is, the sequence shown in SEQ ID NO: 21 in the sequence listing (5'-AC (TC) TT (ACGT) GG (AG) CA (AGT) AT (AGT) AT (AG) TC-3 ', The above two types of synthetic DNAs having primers 10) were prepared according to the method described in Reference Example 2. Probe production by PCR was performed as follows. Mix two kinds of C-11 cDNA solutions prepared by the above method and use ⁇ ⁇ ⁇ of this mixture to prepare a 10-fold concentration buffer solution (500 mM
  • KC 1 100 mM MT ris — HCl (pH 8.3), 15 mM MgC 12, 0.01% gelatin) 10 ⁇ , d NTPM ixture (Takara Shuzo, Japan) 8 / ⁇ , and Taq DNA polymerase (Ampli Taq: Perkin-Elmer, USA, 5 ⁇ / ⁇ ) 0.5 ⁇ , and the above primer 9 And 10 to a final concentration of 10 and finally add deionized water to bring the total volume to 100 ⁇ , at 95 ° C for 0.5 min at 42 ° C.
  • Taq DNA polymerase Ampli Taq: Perkin-Elmer, USA, 5 ⁇ / ⁇
  • a cycle consisting of 0.5 minute and 72 ° C for 1 minute was taken as one cycle, and this cycle was performed for 5 cycles, followed by 0.5 minute at 48 ° C at 95 ° C.
  • the process consisting of 0.5 min at 72 ° C for 1 minute is defined as 1 cycle, this process is performed for 35 cycles, and finally the PCR is left at 72 ° C for 7 minutes.
  • a portion of this PCR product was subjected to 3% agarose gel electrophoresis, stained with Etch Dumbu Mide (manufactured by Nippon Gene, Japan), and observed under ultraviolet light. It was confirmed that the DNA was amplified.
  • this PCR product was electrophoresed on a 3% agarose gel prepared with low-melting point agarose, stained with ethidium bromide, and then subjected to a band of about 11 Obp under ultraviolet irradiation. And add 3 times the volume of the TE solution to the gel. After heating for 1 minute to completely dissolve the gel, add an equal volume of TE-saturated phenol (Nippon Gene, Japan), and centrifuge at 1500 rpm for 5 minutes to separate the upper layer. Further, the same separation work was performed using a TE-saturated phenol: chlorophonolem (1: 1) solution, and furthermore, a cologloform. The DNA was recovered from the final solution by ethanol precipitation.
  • the recovered DNA is blunt-ended using the DNAB1 unting Kit from Takara Shuzo, Japan, according to the attached instruction manual, and then T4P01 ynuc 1 eotide from Takara Shuzo, Japan Using Kinase, terminal phosphorylation was performed according to the method described in the company's Guide to Genetic Engineering Products (1991-1995 edition).
  • the blunt-ended and phosphorylated PCR product is digested beforehand with the restriction enzyme Eco RV (Takara Shuzo, Japan), and the end is Alka 1ine Phosphatasase from Takara Shuzo, Japan.
  • Eco RV Transcription Reduction enzyme
  • the terminally dephosphorylated PB 1 uescript according to the method described in the Genetic Engineering Product Guide (1994--1995 version) issued by Takara Shuzo Co., Ltd. Ligation was performed using igation Kit Ver 2 according to the attached instruction manual.
  • a cDNA library of C-11 cells was prepared using the PoIyA + RNA purified in Example 10.
  • c DNA preparation is performed by GIBCO in the United States.
  • Scrit IIRNase H was used. Dilute 2 ⁇ g of the PoIyA + RNA purified in Example 10 with 5 mM MTris (pH 7.5) to a final volume force of 6 ⁇ , After standing at 65 ° C for 5 minutes and then on ice for 5 minutes, the following solution was added.
  • cDNA was blunt-ended using a DNAB1 unting Kit manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd. in Japan according to the attached instruction manual, and finally a 20 ⁇ TE buffer was used. Dissolved.
  • a cDNA cloning system manufactured by Amersham in the UK; Igt10, C-11 cells; Lgtl Oc DNA library according to the attached experimental method. was prepared.
  • Thai data one finally fabricated c DNA is (attached to the kit) NM 5 1 4 as a host and were determined using rollers, approximately 1 X 1 0 8 pfu / ⁇ gpoly A + RNA.
  • the cDNA library prepared by the above method was screened by the black hybridization method in the same manner as described in Reference Example 6. Plaques number of the found line bra rie is 4 X 1 0 to five, making the DNA pro one blanking used in disk cleanings is having a DNA sequence set forth in SEQ ID NO: 2: 2 in the sequence listing by PCR and were 32 P labeled with the label-ring method label-ring method described in the same manner as in reference example 6.
  • the clone names were T2, T3, T5, and ⁇ 6.
  • the phage DNA of each clone was purified according to the method described in the above-mentioned compiling, edited by Maniatis et al. These four types of DNAs are digested with the restriction enzyme Ec0RI, and the insert part of the cDNA of the ligand is cut out from ⁇ gt10 by agarol gel electrophoresis, and then agarol gel electrophoresis is performed. When the size was examined at, three bands were confirmed for all clones. Approximately their size of the DDNN AA is TT22 respectively; 3300 000 bbpp, 50 Obp, 180 bp, T3 force; 3 0 bp, 800 bP,
  • the gene sequence was determined using a ring kit.
  • each restriction enzyme site is mapped, and the resulting gene fragment is subjected to subcloning by the above method.
  • Kilo Kiense made by Takara Shuzo in Japan Using a Drilling Mutant kit, a combination of manufacturing a Drilling Mutant in accordance with the attached instruction manual, and transmitting the wire from both directions The sequence was determined.
  • the directions of each gene fragment of the clone are connected to the direction of each gene fragment using the PCR method and the above-described mapping of the phage DNA restriction enzyme sites, and furthermore, those genes.
  • the cDNA obtained by coding for the ligand is a gene fragment of about 500 to 800 bp of each clone in the 5 'direction. , Then a gene fragment of about 300 bp is located, and the remaining gene fragment of about 1500 to 400 bp is located in the 3 ′ direction. Or it becomes.
  • the cDNA having the full length of the present gene sequence is the above-described clone T3
  • the cDNAs should be connected in the same orientation at each restriction enzyme Ec0RI site (about 500 bP).
  • the plasmid prepared by connecting it to the pB1uescript multi-cloning site is called PBS-LIG-FULL, and another vector, PUC 18 (Pharmacia, Sweden)
  • PUCMEKL the plasmid created by subcloning was called PUCMEKL.
  • Example 12 2 mR of ligand by Northern blotting
  • human ulti- ple tissue is a final letter to which mRNA is transcribed in advance.
  • Human Mult iple Tissue Northern Blot II and Human Fetal Mult iple Tissue Northern Blot the DNA sequence of SEQ ID NO: 7 in the sequence listing separated in Example 11 was used.
  • a gene fragment of 46 bP that is, a gene fragment of approximately 300 bP which is cut out with the restriction enzyme EcoRI at the portion encoding the amino acid sequence of the ligand, as described above.
  • the size of the mRNA and the expression organ were examined after 32 P labeling by the method described above.
  • the size of the mRNA is approximately 520b, Only one band was identified.
  • expression organs expression is observed in the heart, brain, placenta, lung, skeletal muscle, kidney, spleen, prostate, testis, ovary, and small intestine of human adult tissues. However, expression was slightly stronger in the kidney. However, no extremely weak or no expression was observed in liver, pancreas, thymus, large intestine, and peripheral blood lymphocytes. In human fetal tissues, expression was observed in the heart, brain, lung, and kidney, but not in the liver.
  • the size of the mRNA was approximately 50%.
  • the expression was 00b, and expression was observed in the heart, brain, spleen, lung, skeletal muscle, and testis, and particularly strong expression was observed in the lung. However, expression was not observed in liver and kidney.
  • a ligand expression vector and a chimera protein expression vector with the ligand were prepared, and the ligand gene was prepared.
  • the morphology and method of expression were raised in 1) to 5).
  • 1) The DNA sequence described in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, that is, the full-length cDNA was transfected into animal cells using an expression vector to form a membrane-bound type containing a signal peptide. And finally expressed on the cell surface as a ligand that does not contain a signal peptide, that is, a form that contains the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 in the sequence listing, and is finally cultured A method for expressing in the supernatant.
  • Expression vectors capable of taking the forms 1) to 5) were prepared using the expression vector pMKITNeo shown in Reference Example 8. The details of the fabrication were in accordance with the same method as that shown in Reference Example 8, and fabricated by using the PCR method or the like.
  • the expression vectors of 1) carapara 5) were prepared, 1) pama p MK Lig FULL FLAG, 2) pMK Lig FULLFLAG, 3) pMK Lig EX, 4) p MKLig EXFLAG, 5) is pMKLig EXIg.
  • the C-11 cells prepared by the method described in 1) were cultured for 1 day in a condition containing 10% FCS, and then replaced with a serum-free medium, and the culture medium was replaced every 4 days. Three times were taken. The same procedure was used to perform gene transfer using an expression vector that did not contain the ligand gene, and used as a control.
  • the two cultures prepared in this way were concentrated 10-fold by the method described in Example 1 and their binding A using a BIA core according to the method described in Example 2.
  • ctivity was measured on EX lg — PTN conjugated chips. As a result, the binding activity was 98 RU in the control, and the binding activity was 310 RU in the ligand-transfected sample.
  • the ligand was purified.
  • the ligand was purified.
  • the amount of purified ligand was visually confirmed based on the results of silver staining on a polyacrylamide gel electrophoresis gel. About three times that of Was.
  • the binding affinity of the purified ligand was measured again using a BIA core, the binding activity was approximately three times higher than that of the control. It was clear that I was working.
  • the ligand can be produced by introducing the gene of SEQ ID NO: 7 into a cell line that does not express or weakly express the ligand. What I can do is clearly better.
  • COS-7 cells transfected with the gene using the expression vector described in 2) were cultured for 4 days in FCS-containing medium, followed by cell disruption by the method described in Reference Example 9. And described in Reference Example 8.
  • Prepare a sample under reducing conditions according to the method perform Western blotting by SDS-PAGE and antibody staining using an anti-FLAG antibody, and obtain a sequence It was examined whether a ligand containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 was expressed on cells.
  • C-1 cells prepared by the method described in 3) were cultured under the conditions of 10% FCS for 1 day after gene transfer, and replaced with a serum-free medium. Three samples were taken every day.
  • the culture supernatant thus prepared is concentrated 10-fold by the method described in Example 1, and the ligand is purified by the same method as described in Examples 5 to 7.
  • a ligand of 410,000 ⁇ 750,000 daltons was purified.
  • the N-terminal amino acid sequence of this purified ligand was determined by the method described in Example 9, it had the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing. Was.
  • the ligand was expressed by introducing at least the gene described in 3) into a cell line that does not express or weakly express the ligand. It was clear that it could be produced.
  • the C _ 1 cells prepared by the method described in 4) were cultured under the conditions of 10% FCS for 1 day after the gene transfer, and replaced with a serum-free medium, and the culture supernatant was replaced for 4 days. Three samples were taken at intervals. The culture supernatant thus prepared was concentrated 10-fold by the method described in Example 1. A sample was prepared from this concentrated solution under non-reducing conditions according to the method described in Reference Example 8, and subjected to Western blotting by SDS-PAGE and an antibody staining method using an anti-FLAG antibody.
  • the ligand containing the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing having the FLAG sequence at the C-terminus shown in 4) above was contained in the culture supernatant.
  • an extremely wide range of the molecular weight from about 20000 to 500,000 daltons was dyed, and especially strong dyed areas were centered at 420,000 daltons. Part and a part centered at 240,000 daltons.
  • the strain having a FLAG sequence at the C-terminal shown in 4) above was used.
  • the C-1 cells produced by the method described in 5) were After the introduction of the cells, the cells were cultured under the conditions of 10% FCS for 1 day, then replaced with a serum-free medium, and the culture was collected three times every 4 days.
  • the culture supernatant thus prepared was concentrated 10-fold by the method described in Example 1.
  • the concentrated solution was subjected to Western blotting by SDS-PAGE and an antibody staining method using a peroxidase-labeled anti-human Ig sheep antibody described in Reference Example 8.
  • two sample preparation conditions were used for SDS-PAGE: a sample under reducing conditions and a sample under non-reducing conditions.
  • the port containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing having the amino acid sequence of the Fc portion of human IgG at the C-terminus shown in 5) above was obtained. It was examined whether the ligand containing the receptor was expressed in the culture supernatant. As a result, under a reducing condition, a band of an extremely wide band having a center of a molecular weight of about 800,000 daltons was stained, and under a non-reducing condition, a band of about 2,000 daltons was obtained. A very wide band was stained. However, since no such band was observed in the culture supernatant of control COS-7 cells, human Ig was added to the C-terminus shown in 5) above.
  • a compound containing a part or all of a polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 or 6 in the sequence listing can be prepared, and a dimer of the compound can be prepared. It has been shown that a complex having a multimeric structure higher than that can be produced.
  • 51 of the culture supernatant was passed through a Protein A Sepharose scalar manufactured by Pharmacia, Sweden, to obtain the same strength as above. The size and flow rate were used. In addition, washing and elution were performed in the same manner.
  • a ligand containing a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing having a FLAG sequence at the C-terminus purified by the above method, and a human at the C-terminus The ligand containing the polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing having the amino acid sequence of the Fc portion of IgG was purified by gel filtration. .
  • the eluate from the affinity column is concentrated and centrifuged to PBS (-) with Centricon 30 manufactured by Amicon of the United States, and gel filtration is performed by Pharmacia, Sweden. Using FPLC system manufactured by the company, the Superose 12 column was used.
  • Lig FLAG-PTN a ligand containing a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing having a FLAG sequence at the C-terminus
  • the amino acid sequence C Ligand containing a polypeptide containing the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 in the sequence listing having the amino acid sequence of the Fc portion of human IgG at the end
  • Purified material Lig Ig-PTN was obtained.
  • Oligopeptide consisting of amino acid sequence Nos. 11 to 37 of the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 7 in the Sequence Listing can be obtained from Applied Biosystems, U.S.A. in a conventional manner. It is prepared by a mosquito synthesizer and conjugated to the horseshoe crab hemosyanin (KLH) (Sigma, USA) with terminal cystine residues, and immunized to rabbits as an immunogen. After measuring the antibody titer, the whole blood is collected, the blood is collected, and the attached handling is performed using an Econopack serum IgG purification kit manufactured by BioRad Inc. of the United States. According to the instructions, an anti-ligand rabbit polyclonal antibody was purified and produced.
  • KLH horseshoe crab hemosyanin
  • Lig FLAG-PTN purified by the method described in Example 14 was used as an immunogen, and in the same manner as described above, rabbits were immunized with an anti-ligand rabbit polyclonal antibody. Produced.
  • mouse monoclonal antibodies were prepared in accordance with the method described in a written document using LigFLAG-PTN purified by the method described in Example 14 as an immunogen. That is, 1 g of Lig FLAG- PTN purified as described above is applied subcutaneously or intradermally to a Ba1b / c mouse (manufactured by Yomoto SLC, Japan). Immunized. After the second immunization, blood was collected from the fundus and an increase in the antibody titer in the serum was observed. After the third immunization, the spleen cells of the mouse were removed, and the mouse myeloma cell line P 3 X Cell fusion was performed with 63 Ag8 (ATCCTIB 9) by the polyethylene glycol method.
  • LigFLAG-PTN purified by the method described in Example 14 as an immunogen. That is, 1 g of Lig FLAG- PTN purified as described above is applied subcutaneously or intradermally to a Ba1b / c mouse (manu
  • Hybridomas are selected in HAT medium (Japan Institute for Immunity and Biological Sciences, Japan), and hybridoma strains producing antibodies that recognize the extracellular part of the ligand in the medium by enzyme-linked immunosorbent assay And a hybridoma-producing strain that produces a mouse monoclonal antibody that specifically recognizes the ligand was established.
  • Example 7 the ligand purified in Example 7 and the cell culture of the transfected COS-7 cells prepared by the methods of 1), 2) and 3) of Example 13 were used.
  • the concentrates of the respective ligands purified by the methods described in Examples 5 to 7 were subjected to Western blotting under the conditions described in Reference Example 8.
  • an anti-Persian Ig sheep antibody manufactured by Amersham, UK was used as the secondary antibody. As a result, it was possible to stain all bands at a broad portion near 420 000 daltons, and it was clarified that all of these antibodies could specifically recognize ligands. .
  • Lig FLAG-PTN and Lig Ig-PTN prepared by the method described in 4) and 5) of Example 13 and prepared by the method described in Example 14 A dot blot was performed using a PVDF membrane manufactured by ioRad according to the attached instruction manual. That is, 5 / x ⁇ of the solution of Lig FLAG-PTN and LigIg-PTN was dropped on PVDF manufactured by BioRad in the United States, air-dried, and then subjected to the Western blotting method described in Example 8. Antibody staining was performed in the same manner as in the above conditions. As a result, it was evident that both were not stained with the control antibody, but were stained with all the purified antibodies.
  • the gene was transfected with the C-1 cells and the method of Example 13-1), particularly for the above monoclonal antibody, and 4 days later.
  • COS-7 cells the expression of ligand on the cell surface was analyzed using a flow site meter EPICS Elite manufactured by Coulter, USA in the same manner as described in Reference Example 10. Staining with the antibody was performed according to the method described in the written literature. The purified monoclonal antibody described above was used as a primary antibody, and a goat anti-mouse Ig FITC label manufactured by Vector Dockton Sons, Inc. of the United States was used as a secondary antibody. As a result, it was confirmed that all of the C-11 cells and about 20% of the transfected COS-7 cells were stained with the above-mentioned monoclonal antibody.
  • the antibody shown in this example was expressed under the conditions of the ligand purified in Example 7, the ligand present on C-1 cells, and the conditions of Example 13 respectively. It was confirmed that the recognized ligand was recognized specifically.
  • Ligand purified in Example 7 and LigFLAG-PTN and LigIg-PTN obtained in Example 14 are reference examples.
  • Reaction solution 1 Medium (RPMI 1640, 10% FCS, 100 / ig / ml mouse IL-13) only;
  • Reaction mixture 2 suspension of 5 ⁇ 10 6 C-1 cells suspended in the medium of reaction mixture 1;
  • Reaction solution 3 Medium of reaction solution 1 containing the ligand purified in Example 7 at a concentration of 500 ⁇ g / m 1;
  • Reaction solution 4 Medium of reaction solution 1 containing the ligand purified in Example 7 at a concentration of 100 g / m 1;
  • Reaction solution 5 Medium of reaction solution 1 containing LigFLAG-PTN at a concentration of gZml;
  • Reaction Solution 6 Medium of Reaction Solution 1 containing Lig FLAG— ⁇ at a concentration of 100 g / ml;
  • Reaction solution 7 Medium of reaction solution 1 containing Lig Ig-PTN at a concentration of 500 g / m];
  • Reaction solution 8 Liglg — Medium of reaction solution 1 containing PTN at lOOg / ml
  • the gel precipitate was subjected to a Westcut by the method described in Reference Example 8.
  • the SDS-PAGE was carried out by adding a SDS-PAGE sample buffer of 30 ⁇ of the gel precipitate, running a boiling water bath for 5 minutes in the presence of 2—ME, and flowing 15 ⁇ into one lane.
  • Two sets of PVDF membranes to which the same sample was transcribed were prepared, and one set was obtained from a polypeptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 in the sequence listing having the target FLAG sequence. And the other was used to determine if the tyrosine residue was phosphorylated.
  • Example 8 As a result, phosphorylation was confirmed in reaction solutions 2, 3, 5, 7, 7 and 8, and the extent of phosphorylation was in reaction solutions 2, 7, and 8 was strong, and reaction solutions 3 and 5 were weaker, and were visually less than about half. Therefore, the ligand purified in Example 8 as well as the co-culture with C-1 cells, the ig FLAG-PTN and LigIg-PTN obtained in Example 14 were It has been shown that it activates the synthase activity of the synkinase, causing phosphorylation of its own tyrosine residue. However, no phosphorylation of such tyrosine residues was observed in the medium alone.
  • Example 8 did not cause phosphorylation under the diluted conditions, that is, the conditions of Reaction Solutions 4 and 6. .
  • LigIg-PTN had sufficient phosphorylation activity even under the condition diluted to the same concentration, and had stronger activity than the former two.
  • reaction solution 9 (compared to the reaction solution 5 with Monodox manufactured by Kodak Corporation in the United States) was used for the Lig FLAG-PTN obtained in Example 14.
  • Reaction solution 10 (reaction solution with the addition of the lonal antibody Anti-FLAGM 2 so as to obtain 100 g Zml).
  • Antibody Anti-FLAGM2 was added to the reaction solution to give a concentration of 100 g / ml), and the reaction was performed using reaction solution 11 (reaction solution 1 in the United States).
  • reaction solution 11 reaction solution 1 in the United States
  • reaction solutions 9 and 10 were sufficiently phosphorylated and had the same level of phosphorylation activity as the reaction solutions 2, 7, and 8. No phosphorus oxidation was observed in the reaction solution 11 of the control.
  • the ligand purified by the method of Example 8 had an activity of phosphorylating a polypeptide containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing.
  • Mosquito The same was true for LigFLAG-PTN and LigIg-PTN obtained in Example 14.
  • the form having the highest activity is the form of LigIg-PTN, and the LigFLAG-PTN is also administered with an anti-FLAG antibody that recognizes the C-terminal part. Since these compounds exhibit similar strong activities, the form having a dimer or multimer structure is the form of a ligand having a stronger activity. What I wanted was clear.
  • these compounds are compounds that can act on cells expressing the type I tyrosine kinase of the receptor to promote the phosphorylation of tyrosine residues and transmit a signal for proliferation.
  • Example 14 Using the ligand purified in Example 7 and Lig FLAG-PTN and Lig Ig-PTN obtained in Example 14 The physiological activity was confirmed.
  • PBS (-) An equal amount of PBS (-) is added to the cord blood to which heparin has been added, and the mononuclear cells in the cord blood are centrifuged using Fikonorenock (Fanore Macia, Sweden). Well separated.
  • the cells separated in this manner are further washed twice by centrifugation in PBS (-) twice, and finally the cell density is 5 ⁇ 10 6 ce 11 s / m 1 in IMDM medium. This was suspended to prepare a cord blood mononuclear cell suspension.
  • the reagents required for Koguchi Nee Assy were previously prepared as follows.
  • a 3% methylcellulose solution was prepared by dissolving methylcellulose (Wako Pure Chemical Industries, Japan) with stirring in boiling water, cooling to about body temperature, and preparing a double-concentration I prepared in advance.
  • An equal amount of MDM medium was added and left at 4 ° C for about 5 days to prepare.
  • the 10% BSA solution was prepared by adding Sigma BSA in distilled water to distilled water and leaving it at 4 ° C for 2 days with gentle stirring. It was prepared by framing with a ⁇ 's Membrane Final Letter (Millipore, USA).
  • a 7.5% sodium bicarbonate solution (manufactured by GIBCO-BRL, USA) was added to this solution at a concentration of 20 ⁇ m ⁇ 2 in 5 ml of a 10% BSA solution.
  • the condition medium (5663C C) is 10% from the human cell line 56637 manufactured by Coning, Inc. of the United States. ? 5 containing 1 ⁇ ⁇ 1 1 16 40 medium in 50 ml for 5 days. It was prepared by filtration through a 22 ⁇ membrane finoletter (Millipore, USA).
  • reaction solution 2 (600 ⁇ H of 5637 CM), reaction solution 3 (900 ⁇ g of the ligand purified in Example 7), reaction solution 4 (Example 14 And the reaction solution 5 (Liglg—PTN obtained in Example 14 is 300 / ig), respectively, of the Lig FLAG-PTN obtained in the above, and the final volume.
  • IMDM medium was added so that the volume became 1.8 ml.
  • reaction solution 1 was 0 and 0, reaction solution 3 was 7 and 10, reaction solution 4 was 15 and 12, reaction solution 5 was 55 and 68, and reaction solution was 5 and 68.
  • the number 6 was 63 and 75, and the number of reaction solutions 7 was 80 and 89.
  • the colony of the reaction solution 7 was about 20 to 50% larger than that of the other reaction solutions, as judged visually.
  • the following experiment was performed to examine the effect of the ligand on the growth of blood cells in a liquid medium.
  • cord blood mononuclear cells expressing the receptor type 1 tyrosine kinase used in the present application were used.
  • the cells were stained with the 38 antibody described in Reference Example 10, and a FACSV antage (Vectin Deckinson, USA) was used.
  • the cells were analyzed and separated according to the instruction manual attached.
  • receptor type 1 tyrosine kinase was expressed in about a few percent of bone marrow mononuclear cells, and these cells were weakly positive for CD34, a marker for hematopoietic stem cells. , C — Kit positive cells.
  • cord blood mononuclear cells were also expressed.
  • bone marrow and cord blood mononuclear cells were treated with 100 ng / m 1 stem self-actor (International, Inc., USA) to obtain 10% fetal bovine serum (ICN Japan, Japan).
  • Lee scan co full modification da behenate Tsu co medium containing (US, GIBCO-BRL Inc.) at 1 X 1 0 7 ce 1 1 s / 1 5 ml in the culture is performed when re ceptor first die tyrosinate Nkinaze expressing cells And the proportion of the tyrosin kinase-expressing cells is increased by about 10 times or more in the culture for about one week as compared to before the culture. After one week of culture under the above conditions, to separate cells expressing the tyrosine kinase at FACSV antae e Was. Similarly, the cells expressing the tyrosine kinase before culturing were isolated in the same manner.
  • the separated cells were cultured in the presence or absence of the ligand, and the increase in the number of cells was examined.
  • the culture conditions were as follows: 1 ng / m 1 of Interlokin 3 (Intagen, USA) and 2 Unit / ml of erythropoietin (Japan) And Chugai Pharmaceutical Co., Ltd.).
  • 500 ng / m 1 of Lig Ig — PTN and 5 g of anti-human Ig GF c goat antibody prepared by the above method were added.
  • the number of cells increased to about 1.76 ⁇ 10 5 ce 11 s / 6 m 1 approximately 5-fold in the ligand presence section, and increased to 7.0 in the comparison section.
  • the new receptor pig type 1 tyrosine kinase ligand has a 54% homologue with LERK-2, a known molecule, and is supposed to have the same effect as the ligand. The effect on the receptor was compared.
  • the LERK-2 gene was obtained as follows. That is, based on the gene sequence described in the paper of Beckmann et al. (EMBO J, 13, 3757-3762, 1994) or in the specification of W094Z113384, the sequence in the sequence listing is used. No. 23 (corresponding to the sequence of the sense strand 20 bases from the gene sequence 29 bases upstream from the first methionine encoding amino acid of LERK-2) and SEQ ID Nos.
  • LERK corresponds to the sequence of the 23-base antisense strand from the gene sequence upstream of the 23 base upstream of the termination codon to the termination codon of the amino acid sequence coding portion of LERK-2)
  • oligonucleotide having the gene sequence of SEQ ID NO: 1 as a primer, and using human placenta cDNA (Ciontech, USA) as a template the PCR method described above was used to generate the gene. Lone link.
  • the LERK-2 gene isolated in this manner was purified using a method completely similar to that described in Examples 13 and 8.
  • a LERK-2 recombinant protein expression vector was constructed in the same manner as the ligand, produced by gene transfer, and further purified from the cell culture supernatant by the method described in Reference Example 9. And purified.
  • These expression vectors are the extracellular portion of LERK-2, that is, the portion up to the amino acid at position 237 of the amino acid sequence of LERK-2 described in Beekmann et al., Supra.
  • the molecules are LERK-2Ig-PTN and LERK-2FLAG-PTN.
  • the calculation method was calculated in accordance with the computer software BIA eva 1 ation 2.1 attached to BIA c0 re and the harmful explanation of its handling.
  • K d values of ⁇ Ri cancer de is 1.
  • LERK- 2 is 2 3 X 1 0- 9 M 1 . 3 5 X 1 0- 7 M der Li, the Li cancer de The LERK- 2 The ability to bind approximately 100 times as much as possible was clearly demonstrated.
  • Example 16 and Reference Example 8 The results are shown in FIG.
  • 1 was a control, 2 lig Ig — PTN, 100 ng / m 1 and 100 ⁇ g / ml of anti-human Ig GF c goat antibody manufactured by Organontechniki, USA 1 ⁇ g Zml, 3 ⁇ g ig_PTN, 1 ⁇ g / m1 with anti-human Ig GFc goat antibody manufactured by Organon Techni Riki, USA 1 O jug / m 1, 4 LERK — 2 Ig — PTN, 1 OO ng / ml, 1 ⁇ g / m 1, 5 of anti-human Ig gc goat antibody manufactured by Organontech Niki, USA is LERK-2 I g — PTN, 1 ⁇ g / m ⁇ against anti-human Ig GF c 1 4 1
  • the antibody was added to each of I 0 jug / ml and reacted with the reaction solution described in Example 16 to carry out the reaction.
  • a in Fig. 10 is stained with antiphosphorylated tyrosine monoclonal antibody (UBI, USA), and B is stained with anti-FLA GM2 monoclonal antibody (Kodak, USA).
  • the film was printed on the X-ray film under the conditions of Example 8.
  • the tyrosin kinase that has been blotted from the molecular weight is indicated by an arrow.
  • LERK-2 does not have the physicochemical properties possessed by the resebuta-type tyrosine kinase ligand of the present application, and thus does not have the physiological action as shown in the present application.
  • Specific receptor involved in differentiation and proliferation of undifferentiated blood cells Specific receptor type 1 binds to the extracellular portion of tyrosine kinase, activates the tyrosine kinase enzyme activity of the intracellular portion, and activates the tyrosine kinase. Since the ligand of the present invention that causes oxidation and the complex containing the ligand have an action of promoting the differentiation and proliferation of undifferentiated blood cells, they can enhance blood-producing stem cells such as leukemia and bone marrow transplantation. It can be used for research and treatment of problems related to undifferentiated blood cells.
  • Organism name human
  • Organism name human
  • Lys lie Leu Ala Se r Va 1 Gin His Met Lys Se r Gin Ala Lys Pi Gly
  • Sequence type c DNA to mRNA, and amino acid
  • Organism name human
  • TTC TAC AAA AAG TGC GCC CAG CTG ACT CTG AAC CTG ACT CGA TTC CCG 1033 Phe Tyr Lys Lys Cys Ala Gin Leu Tin Va 1 Asn Leu Thr Arg Phe Pro
  • Ser r Se Leu H is Leu Glu Trp Ser Ala Pro Leu Glu Ser Gly Gly Arg SKI OVO ⁇ :) ⁇ 33;) 030 003 V10 9V3 010 91D :) VI 33V DDO VOO OOD OVV 013 o S 0
  • GGC CAC TGG CTT CGG GCC ATC AAA ATC GGA AGA TAC GAA GAA ACT TTC 3193 Gl Glu Trp Leu Arg Ala lie Lys Met Gly Arg Tyr Glu Glu Se Phe
  • Organism name human Sequence: Lys Ser lie Va 1 Leu Glu Pro lie
  • Organism name human
  • Lys Ser lie Va 1 Leu Glu Pro lie Tyt Trp Asn Ser Ser Asn Ser Lys
  • Gin Thr ⁇ ⁇ l Ala Met Lys lie Leu Met Lys Va 1 Gly Gin Asp Ala Ser 130 135 140 1
  • Organism name human
  • Lys Ser lie Val Leu C 1 u Pro lie Ty r Tr p Asn Ser Ser Asn Ser Lys
  • Th r lye Lys Lys G I u Asn Th r Pro Leu Leu Asn Cys A I a Lys Pro Asp 65 70 75 80
  • Sequence type c DNA to m RNA, and amino acid
  • Organism name human

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Description

発明の名称
新規な リ セブター型チロ シンキナーゼリ ガン ド
発明の背景
技術分野
本発明は新規な リ セブタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドに 関する。 更に詳細には、 本発明は、 血液未分化細胞の分化及 び増殖に関与する特定の リ セプター型チロ シンキナーゼの細 胞外部分に結合して、 その細胞内部分のチロシンキナーゼ酵 素活性を賦活化し、 該チロ シンキナーゼの リ ン酸化を引き起 こす新規な リ セプター型チロシンキナーゼ リ ガン ドに関する。 本発明はまた、 上記の新規な リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドと、 該リ ガン ド及び該リ ガン ド以外の化合物からな る群から選ばれる少なく と も 1 種とからなる複合体 ; 該リ ガ ン ドをコ一ドする D N A ; 該リ ガン ドの遺伝子工学的製造方 法 ; 及び該リ ガン ドを特異的に認識する抗体に関する。
従来技術
ヒ 卜 の血液中には多種類の細胞がぁ リ 、 それぞれが重要な 役割を担っている。 例えば、 赤血球は体内での酸素運搬を、 血小板は止血作用を、 白血球は免疫系を構成して感染を防御 している。 これらの多様な細胞は骨髄中の造血幹細胞に由来 する。 造血幹細胞は体内の種々の造血因子や環境要因によ り 影饗を受け、 各種血液細胞、 破骨細胞、 肥満細胞などに分化 する こ とが近年明ら力、にされてきた。 こ の造血因子と して、 赤血球への分化についてはエ リ ス ロポエチン ( E P O ) が、 白血球への分化については顆粒球コ ロニ一刺激因子 ( G — C S F ) が、 血小板産生細胞である巨核球への分化については 血小板増殖因子 (m p 1 - L ) が発見され、 前者の 2つは現 在すでに臨床応用がなされている。 しかし、 造血幹細胞を含 む骨髄細胞、 末梢血細胞、 膦帯血細胞等の血液未分化細胞の 血液細胞への分化及び增殖 (pro l i f era t ion and d i f f erent i at ion) のメ カニズムについては、 未だ不明な点が多い。
タ ンパク質中に存在するア ミ ノ酸であるチロ シンを特異的 に リ ン酸化する酵素であるチロ シンキナ一ゼは、 細胞外から 細胞内へのシグナル伝達、 さ らに細胞核内における遺伝子の 転写調節を司る重要な物質である。 近年の研究から、 チロ シ ンキナーゼ及びそのチロ シンキナーゼ酵素活性を賦活化する 活性化因子が、 動物、 昆虫の発生や分化に大き く 関わってい る こ と が明らかになつてお リ 、 血液未分化細胞の分化、 増殖 においてもチロ シンキナーゼ及びその活性化因子が大き く 関 与している と考えられる。
チロ シンキナーゼの生理活性部位は約 2 5 0個のア ミ ノ酸 残基から構成されている。 また、 チロ シンキナ一ゼ群のア ミ ノ酸配列の中には、 きわめてよ く 保存された配列があ り (Hanks et a 1. Sc ience 241: 42 , 1988 ) 、 保存されたア ミ ノ酸配列に対応する D N A配列を設計し、 R T (Reverse Transcr i pt ion) 一 P C R法のプライマーと して利用すれば、 新たにチロ シンキナーゼ遺伝子断片を得る こ と ができ る
(Wi 1 ks . Methods in Enz ymo 1 ogy 200: 533, 1991 ) 。
リ セブタ一型チ口 シンキナーゼの一種であ り 血液未分化細 胞の表面に発現している c 一 k i t は、 肥満細胞増殖因子で あ リ 且つ血液未分化細胞の増殖因子の 1 つであるステムセル ファ ク ター ( S C F ) が、 その細胞外部分に結合する こ と に ょ リ活性化される こ とがわかってぉ リ (Wi t t e. Ce l l 63 : 5, 1992 ) 、 該リ セブター型チロ シンキナーゼ c 一 k i t を介し て細胞の分化が制御されている。
また、 リ セプタ一型チロ シンキナーゼである E L Kは、 リ ガン ドである L E R K— 2 (Bee km ann e t aし, EMBO J . 13: 3757 , 1994; Fletche r e t aし, Oncogene 9: 32 1 , 1994; 国 際出願公開第 W 0 9 4 Z 1 1 3 8 4 号を参照) によ リ活性化 される こ とが分かっている。
発明の概要
本発明者らはこれまでに、 血液未分化細胞の分化及び増殖 に関わリ 、 上記した リ セプター型チロ シンキナーゼ c 一 k i t と は異なる新規な リ セプター型チロ シンキナーゼ遺伝 子を、 ヒ ト巨核芽球白血病細胞株 U T — 7 からク ローニング し、 その全塩基配列を決定した。 そ して、 該リ セプタ一型チ 口 シンキナーゼの遺伝子工学的産生方法を確立した 〔国際出 願公開第 W 0 9 5 / 1 5 3 8 6 号を参照 (こ の リ セプター型 チロ シンキナーゼの塩基配列及びア ミ ノ 酸配列と実質的に同 じと考えられる配列は、 Bennet t el a 1. , J . Β i ο 1. Ch em. , 269, 14211 - 14218·, 1994 にも記載されている) 〕 。
一般に、 リ セプター型チロ シンキナーゼに対する リ ガン ド は、 或る リ セプター型チロ シンキナーゼの細胞外部分に特異 的に結合して、 その細胞内部分においてチロ シンキナーゼ酵 素活性を賦活化し、 該チロ シンキナーゼの リ ン酸化を引き起 こす性質を有する物質と して規定され、 通常、 1 種類の リ セ ブター型チロ シンキナーゼには対応する 1 種類の リ ガン ドが 生体内に存在する。 また、 リ セプタ一型チロ シンキナーゼの 発現している臓器、 またその中で発現している特定の細胞、 及びなんらかの刺激による発現変化を、 該 リ セプター型チロ シンキナーゼのアンチセンスオ リ ゴヌ ク レオチ ドを利用 した イ ンサイチュー ( in s i tu) ハイブリ ダィゼーシ ヨ ン、 ノ ザ ンブロ ッ トまたは抗体等を利用 した染色法にて検出するこ と によ リ 、 その リ ガン ドが作用する体内での部位及び細胞が特 定でき る こ とから、 リ ガン ドが有する生理作用をある程度推 定する こ とが可能である。
本発明者らが先に発見した リ セプター型チロ シンキナーゼ は、 参考例 7 に記載したよ う に、 未分化な血液由来細胞株が 刺激物質によ リ 分化して増殖能力を失う と 、 その m R N Aの 発現が認められなく なる。 従って、 この リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼが、 特に未知の血液未分化細胞の分化 · 増殖因子 の リ セブタ一である こ とが推察される。 そこで、 本発明者ら は、 こ の リ セブター型チロ シンキナーゼの細胞外部分に特異 的に結合して、 その細胞内部分においてチロ シンキナーゼ酵 素活性を賦活化し、 該チロ シンキナーゼの リ ン酸化を引き起 こす物質 ( リ ガン ド) を発見すべく 、 鋭意研究を行った。 そ の結果、 本発明者らが先に開示した、 添付の配列表の配列番 号 1 のア ミ ノ 酸配列を含有する リ セブタ一型チ口 シンキナー ゼポリ ペプチ ドの細胞外 ドメ イ ンと特異的に結合し、 血液未 分化細胞の増殖を促進する、 新規化合物 ( リ ガン ド) の発現 細胞の同定に成功 し、 さ らにその発現細胞から該リ ガン ドを 精製し、 単離した。 そ して、 該リ ガン ドのァ ミ ノ末端 ( N末 端) のア ミ ノ酸配列を決定し、 このア ミ ノ酸配列を基にブラ イマ一を作製して、 P C R法にて c D N Aプローブを作製し 全長のア ミ ノ酸配列をコー ドする c D N Aを単離し、 この c D N Aを用いて該 リ ガン ドの発現細胞を作製し、 更にこの リ ガン ドを単離した。 本発明の リ セブタ一型チロ シンキナ一ゼ リ ガン ドは、 血液未分化細胞の増殖を有意に促進した。 また 上記の配列番号 1 で表わされる、 ア ミ ノ酸配列を含有する リ セプタ一型チ口 シンキナーゼポリ ぺプチ ドの細胞外 ドメ ィ ン に、 他の既知の リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドがほ とんど結合しないのに較べ、 本発明の リ セプター型チロ シン キナーゼ リ ガン ドは極めて強く 結合 して該チロ シンキナ一ゼ の リ ン酸化を引き起こ した。 こ の よ う に、 本発明の リ セブタ 一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドは、 配列番号 1 のア ミ ノ酸配 列で表わされる、リ セブタ一型チ口 シンキナーゼポ リ ぺプチ ド の細胞外 ドメ ィ ンに結合して細胞内におけるチロ シンキナ一 ゼ活性を賦活化する。 従って、 本発明の リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼリ ガン ドは、 血液未分化細胞の分化及び増殖を有 意に促進する因子の 1 つである。 また、 本発明者らは更に、 本発明の リ ガン ドの 1 分子以上と異種タ ンパク質と の複合体 又は本発明の リ ガン ドの 2分子以上からなる複合体 ( 2 量体 又はそれ以上の多量体) が、 該リ ガン ド 1 分子の生理活性と 同等又はそれ以上の活性を有する こ と を見い出 した。 また更 に、 上記の新規な リ セブタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドを 特異的に認職して結合する抗体を作製した。 本発明は、 上記 の知見に基づき完成したものである。
従って、 本発明の 1 つの目的は、 血液未分化細胞の分化に 関わる特定の リ セプター型チロ シンキナーゼに特異的に結合 して、 そのチロ シンキナーゼ活性を賦活化する新規な リ ガ ン ド、 及びそれをコー ドする D N Aを提供する こ と にある。 本発明の他の 1 つの目的は、 上記の リ セブタ一型チロ シン キナーゼ リ ガン ドと 同等又はそれ以上の生理活性を有する と こ ろの、 該リ ガン ドの 1 分子以上と異種タ ンパク質との複合 体、 或いは該 リ ガン ドの 2分子以上からなる複合体を提供す る こ と にある。
本発明の更に他の 1 つの 目的は、 本発明の リ ガン ドの精製 に有利に用いる こ と のでき る、 該 リ ガン ドに特異的に結合す る抗体を提供するこ と にある。
本発明の更に他の 1 つの目的は、 本発明の リ ガン ドの遗伝 子発現の確認や、 細胞內における遺伝子発現の調整に有利に 用いる こ と のでき る、 センス D N A断片及びア ンチセ ンス D N A断片並びにそれらの誘導体、 又、 セ ンス R N A断片及び ア ンチセ ンス R N A断片並びにそれらの誘導体を提供するこ と にある。
本発明の上記及びその他の諸目的、 該特徴な らびに諸利益 は、 添付の配列表を参照 しながら述べる次の詳細な説明及び 請求の範囲の記載から明 らかになる。
配列表の簡単な説明
配列表において :
配列番号 1 のア ミ ノ酸配列は、 本発明の リ ガン ドが特異的 に結合する リ セブタ一型チロ シンキナ一ゼの、 シグナルぺプ チ ドを除いた細胞外 ドメ イ ンの配列でぁ リ 、 配列番号 3 に示 した該 リ セプタ一型チロ シンキナーゼの全ア ミ ノ酸配列のァ ミ ノ酸番号第 1 〜 5 2 2番に相当 してお り ;
配列番号 2 のア ミ ノ酸配列は、 本発明の リ ガン ドが特異的 に結合する リ セブタ一型チ口 シンキナーゼの、 シグナルぺブ チ ドを除いた、 細胞外 ドメ イ ン、 膜透過 ドメ イ ン及び細胞内 ドメ イ ンの全 ドメ イ ンの配列でぁ リ 、 配列番号 3 に示 した該 リ セブタ一型チロ シンキナーゼの全ア ミ ノ酸配列のア ミ ノ酸 番号第 1 〜 9 7 2番に相当 してぉ リ ; 配列番号 3 は、 本発明の リ ガン ドが特異的に結合する リ セ プタ一型チロ シンキナーゼの全ア ミ ノ酸配列、 及び該 リ セプ ター型チロ シンキナーゼの全 c D N A配列でぁ リ ;
配列番号 4 は、 本発明の リ ガン ドの N末端側の 8 ア ミ ノ酸 残基の配列でぁ リ 、 配列番号 7 に示した本発明の リ ガン ドの 全ア ミ ノ酸配列のア ミ ノ酸番号第 1 〜 8番に相当 してぉ リ ; 配列番号 5 は、 本発明の リ ガン ドの、 シグナルペプチ ドを 除いた細胞外 ドメ イ ンの配列であ リ 、 配列番号 7 に示した本 発明の リ ガン ドの全ア ミ ノ酸配列のア ミ ノ酸番号第 1 〜 1 9 5番に相当 してぉ リ ;
配列番号 6 は、 本発明の リ ガン ドの、 シグナルペプチ ドを 除いた、 細胞外 ドメ イ ン、 膜透過 ドメ イ ン及び細胞内 ドメ イ ンの全 ドメ イ ンの配列であ リ 、 配列番号 7 に示した本発明の リ ガン ドの全ア ミ ノ酸配列のア ミ ノ酸番号第 1 〜 3 0 8番に 相当 してお り ;
配列番号 7 は、 本発明の リ ガン ドの全ア ミ ノ 酸配列及び全 c D N A配列でぁ リ ;
配列番号 8 は、 参考例 2 で使用するセ ンスブライマ一の塩 基配列であ リ ;
配列番号 9 は、 参考例 2 で使用するアンチセンスプライマ —の塩基配列でぁ リ ;
配列番号 1 0は、 参考例 8 で使用するブライ マ一 1 の塩基 配列であ リ ; 配列番号 1 1 は、 参考例 8 で使用するプライマー 2 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 2 は、 参考例 8 で使用するプライマ ー 3 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 3は、 参考例 8 で使用する塩基配列及びそれが コ ー ドするオリ ゴぺプチ ド F L A Gのア ミ ノ酸配列でぁ リ ; 配列番号 1 4 は、 参考例 8 で使用するブライマ一 4 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 5 は、 参考例 8 で使用するプライマ一 5 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 6 は、 参考例 8 で使用するブライマ ー 6 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 7 は、 参考例 8 で使用するブライマ ー 7 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 8 は、 参考例 8 で使用するプライ マ ー 8 の塩基 配列であ リ ;
配列番号 1 9 は、 実施例 9 でペプチ ドシークェンサ一によ リ 決定された、 本発明の リ ガン ドの N末端の配列であ り 、 配 列番号 7 に示した本発明の リ ガン ドの全ア ミ ノ 酸配列のア ミ ノ 酸番号第 1 〜 4 8番に相当 してぉ リ ;
配列番号 2 0 は、 実施例 1 0 で使用するプライマ一 9 の塩 基配列であ り ;
配列番号 2 1 は、 実施例 1 0で使用するプライマ一 1 0の 塩基配列でぁ リ ;
配列番号 2 2は、 実施例 1 0で作製する c D N Aプローブ の塩基配列及びそれがコー ドするア ミ ノ 酸配列でぁ リ ; 配列番号 2 3は、 実施例 1 9で L E R K— 2遺伝子のク ロ 一二ングに使用するセンスプライマーでぁ リ ; そ して
配列番号 2 4は、 実施例 1 9で L E R K— 2遺伝子のク ロ —エングに使用するアンチセンスプライマ一である。
なお、 配列番号 1 〜 4及び 7に表わされた各ア ミ ノ酸配列 の左端及び右端はそれぞれ N末端及び C末端であ り 、 又、 配 列番号 4〜 7 に表わされた塩基配列の左端及び右端はそれぞ れ 5 ' 末端及び 3 ' 末端である。
図面の簡単な説明
図 1 は、 実施例 2 における、 C 一 1 細胞 (未刺激) の細胞 上清中の リ ガン ドのチ口 シンキナーゼへの結合活性の測定結 果を示すグラ フでぁ リ ;
図 2 は、 実施例 3 におけるフ ローサイ ト メ一ターによる本 発明の リ ガン ドを発現している細胞の蛍光ピークの測定結果 を示すグラ フでぁ リ ;
図 3 は、 実施例 4 における リ ン酸化ア ツセィ によ る本発明 の リ ガン ドを発現している細胞のウェス タ ンブロ ッ トの写真 であ り ;
図 4 は、 実施例 5 において、 1 次精製された本発明の リ ガ ン ドを電気泳動した結果を示す写真であ リ ;
図 5 は、 実施例 6 におけるゲル濾過による ク ロマ ト グラフ ィ一パターンを示すグラフでぁ リ ;
図 6 は、 実施例 6 におけるゲル濾過によ る分離液の各画分 の リ ガン ドの結合活性の測定結果を示すグラ フでぁ リ ;
図 7 は、 実施例 6 において、 ゲル濾過にょ リ精製された本 発明の リ ガン ドを電気泳動 した結果を示す写真であ リ ;
図 8 は、 実施例 7 において最終的に精製された本発明の リ ガン ドを電気泳動した結果を示す写真でぁ リ ;
図 9 は、 実施例 1 9 において、 本発明の リ ガン ドと L E R K— 2 の リ ガン ド結合活性を比較 した結果を示すグラ フであ り ;そ して 図 1 0 は、 リ ン酸化活性について本発明の リ ガン ドと L E R K— 2 ·と を比較したウェスタ ンブロ ッ トの写真を示す。
発明の詳細な説明
本発明の 1 つの態様によれば、 リ セプター型チロ シンキナ ーゼ活性を有し、 且つ、 配列表の配列番号 1 及び 2 からなる 群よ リ選ばれるア ミ ノ酸配列を含有する単離されたポ リ ぺプ チ ドと 、 該ポ リ ペプチ ドの、 リ セプター型チロ シンキナ一ゼ 活性を有する相同変異体とへの結合能を有し、 ポ リ ア ク リ ル ア ミ ドゲル電気泳動で測定した分子量が少なく と も 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンでぁ リ 、 ク マシ一ブ リ リ ア ン ト ブルー 染色反応を受け得る こ と を特徴とする単離された化合物が提 供される。
また、 本発明の他の 1 つの態様によれば、 配列表の配列番 号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一 部を含有してなる単離された化合物が提供される。
また、 本発明の他の 1 つの態様によれば、 配列表の配列番 号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一 部を含有する化合物と 、
配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一部を含有する化合物の少なく と も 1 種と 、 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポリ べ プチ ドの少なく と も一部を含有する化合物以外の化合物から なる群から選ばれる少なく と も 1 種、 とからなる複合体が提供される。
また本発明の更に他の 1 つの態様によれば、 配列表の配列 番号 6 のアミ ノ酸配列を含有するポリペプチ ドの少なく と も 一部をコー ドする単離された D N Aが提供される。
また本発明の更に他の 1 つの態様によれば、 配列表の配列 番号 6 のアミ ノ酸配列を含有するポリべプチ ドの少なく と も 一部を含有してなる単離された化合物の製造方法に して :
( a ) 該ポリペプチ ドの少なく と も一部をコー ドする D N Aを複製可能な発現ベク ターに連結して、 該 D N Aが、 該 複製可能な発現べク タ一に発現可能に組み入れられてなる複 製可能な組換え D N Aを得て、
( b ) 真核細胞又は原核細胞を該複製可能な組換え D N Aで形質転換して、 形質転換体を形成し、
( c ) 該形質転換体を親細胞と しての該真核細胞又は原 核細胞から選別し、
( d ) 該形質転換体をインキュベー トするこ とによ リ 、 形質転換体に該 D N Aを発現させて、 該ポリべプチ ドの少な く と も一部を含有してなる化合物を生産させ、 そして
( e ) イ ンキュベー ト された形質転換体から該化合物を 単離する、
ことを特徴とする方法が提供される。
また本発明の更に他の 1 つの態様によれば、 上記した本発 明の化合物、 又は配列表の配列番号 5のアミ ノ酸配列を含有 するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部を含有する化合物を特異 的に認識する抗体が提供される。
次に、 本発明の理解を容易にするために、 まず、 本発明の 基本的な特徴及び好ま しい態様を列挙する。
1 . リ セブター型チロ シンキナーゼ活性を有し、 且つ、 配列 表の配列番号 1 及び 2からなる群よ リ選ばれるア ミ ノ酸配列 を含有する単離されたポリ ペプチ ドと 、 該ポ リ ペプチ ドの、 リ セプタ一型チロ シンキナーゼ活性を有する相同変異体とへ の結合能を有し、 ポ リ ア ク リ ルア ミ ドゲル電気泳動で測定し た分子量が少なく と も 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンでぁ リ クマシ一プ リ リ アン トブルー染色反応を受け得る こ と を特徴 とする単離された化合物。
2 . リ セブタ一型チロ シンキナーゼ活性を有し、 且つ、 配列 表の配列番号 2 のア ミ ノ酸配列を含有する単離されたポ リ べ プチ ド、 又は該ポ リ ペプチ ドの、 リ セプタ一型チロ シンキナ ーゼ活性を有する相同変異体を発現した細胞に反応させる と 該ポ リ べプチ ドの少なく と も 1 個のチロ シン残基を リ ン酸化 させる特性を有する項目 1 に記載の化合物。
3 . 配列表の配列番号 4 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ペプチ ドを包含する項目 1 に記載の化合物。
4 . 配列表の配列番号 4 に記載のア ミ ノ酸配列が該ポ リ ぺプ チ ドのア ミ ノ 末端に位置する項目 3 に記載の化合物。
5 . ク マ シ一ブ リ リ ア ン ト ブルー染色反応と P A S染色反応 の両方を受け得る項目 1 に記載の化合物。
6 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプ チ ドの少なく と も一部を含有してなる項目 1 に記載の化合物,
7 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少な く と も一部である項 目 6 に記載の化合物。
8 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプ チ ドの少なく と も一部を含有してなる単離された化合物。
9 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5 のア ミ ノ酸配列を含有するポリ ペプチ ドの少な く と も一部である項 目 8 に記載の化合物。
1 0 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの少なく と も一部を含有する化合物と 、
配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一部を含有する化合物の少なく と も 1 種と 、 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの少な く と も一部を含有する化合物以外の化合物から なる群から選ばれる少なく と も 1 種、
とからなる複合体。
1 1 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有する ポ リ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5 のァ ミ ノ酸配列を含有するポリ べプチ ドの少なく と も一部である 項目 1 0に記載の複合体。
1 2 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポリ べ プチ ドの少なく と も一部をコー ドする単離された D N A。
1 3 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有する ポリ ペプチ ドの少な く と も一部が、 配列表の配列番号 5のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少な く と も一部である 項目 1 2 に記載の化合物 D N A。
1 4 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ ブチ ドの少なく と も一部を含有してなる単離された化合物の 製造方法に して :
( a ) 該ポリ ペプチ ドの少な く と も一部をコー ドする D N Aを複製可能な発現ベク ターに連結して、 該 D N Aが、 該 複製可能な発現べク タ一に発現可能に組み入れられてなる筏 製可能な組換え D N Aを得て、
( b ) 真核細胞又は原核細胞を該複製可能な組換え D N Aで形質転換して、 形質転換体を形成し、
( c ) 該形質転換体を親細胞と しての該真核細胞又は原 核細胞から選別 し、
( d ) 該形質転換体をイ ンキュベー トする こ と によ リ 、 形質転換体に該 D N Aを発現させて、 該ポ リ べプチ ドの少な く と も一部を含有してなる化合物を生産させ、 そ して
( e ) イ ンキュベー ト された形質転換体から該化合物を 単離する、
こ と を特徴とする方法。
1 5 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有する ポリ ペプチ ドの少な く と も一部が、 配列表の配列番号 5のァ ミ ノ酸配列を含有するポリ べプチ ドの少なく と も一部である 項目 1 4に記載の方法。
1 6 . 項目 1 に記載の化合物、 又は配列表の配列番号 5のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一部を含有 する化合物を特異的に認識する抗体。
1 7 . 配列表の配列番号 7の塩基配列の少なく と も 1 2個の 連続した塩基配列を含有するセ ンス D N A、 該セ ンス D N A に相補的なアンチセ ンス D N Aからなる群よ リ選ばれる単離 された D N A断片、 及び該センス D N A及び該ア ンチセ ンス D N Aを、 それぞれ、 メ チル化、 メ チルフ ォ ス フ ェー ト化、 チォフォ ス フ エ一ト化又は脱ア ミ ノ化する こ と によ リ 得られ る 、 該センス D N A及び該ア ンチセンス D N Aの誘導体から なる群よ リ選ばれる単離された D N A断片。
1 8 . 配列表の配列番号 7の塩基配列に相補的な少なく と も 1 2個の連続した塩基配列を含有するア ンチセ ンス R N A、 該アンチセンス R N Aに相補的なセンス R N Aからなる群よ リ選ばれる単離された R N A断片、 及び該ア ンチセ ンス R N A及び該セ ンス R N Aを、 それぞれ、 メ チル化、 メ チルフォ ス フ ェー ト化、 チォフ ォ ス フ ェー ト化又は脱ァ ミ ノ化する こ と にょ リ得られる、 該アンチセンス R N A及び該センス R N Aの誘導体からなる群よ リ選ばれる単離された R N A断片。 本発明において、 遺伝子操作に必要な c D N Aの作製、 ノ —ザンブロ ッ トによ る発現の検討、 ハイ ブリ ダィゼ一シヨ ン によるスク リ ーニング、 組換え D N Aの作製、 D N Aの塩基 配列の決定、 c D N Aライ ブラ リ 一の作製等の一連の分子生 物学的な実験は通常の実験書に記載の方法によ って行う こ と ができ る。 前記の通常の実験書と しては、 たと えば、
Man i at i sらの編 した o lecul ar Clon ing, A l aboratory manua l , 1989, Eds . , Sambrook, J . , Fr i t sch, E . F . , and Ma n i a t i s , T., Co l d Spr ing Harbor Laborator Press を挙 げる こ とができ る。
本発明の リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドは、 リ セ プタ一型チロ シンキナーゼ活性を有し、 且つ、 配列表の配列 番号 1 及び 2からなる群よ リ選ばれるア ミ ノ酸配列を含有す る単離されたポ リ ペプチ ドと、 該ポ リペプチ ドの、 リ セプタ —型チ口 シンキナーゼ活性を有する相同変異体とへの結合能 を有し、 ポ リ アク リ ルア ミ ドゲル電気泳動で測定した分子量 が少なく と も 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダノレ ト ンであ り 、 クマシ 一プリ リ アン トブルー染色反応を受け得る こ と を特徴とする 単雕された化合物か、 又は、 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸 配列を含有するポ リ ぺブチ ドの少なく と も一部を含有 してな る単離された化合物と定義される。 本発明において、 "リ セブター型チロ シンキナーゼ活性"と は、 チロ シンキナーゼが本来有している、 チロ シン残基を リ ん酸化する酵素活性、 リ セブター型チロ シンキナーゼにおい てその細胞外 ドメ イ ンが リ ガン ドを認識して結合する機能、 及びリ セブター型チロ シンキナーゼにおいてその細胞内 ドメ イ ン中のア ミ ノ酸残基 (主にチロ シン残基) を リ ん酸化して リ ん酸化した部位において他の細胞内タ ンパク質と結合して その細胞内タ ンパク質を結合部位において リ ん酸化する機能 の う ち少なく と も 1 つを含むもの とする。
また、 本発明において、 " リ セブタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ド活性" とは、 少な く と も配列表の配列番号 1 に記載 のァ ミ ノ酸配列を有する リ セプタ一型チ口 シンキナーゼポリ ペプチ ド (即ち、 該リ セブタ一型チロ シンキナーゼの細胞外 ドメ イ ン) に結合する活性、 も し く は配列表の配列番号 2 に 記載のア ミ ノ酸配列を含有する リ セプター型チロ シンキナー ゼポ リ ペプチ ド (即ち、 該リ セブター型チロ シンキナ一ゼの シグナルペプチ ドを除く 細胞外 ドメ イ ン、 膜透過 ドメ イ ン及 び細胞内 ドメ イ ンよ リ なるポ リ べプチ ド) の発現細胞に結合 する こ とによ リ 、 少なく と も当該ポリ ペプチ ドの少な く と も
1 個のチロ シン残基を リ ン酸化させる活性のいずれかを含む ものとする。
本発明においては、 自然界で生じる こ とが知 られている生 物種内変異、 ア レル変異等の突然変異及び人為的に作製可能 な点変異等の変異によって生じる、 リ セプター型チロ シンキ ナーゼ リ ガン ド活性を有する相同変異体も、 本発明の リ セプ ター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドに含まれる。 また、 ァ ミ ノ 酸レベルの変異がな く と も、 自然界から分離した、 染色体 D N Aまたは c D N Aにおいて、 遺伝コー ドの縮重によ り 、 そ の D N Aがコー ドするア ミ ノ酸配列を変化させる こ と なく D N Aの塩基配列が変異した例はしばしば認められる。 また、 5 ' 非翻訳領域及び 3 ' 非翻訳領域はポ リ ペプチ ドのァ ミ ノ 酸配列の規定には関与しないので、 それらの領域の D N A配 列は変異しやすい。 このよ う な遗伝コ一 ドの縮重や変異によ リ得られる塩基配列、 並びに上記した、 リ セブタ一型チロ シ ンキナーゼ活性を有する リ ガン ド相同変異体が有するア ミ ノ 酸配列をコ一 ドする塩基配列も、 本発明の D N Aに含まれる , 本発明で使用する リ セブタ一型チロ シンキナーゼの c D N Aを得る工程は、 後述する参考例 1 〜 6 に記載 した通 リ であ る。 即ち、 チロ シンキナーゼ遺伝子に特徴的なア ミ ノ酸配列 に対応したプライマーを用いて、 P C Rを行う。 P C R用プ ライマーの作製並びに P C Rは W i 1 k s の方法 (Proc.Nat 1. Acad. Sci. USA 86: 1603 , 1989 ) で行う こ とができ る。 具体 的には、 市販の D N A合成機でオリ ゴヌ ク レオチ ドを合成し 精製して P C R用プライマーを得る。 次いで P C R用ブライ マーを、 ヒ ト巨核芽球白血病細胞株 U T— 7 ( 日本国、 熊本 大学医学部遗伝発生医学研究施設分化制御部門、 須田年生教 授も し く は日本国、 自治医科大学血液科、 小松則夫講師よ り 入手可能) の c D N A溶液に加え P C Rを行い、 特定部位を 増幅する。 これによ リ 、 特定のチロ シンキナーゼの一部分で ある約 2 0 0 b p を增幅する こ とができ る。 こ の P C R産物 である D N A断片をァガロース電気泳動などで分離し、 精製 し回収する。 この回収 した D N A断片をク ローユングし、 遺 伝子配列を決定した と こ ろ、 配列表の配列番号 3の塩基配列 の 2 6 4 2番カ ら 2 8 1 2番に相当する。 この配列はチコ シ ンキナ一ゼ酵素活性部位の中央部分をコ一 ドしてお リ 、 細胞 内シグナル伝達に重要な役割を果たすア ミ ノ酸配列をコー ド する。
本発明で使用する リ セブタ一型チ口 シンキナーゼ c D N A 全配列のク ローニングには、 前記の方法にてク ローニングし た c D N A断片をァイ ソ トーブ標識し、 U T— 7細胞株の c D N Aライブラ リ ーをハイ ブ リ ダイゼ一ショ ンな どの方法に てスク リ ーエングするこ と によって得る こ と ができ る。 アイ ソ ト一プの標識法と しては、 たと えば [32 P ] y — A T P と T 4ポ リ ヌ ク レオチ ドキナ一ゼを用いて末端をラベルする方 法や、 他のニ ッ ク ト ラ ンス レーシ ョ ン法またはブライ マー伸 長法などによ る標識法が利用でき る。
本発明で使用する リ セプター型チロ シンキナーゼの c D N A塩基配列を、 配列表の配列番号 3 と してそれがコー ドする ア ミ ノ 酸配列と共に示 した。 塩基配列は、 4 0 9塩基よ り な る 5 ' 非翻訳領域、 それに続く 2 9 6 1 塩基よ リ なる該リ セ ブター型チロ シンキナーゼ'をコ一 ドする領域、 及びさ らにそ れに続く 9 1 9塩基よ り なる 3 ' 非翻訳領域からなる。 この リ セプター型チロ シンキナーゼのア ミ ノ酸配列は、 配列表の 配列番号 3のア ミ ノ 酸配列の一 1 5番から一 1番にあたる 1 5 ァ ミ ノ酸から構成されるシグナルぺプチ ド、 配列表の配列 番号 3 のア ミ ノ酸配列の 1番から 5 2 2番にあたる 5 2 2ァ ミ ノ酸で構成される細胞外部分、 配列表の配列番号 3のア ミ ノ酸配列の 5 2 3番から 5 4 8番にあたる 2 6 ア ミ ノ酸から 構成される細胞膜貫通部分、 配列表の配列番号 3のア ミ ノ酸 配列の 5 4 9番カゝら 9 7 2番にあたる 4 2 4ア ミ ノ酸から構 成される細胞内部分、 ょ リ構成される。 さ らに、 細胞内部分 においては配列表の配列番号 3のア ミ ノ酸配列の 6 0 0番か ら 8 5 9番にあたる 2 6 0ア ミ ノ酸はチロ シンキナーゼ酵素 活性部分である。 尚、 この リ セブタ一型チロ シンキナーゼ c D N Aの全塩基配列を含むベク ター p B S R T K F U L Lを 大腸菌 J M 1 0 9 ( 日本国東洋紡社製) に遗伝子導入した形 質転換細胞は、 日本国通産省工業技術院生命工学工業技術研 究所において寄託番号 F E RM B P— 4 8 8 3 と して 1 9 9 4年 1 1 月 1 1 日 に寄託されている。
配列表の配列番号 1 で表されるア ミ ノ 酸配列を有するポリ ぺプチ ドは、 上記の リ セプタ一型チ口 シンキナーゼの細胞外 部分のシグナルぺプチ ドを除いた部分のア ミ ノ酸配列を有す るポ リ ペプチ ドに相当する。 また、 配列表の配列番号 2 で表 されるア ミ ノ酸配列を有するポ リ ペプチ ドは、 上記の リ セブ ター型チロ シンキナーゼのシグナルぺプチ ドを除く ァ ミ ノ酸 配列を有するポリ べプチ ドに相当する。
本発明で使用する リ セブター型チロ シンキナーゼは、 すで にク ローニングされている リ セプタ一型チ口 シンキナーゼで ある ヒ ト E P H (Hirai e t aに, Sc ience, 238, 1717— 1720 , 1987 ) 、 ヒ 卜 E C K (Lindberg and Hunter, Mo 1. Cel l.
Biol. , 10, 6316-6324, 1990 ) 、 ラ ッ ト E L K (Lho tak e t a 1. , o 1. Cel l. Biol. , 11, 2496-2502 , 1991 ) 、 ヒ ト H E K (Wicks e t a 1. , P r o c . Na t 1. Ac a d . S c i . USA. , 89, 1611- 1615, 1992 ) 、 マ ウ ス S E K (Gi 1 a r d i -He b e n s t r e i t et a 1. , Oncogene, 7 , 2499-2506 , 1992 ) 、 チキン C e k — 5
(Pasqua 1 e, Cel l Regulat ion, 2, 523-534 , 1991 ) と類似 した構造を持つが、 そのア ミ ノ酸配列のホモ ロ ジ一は最も高 い場合の E L Kで 5 6 . 3 %であ リ 、 これらの物質と は異な るア ミ ノ酸配列を有する新規な リ セブタ一型チロ シンキナー ゼであ リ 、 本願発明者らによ リ初めて明 らかにされた物質で ある。
本発明に使用する リ セプタ一型チロ シンキナーゼの遺伝子 の入手法と しては、 参考例 1〜 6 に記載の方法以外にも、 市 販の ヒ ト胎盤も しく は胎児肝臓 c D N Aも しく は c D N Aラ イブラ リ ーを直接テ ンプレー ト と して使用 し、 配列表の配列 番号 3に記載の D N A配列の 2 O m e r程度のセンスプライ マ一及びアンチセ ンスブライマーを作製し、 P C Rを行って 作製した り 、 またこ の P C R産物をプローブと して用いる こ と によ リ 、 ライブラ リ ーを参考例 1〜 6 に記載の方法でスク リ 一ユングを して得る こ とができ る。 さ らに、 本発明で使用 した リ セプタ一型チロ シンキナーゼの c D N Aは、 U T— 7 以外にも、 血液細胞株である ヒ ト慢性骨髄性白血病細胞株 K 5 6 2 (日本国理化学研究所、 細胞開発銀行よ り 入手可能、 N o . R C B 0 0 2 7 ) 及びヒ ト急性巨核芽球性白血病細胞 株 CMK (Blood 74: 42 , 1989 ) などから、 又非血液細胞株で は肝細胞ガン細胞株 H e p 3 B 〔アメ リ カン ' タイプ ' カル チヤ一 ' コ レク シ ョ ン (以下 A T C C と示す) ょ リ入手可能 H B 8 0 6 4〕 及びヒ ト胎児肺繊維芽細胞株 M R C— 5 (日 本国理化学研究所、 細胞開発銀行よ リ入手可能、 N o . R C B 0 2 1 1 ) などから、 後述する参考例 1〜 6 と実質的に同 様の操作で得るこ と ができ る。 またさ らに、 合成 D N A法で 人為的にオリ ゴヌ ク レオチ ドを作製し、 それらを連結して合 成 D N Aを調製する方法によれば、 遺伝子コー ドの縮重によ リ 、 ア ミ ノ酸配列を変える こ と なく 遺伝子配列を変化させる こ と によって 目的の組換え D N Aを調製する こ とができ る。 本発明で使用する リ セプター型チロ シンキナーゼの性質は 参考例 7に記載した通 り である。 すなわち、 未分化な血液由 来細胞株が、 刺激物質によ り分化 して増殖能力を失う と 、 該 リ セブター型チロ シンキナーゼの遺伝子の m R N Aの発現が 認められなく なる。 従って、 この リ セブター型チロ シンキナ ーゼが特に未知の血液未分化細胞の分化 · 增殖因子の リ セプ タ一である こ とが推察される。
また、 本発明で使用する リ セプタ一型チロ シンキナーゼの 遺伝子の発現方法並びに リ ガン ド同定に必要なポ リ べプチ ド の産生方法、 精製方法は参考例 8 から 1 0に記載する通 リ で ある。 すなわち、 配列表の配列番号 1及び配列番号 2のア ミ ノ酸配列をもつポリ べプチ ドをコ一 ドする D N Aを、 それぞ れ適当な発現ベク ターに組み込み、 微生物または細胞 (たと えば昆虫細胞または動物細胞) な どを宿主とする形質転換体 を得て、 その形質転換体に リ セプター型チロ シンキナーゼの ポ リ ペプチ ドを産生させる こ とができ る。 さ らに、 リ セプタ 一型チロ シンキナーゼをよ リ安定な条件で発現させる場合に は有核細胞、 特に動物培養細胞を宿主と して発現させるのが 好ま しい。 また、 細胞外部分のポ リ ペプチ ドの精製はァフ ィ 二ティ一ク ロマ ト グラ フ ィ一によ り 精製でき、 これを抗原に 用いる こ とで抗体を作製するこ とができ る。 尚、 この リ セブ タ一型チロ シンキナーゼを特異的に認識するマ ウスモノ ク 口 ーナル抗体産生ハイ ブリ ド一マの 3株、 すなわちク ローン 3 8— 1 E、 6 6 — 3 八ぉょび 6 8 — 3 八は、 日本国通産省ェ 業技術院生命工学工業技術研究所において各々寄託番号 F E R B P— 4 8 8 4、 B P— 4 8 8 5 および B P— 4 8 8 6 と して 1 9 9 4年 1 1 月 1 1 日 に寄託されている。
上記のよ う に して得られる リ セプター型チロ シンキナーゼ に特異的に結合する リ ガン ドの取得方法について、 以下に述 ベる。
まず、 上記の リ セプター型チロ シンキナーゼに特異的に結 合する リ ガン ドの産生細胞を同定し、 選択する。 その方法と しては、 実施例 1 カゝら 4 に記載するよ う に、 バイ オセ ンサー B I A c o r e (ス ウェーデン国、 フ ァ ノレマ シア社製) を用 いる方法が挙げられる。 本機は物質の表面におけるブラズモ ン共鳴の原理に基づき タ ンパク質の結合を検出する こ と がで き る。 すなわち、 各種ヒ ト細胞株の培養上淸中または細胞膜 上に存在する リ ガン ド分子と 、 配列表の配列番号 1 に記載の ア ミ ノ酸配列を含有する リ セプタ一型チロ シンキナ一ゼポ リ ペプチ ドと の結合を調べ、 該リ セブター型チロ シンキナーゼ ポ リ ペプチ ドと結合する物質を産生している細胞株を選ぶこ とができ る。
また、 別の方法と して、 各種細胞株の上清も し く は細胞そ のものと 、 配列表の配列番号 2 に記載の リ セプタ一型チ口 シ ンキナーゼポ リ べプチ ドの発現細胞株を共に培養 し、 その リ セプタ一型チ口 シンキナーゼポ リ べプチ ドの、 細胞内 ドメ イ ンにおけるチロ シン残基の リ ン酸化の有無を調べる こ と によ リ 、 該 リ セプタ一型チロ シンキナーゼに結合する リ ガン ドの 発現細胞株を選ぶこ とができ る。 また更に別の方法と して、 配列表の配列番号 1 に記載の リ セプター型チロ シンキナーゼポ リ べプチ ドも し く はこのポ リ ペプチ ドをコー ドする塩基配列に、 抗体認識部位、 例えば実 施例に記載したヒ ト I g Gの F c部分や、 I B I F L A G (米国、 K o d a k社製 ; 参考文献と して同社発行の E p i t o p e . 1 、 1 、 1 9 9 2年を参照) ( I B I F L A G は、 以下、 屡々 、 単に 「 F L A G」 と称す) 等のア ミ ノ酸配 列をコー ドする塩基配列を、 配列の読枠が合 う よ う に連結さ せた配列を発現させて融合べプチ ドを得る。 そ して リ ガン ド を発現している細胞と結合させる こ と によ リ 、 染色されたそ れらの細胞を同定でき る。
本願実施例 1 〜 4 においては、 本発明の リ ガン ド発現細胞 と して、 ヒ ト結腸ガン由来細胞株 C一 1 ( 日本国株式会社免 疫生物研究所よ リ購入可能、 参考文献と して佐藤ら . 医学 あゆみ、 9 6 : 8 7 6 、 1 9 7 6年) を同定 した t
次いで、 本発明の リ ガン ドを、 その発現細胞から精製する 本発明における リ ガン ドの精製、 分子量の測定、 物性の評価 及び N末端ァ ミ ノ酸配列の決定によ る同定は実施例 5 から 9 に記載 した通 リ である。 すなわち、 リ ガン ド発現細胞株の培 養上清又は細胞膜画分、 或いは細胞を特定の酵素で処理 して 作製 した溶液などを、 配列表の配列番号 1 に記載のア ミ ノ酸 配列を含有するポ リ ペプチ ドを結合させたァフィ 二ティ一ゲ ル等の担体を用いて精製し、 更に配列表の配列番号 1 のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプチ ドに対する結合活性を指標に する力 も し く は配列表の配列番号 2 に記載のア ミ ノ 酸配列 を含有するポ リ ペプチ ドの発現細胞に反応させて、 該ポ リ べ プチ ドのチ口 シン残基を リ ン酸化させる活性を指標に して、 ゲル濂過、 イ オン交換等の分離操作にょ リ 、 本発明の リ ガン ドを精製する こ とができ る。
このよ う に して精製された本発明の化合物 ( リ ガン ド) は 配列表の配列番号 1 及び 2 からなる群よ リ選ばれるァ ミ ノ酸 配列を含有する単離されたポ リ ペプチ ドと 、 該ポ リ ペプチ ド の、 リ セブター型チロ シンキナーゼ活性を有する相同変異体 と への結合能を有し、 ポリ ア ク リ ルア ミ ドゲル電気泳動で測 定して分子量が少なく と も 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンで ぁ リ 、 クマシ一ブリ リ アン トブル一染色反応を受け得る単離 された化合物である。 上記の物理化学的性質は、 これまでに 報告されているいかなる公知の化合物の物理化学的性質と も 異なる。
本発明の リ ガン ドと しては'、 リ セプタ一型チロ シンキナー ゼ活性を有し、 且つ、 配列表の配列番号 2 のア ミ ノ酸配列を 含有する単離されたポ リ ペプチ ド、 又は該ポリ ペプチ ドの、 リ セプター型チロ シンキナーゼ活性を有する相同変異体を発 現した細胞に反応させる と 、 該ポ リ ペプチ ドの少なく と も 1 個のチロ シン残基を リ ン酸化させる特性を有する ものが好ま しい。 本発明の リ ガン ドと してはまた、 配列表の配列番号 4 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺブチ ドを包含する こ とが好ま しく 、 該ア ミ ノ酸配列が上記のポ リ ペプチ ドのア ミ ノ末端に位置するこ とが更に好ま しい。 本発明の リ ガン ドと してはまた、 クマシ一ブ リ リ アン トブル一染色反応と P A S 染色反応 (糖鎖の結合の有無を検出する) の両方を受け得る こ とが好ま しい。 配列表の配列番号 4 に記載したア ミ ノ酸配列は、 プロティ ンシークェンサ一 (米国アプライ ドバイ オシステム社製) に て決定された、 精製された本発明の リ ガン ドのア ミ ノ末端 ( N末端) 部の配列のア ミ ノ酸番号第 1番から第 8番のア ミ ノ 酸配列を示す。 この配列表の配列番号 4のア ミ ノ酸配列を タ ンパク質データベースである N B R F — P D B (ナショ ナ ノレ ' バイオメディ 力ノレ ' リ サーチ ' ファ ウンデーショ ン、 リ リ ース 4 0 . 0、 1 9 9 4年 3月 ) 及び S W I S S — P R O T (ユーロ ビア ン ' モ レキュ ラー ' バイ オロ ジー ' ラボラ ト リ 一、 リ リ ース 2 9 . 0、 1 9 9 4年 6月 ) において検索を 行った と ころ、 同一の配列を有する公知のタンパク質は見い だされず、 新規なア ミ ノ酸配列であった。
上記のこ とから、 本発明の リ ガン ド、 すなわち、 配列表の 配列番号 1及び 2からなる群よ リ 選ばれるア ミ ノ 酸配列を含 有する単離されたポ リ ペプチ ドと 、 該ポ リ ペプチ ドの、 リ セ プタ一型チロ シンキナーゼ活性を有する相同変異体とへの結 合能を有し、 ポ リ アク リ ルア ミ ドゲル電気泳動で測定した分 子量が少なく と も 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンでぁ リ 、 ク マ シ一プ リ リ アン トブル一染色を受け得る化合物であって、 さ らに Ν末端のア ミ ノ酸配列が配列表の配列番号 4に記載の 配列であるポ リ べプチ ドを含有する化合物が、 公知化合物と は異なる新規化合物である こ とが実証された。
また、 配列表の配列番号 1 9に、 精製された本発明の リ ガ ン ドの N末端から、 プロティ ンシークェンサ一で同定できた ア ミ ノ酸配列を示す。 後述するよ う に、 こ の配列表の配列番 号 1 9 のア ミ ノ酸配列に基きセ ンスブライマ一及びア ンチセ ンスプライマーを合成して、 本発明の リ ガン ドの全 c D N A 配列のク ローニングに用いる こ とができ る。
また、 所望であれば、 ト リ プシンなどのプロテアーゼ処理 また化学処理にょ リ リ ガン ドを断片化 して、 それらのァ ミ ノ 酸配列を決定した り 、 カルボキシル末端 ( C末端) のァ ミ ノ 酸配列を決定する こ とが可能である。
後述する よ う に、 ア ミ ノ 酸配列の解析結果から明 らかなよ う に本発明の リ ガン ドは細胞膜結合タ ンパク質であるが、 実 施例 5 から 7 に示すよ う に、 本発明の リ ガン ドをその発現細 胞の細胞培養上清から精製する こ とができ る。 これは、 メ タ ロブ口テアーゼ等のタ ンパク質分解酵素が細胞膜上のァ ミ ノ 酸配列を切断する こ と によ リ 、 細胞外 ドメ ィ ンが細胞上清中 に遊離したためと考えられる。
また、 本発明の リ ガン ド発現細胞にも配列表の配列番号 2 のア ミ ノ酸配列 (配列番号 3 のア ミ ノ酸配列を有する を リ セ プタ一型チロ シンキナーゼの、 シグナルぺプチ ドを除いた、 細胞外 ドメ イ ン、 膜透過 ドメ イ ン及び細胞内 ドメ イ ンの全 ド メ イ ンの配列) を含有するポ リ ペプチ ドが結合する こ と ; さ らに配列表の配列番号 3 (該 リ セプタ一型チロ シンキナーゼ の全ア ミ ノ酸配列) に記載のア ミ ノ酸配列を含有する リ セプ ター型チロ シンキナーゼポ リ べプチ ドの発現細胞を リ ガン ド 発現細胞と反応させる と 、 その リ セプター型チロ シンキナー ゼポ リ ペプチ ドのチロ シン残基が リ ン酸化する こ と ; また、 下記に示すよ う に該 リ ガン ドの全 c D N A配列から推定され るア ミ ノ酸配列の解析結果から、 本発明の リ ガン ドに膜貫通 部分が存在する こ と などから、 細胞膜に も該 リ ガン ドが結合 している こ と は明らかである。 従って、 本発明の リ ガン ドは 細胞膜から も精製でき る。 細胞膜から本発明の リ ガン ドを精 製する場合は、 細胞外 ドメ ィ ンに加え膜透過 ドメ ィ ン及び細 胞内 ドメ イ ンも含むため、 分子量が細胞外 ドメ イ ンのみの分 子よ リ も大き く なる。
大量にかつ安価に本発明の リ ガン ドを得るためには、 実施 例 1 0及び 1 1 に示すよ う に、 遺伝子工学的手法によ り 、 該 リ ガン ドのア ミ ノ酸配列をコ一 ドする遺伝子を取得し、 動物 細胞などの有核細胞、 又は大腸菌等の原核細胞に遺伝子導入 し、 こ の リ ガン ドを生産させ、 単離する こ と によ リ得る こ と ができ る。
まず、 例えば、 実施例 9 において決定された配列表の配列 番号 1 9 に記載のア ミ ノ酸配列に基いて、 実施例 1 0 に記載 した方法によ リ 、 オ リ ゴ D N Aプローブも し く は P C Rブラ イマ一を設計 して、 リ ガン ドを発現している細胞株の c D N A又は c D N Aライ ブラ リ ー、 或いはゲノ ム D N A又はゲノ ムラ イ ブラ リ 一力ゝら、 ハイ ブ リ ダイゼ一シ ョ ン法または P C 法、 或いは両者を組み合わせた方法な どによ り 、 リ ガン ド の全長のア ミ ノ酸配列をコー ドする遺伝子をス ク リ ーニ ング する こ とができ る。
本発明の リ ガン ドの遺伝子を取得する他の方法と して、 リ ガン ド発現細胞の c D N Aライ ブラ リ 一を適当な発現べク タ 一に組み込み、 C O S細胞などで発現させ、 目的の遺伝子を スク リ 一ユングする発現ク ローニングの手法で、 本発明の リ ガン ドの c D N Aを単離する方法を挙げる こ と ができ る。 発 現ク ローニングには、 配列表の配列番号 1 に記載のァ ミ ノ酸 配列を含有する リ セプター型チロ シ ンキナーゼポ リ べプチ ド の リ ガン ドへの結合を利用 したセルソ一ターによ る分画法、 ラ ジオアイ ソ トープを用いたフィルムェマルジ ョ ンによる検 出法等の方法、 も し く は c D N Aライブラ リ ー導入細胞株自 身も し く はその細胞培養上淸と 、 配列表の配列番号 2 のア ミ ノ酸配列を含有する リ セブター型チロ シ ンキナーゼポ リ ぺプ チ ドを発現する細胞株と の共培養によ り 、 該ポ リ ペプチ ドの チロ シ ン残基が リ ン酸化される こ と を指標に した方法を用い る こ とができ る。
このよ う に して得られた該 リ ガン ドをコ一 ドする c D N A 塩基配列を、 その前後のノ ンコーディ ング領域、 及びそれが コ一 ドするア ミ ノ酸配列と共に配列表の配列番号 7 に示 した。 該 c D N A配列から予想されるァ ミ ノ酸配列に関 して、 K y t e — D o o 1 i t t 1 e の方法 U. Mo l . B i o l . 157 : 105, 19 82 ) に従って、 疎水性部分及び親水性部分を解析した。 その 結果、 本発明の リ ガン ドは、 疎水性のア ミ ノ酸配列からなる 透過性 ドメ イ ンと 、 親水性のア ミ ノ酸配列からなる細胞内及 び細胞外 ドメ ィ ンを有するぺプチ ドアンカー型の細胞膜タ ン ノ ク質である こ とが明 らかと なった。 従って、 リ ガン ドの細 胞外 ドメ イ ンが リ セプタ一型チロ シンキナーゼの細胞外 ドメ イ ンに結合する こ と によ り 、 該 リ セプタ一型チロ シ ンキナー ゼの細胞内における リ ン酸化を引き起こすと考え られる。
具体的には、 本発明の リ ガン ドのア ミ ノ酸配列は、 配列表 の配列番号 7 のア ミ ノ酸配列の一 2 5番から— 1 番の 2 5 ァ ミ ノ酸残基からなるシグナルぺプチ ド ; 配列表の配列番号 7 のア ミ ノ酸配列の 1 番から 1 9 5番の 1 9 5 ア ミ ノ 酸残基か らなる細胞外 ドメ イ ン、 配列表の配列番号 7 のア ミ ノ 酸配列 の 1 9 6番カゝら 2 2 5番の 3 0 ア ミ ノ酸残基からなる膜透 ifi ドメ イ ン、 配列表の配列番号 7 のア ミ ノ 酸配列の 2 2 6 番か ら 3 0 8番の 8 3 ア ミ ノ酸残基からなる細胞内 ドメ イ ン、 よ リ構成される。 ただし、 シグナルペプチ ド部分以外の各部分 は、 あ く までもア ミ ノ酸配列から推定された ドメ イ ン構成で ぁ リ 、 実際の存在形態は、 上記の構成と若干異なる こ と も考 えられ、 上記に一応規定された各 ドメ ィ ンの構成ア ミ ノ酸が 5 から 1 0 ア ミ ノ酸程度前後する こ と もある。
また、 配列表の配列番号 5 に記載したア ミ ノ酸配列は、 配 列表の配列番号 7 のア ミ ノ 酸配列の 1 番から 1 9 5番のア ミ ノ酸配列、 すなわちシグナルぺプチ ドを除く 上記の細胞外 ド メ イ ンのア ミ ノ酸配列を示 し、 また、 配列表の配列番号 6 の ア ミ ノ酸配列は配列表の配列番号 7のァ ミ ノ酸配列の 1番か ら 3 0 8番のア ミ ノ酸配列、 すなわちシグナルぺブチ ドを除 く 本発明の リ ガン ド全体のァ ミ ノ 酸配列を示す。
上記したブロティ ンシークェンサ一で決定した N末端のァ ミ ノ酸配列、 すなわち配列番号 1 9 に示す 4 8 ア ミ ノ 酸残基 からなるア ミ ノ酸配列と 、 c D N A配列から推定された配列 番号 7のア ミ ノ酸配列の 1番から 4 8番のア ミ ノ酸配列は、 配列表の配列番号 1 9 のア ミ ノ酸配列において決定できなか つた 3箇所の XXX 部分を除き 、 ア ミ ノ酸配列は完全に一致し た。
尚、 本発明の リ セプタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドの c D N Aの全塩基配列を含むベク タ一 p U C M E K Lを大腸菌 D H 5 α に遺伝子導入した形質転換細胞は、 日本国通産省ェ 業技術院生命工学工業技術研究所において寄託番号 F E R Μ
B P— 5 0 0 8 と して 1 9 9 5年 2月 2 1 日 に寄託されて いる。
上記したよ う に、 配列表の配列番号 1 に記載のア ミ ノ酸配 列を含有する、 リ セプタ一型チロ シンキナ一ゼの細胞外 ドメ イ ンであるポ リ ぺブチ ドには、 本発明の リ ガン ドの細胞外 ド メ イ ン、 即ち配列番号 5 に記載のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部が結合 し、 該 リ セプタ一型チロ シンキナーゼの リ セブター型チロ シンキナーゼ活性を賦活化 する と考えられる。 尚、 こ こでい う 「一部」 と は、 リ セプタ —型チ口 シンキナーゼ リ ガン ド活性を有する リ ガン ドの活性 中心である連続する少なく と も 1 2個のア ミ ノ酸残基でぁ リ リ セブター型チロ シンキナーゼ活性を指標に して同定する こ とが可能である。
また、 本発明の リ ガン ドのア ミ ノ酸配列から、 その幾つか のア ミ ノ酸残基に糖鎖が付加される こ とが予想される。 例え ば、 N —ァセチル一 D—ダルコサ ミ ンが N —グ リ コ シ ド結合 可能な部分と して、 配列表の配列番号 7 のア ミ ノ酸配列の 1 1 番及び 1 1 4番のァスパラギン残基が挙げられる。 しかし 該 1 1 番のァスパラギンは実施例 9 で行ったプロティ ンシー クェンサ一によるア ミ ノ酸配列解析の際には、 測定に何等影 響を与えなかったため、 少なく と も本発明で使用 した C— 1 細胞が産生している リ ガン ドにおいては、 配列番号 7 のァ ミ ノ酸配列の 1 1 番のァスパラギン残基には糖鎖が付加されて いないと考え られる。 また、 N —ァセチル一 D —ガラ ク トサ ミ ンが O—ダ リ コ シ ド結合可能な部分と して、 セ リ ンまたは ス レオニン残基の頻出する配列表の配列番号 7 のァ ミ ノ酸配 列の 1 4 4番のセ リ ン以降の細胞外 ドメ ィ ンが挙げられる。 特に、 その可能性の高い部分と して、 配列表の配列番号 7 の ア ミ ノ酸配列の 1 5 5番のス レオニン、 及び 1 6 8番のセ リ ンから 1 7 2番のセ リ ンまでのセ リ ン残基も し く はス レオニ ン残基、 及び 1 8 1 番のセ リ ンから 1 8 3番のス レオニンま でのセ リ ン残基も し く はス レオニ ン残基が挙げられる。 一般 に、 これらの糖鎖が付加されたポ リ べプチ ドの方が糖鎖の付 加していないものよ り も生体内での分解に対して安定であ り また強い生理活性を有している と考えられる。
上記したよ う に、 実施例 5 から 7では本発明の リ ガン ドを 細胞培養上清から精製しているが、 この リ ガン ドは、 メ タ 口 プロテア一ゼ等のタ ンパク質分解酵素が細胞膜上のァ ミ ノ酸 配列を切断する こ と によ リ 、 細胞外 ドメ ィ ンが細胞上清中に 遊離した分子と考えられる。 例えば、 その切断部位は上記し た細胞外 ドメ イ ン と膜透過 ドメ イ ンの間、 即ち配列表の配列 番号 7のア ミ ノ酸配列の 1 9 5番のイ ソ ロイ シンと 1 9 6番 のロ イ シンの間と考えられるが、 その他の部分において同様 にタ ンパク質分解酵素等にょ リ 消化されて切断された可能性 もある。
本発明で明 らかにされた リ ガン ドの遺伝子配列並びにア ミ ノ酸配列をジェンバンク ( G e n b a n k 、 1 9 9 4年 1 0 月 、 リ リ ース 8 5 ) において検索 したと こ ろ、 最も類似性の ある物質と して、 L E R K— 2 (Beckmann e t aし, EMBO J . 13 : 3757, 1994. , Fl et cher e t a 1. , Oncogene 9 : 324し 1994、 及び国際出願公開第 9 4 Z 1 1 3 8 4 号を参照) を挙げる こ とができ るが、 ア ミ ノ酸配列全体でホモ ロ ジ一は 5 4 %と低 く 、 本発明の リ ガン ドと L E R K — 2 と は全く 異なった物質 である。 また、 こ の L E R K— 2 は、 本発明の リ ガン ドが特 異的に結合する リ セプタ一型チロ シンキナーゼに対し比較的 ホモロ ジ一のある リ セプタ一型チコ シンキナーゼ E L Kの、 結合タ ンパク質も し く は リ ガン ドと して同定された物質であ る。
尚、 本発明の リ ガン ドの全 c D N A配列がコ一 ドするア ミ ノ 酸配列と 、 上記の L E R K— 2のア ミ ノ酸配列と の共通点 は、 以下の通り である。 まず、 ジスルフ ィ ド結合を している と予想されるシスティ ン残基 4つ、 すなわち配列表の配列番 号 7のア ミ ノ 酸配列の 3 7番、 6 4番、 7 6番及び 1 2 8番 のシスティ ン残基の、 ア ミ ノ酸配列上における位置は共通し ている。 また、 N—ァセチルー D—ダルコサミ ンが N—グ リ コ シ ド結合可能な部分、 すなわち配列表の配列番号 7のア ミ ノ酸配列の 1 1 4番のァスパラギン残基の、 ア ミ ノ 酸配列上 における位置も共通 している。 さ らに、 細胞内 ドメ イ ンであ る配列表の配列番号 7のア ミ ノ酸配列の 2 7 6番から 3 0 8 番の 3 3ア ミ ノ酸残基よ リ なる配列は、 全く 同 じである。
以上のこ とから、 本発明の リ ガン ドと L E R K— 2が同 じ 生理作用を有する可能性もあるため、 実施例 1 9に示すよ う に、 本発明の リ ガン ドと上記の L E R K— 2 を対比する 目的 で、 L E R K— 2の遺伝子を P C R法にて ヒ ト胎盤の c D N Aょ リ 取得し、 発現させて、 本発明の リ ガン ドが結合する リ セプター型チロ シンキナーゼに対する作用の解析を行った。 その結果、 該 リ セプタ一型チロ シンキナーゼに対して、 弱い ながら結合したが、 その結合は本発明の リ ガン ドょ リ はるか に弱く 、 また、 該リ セプターの リ ン酸化を引き起こす作用 も 極めて弱かった。 従って、 L E R K— 2 は本発明の リ ガン ド と構造上の類似性はあるが、 全く 違う 生理的作用を有する物 質である。
本発明の リ ガン ドは、 実施例 1 3 から 1 4 に示すよ う に、 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ド の少なく と も一部、 好ま し く は配列表の配列番号 5 のァ ミ ノ 酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一部をコー ドす る単離された D N Aを用いて、 遺伝子工学的手法にょ リ 、 配 列番号 6又は 5 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少 な く と も一部と して作製する こ と ができ る。
即ち、 配列表の配列番号 6 のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプチ ドの少なく と も一部を含有してなる単離された化合物 の製造方法に して :
( a ) 該ポリ べプチ ドの少な く と も一部をコ一 ドする D N Aを複製可能な発現ベク ターに連結 して、 該 D N Aが、 該 複製可能な発現ベク ターに発現可能に組み入れられてなる複 製可能な組換え D N Aを得て、
( b ) 真核細胞又は原核細胞を該複製可能な組換え D N Aで形質転換 して、 形質転換体を形成 し、
( c ) 該形質転換体を親細胞と しての該真核細胞又は原 核細胞から選別し、
( d ) 該形質転換体をイ ンキュベー トする こ と によ リ 、 形質転換体に該 D N Aを発現させて、 該ポ リ べプチ ドの少な く と も一部を含有してなる化合物を生産させ、 そ して
( e ) ィ ンキュベ一 ト された形質転換体から該化合物を 単離する、
こ と を特徴とする方法によれば、 本発明の リ ガン ドを遺伝子 工学的手法によ リ産生する こ とができ る。 得られた リ ガン ド は、 上記した公知の方法にょ リ精製する こ とができ る。 よ り 安定した生産条件と しては宿主と して動物細胞を用いるこ と が望ま しい。
実施例 1 3 に記載したよ う に、 本発明の リ ガン ドは、 配列 表の配列番号 6 に記載のァ ミ ノ酸配列を有するポリ べプチ ド をコー ドする c D N Aを発現させる こ と によ リ 得ても よいが この状態では膜結合型でぁ リ 、 精製及び製剤化に手間がかか る。 そこで、 精製、 製剤化をよ り 効率的に行う ために、 実施 例 1 7 および 1 8 に記載したよ う に、 生理活性中心を含む ド メ ィ ンである配列表の配列番号 5 に記載 したァ ミ ノ酸配列、 すなわち該リ ガン ドの細胞外 ドメ ィ ンのみを産生させるこ と が好ま しい。 即ち、 配列表の配列番号 5 に記載のア ミ ノ酸配 列の少なく と も一部をコー ドする D N Aを用い、 分泌型タ ン パク質と して産生させる方が好ま しい。
また、 本発明の リ ガン ドを発現させる形態と しては リ ガン ド単独の化合物でもよいが、 複合体の形態でも可能である。 本発明において、 "複合体" と は、 配列表の配列番号 6 、 好 ま しく は配列番号 5 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ べプチ ド の少な く と も一部を含有する化合物と、
配列表の配列番号 6 、 好ま しく は配列番号 5 のァ ミ ノ酸配 列を含有するポリ べプチ ドの少な く と も一部を含有する化合 物の少なく と も 1 種と 、 上記のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ぺプチ ドの少なく と も一部を含有する化合物以外の化合物か らなる群から選ばれる少な く と も 1 種、
とからなる複合体を意味する。 本発明の複合体は、 上記 した リ ガン ド 1 分子と比較して、 同等又はそれ以上の生理活性を 有する こ とから好ま し く 使用する こ とができ る。
本発明の複合体の例と しては、 実施例に記載している よ う に、 リ ガン ドと ヒ ト I g Gの F c 部分と のキメ ラ タ ンパク質 と して発現させて、 更にその I g G F c の ヒ ンジ領域と の間 にジスルフイ ド結合を形成させた 2 量体 ; 特定の抗原 (例え ばヒ ト I g Gの F c 部分、 F L A Gなど) を リ ガン ドのア ミ ノ 酸配列の C末端も し く は N末端側に発現させてキメ ラ タ ン パク と して得、 該抗原を特異的に認識する抗体と反応させて 抗原抗体複合体を形成させる こ と によ リ 得られる複合体 ; ヒ ト I g G F c の ヒ ンジ領域のみと のキメ ラ タ ンパク を発現さ せて、 ジスルフ ィ ド結合にて 2 量体を形成させた複合体 ; リ ガン ドの活性に何等影響を与えないぺプチ ドを、 該 リ ガン ド の C末端側、 N末端側も し く はその他の部位に発現させて最 終的にジスルフ ィ ド結合を形成する よ う に作成されたキメ ラ タ ンパク ; 配列表の配列番号 6 、 好ま しく は配列番号 5 のァ ミ ノ酸配列の少なく と も一部をコー ドする D N Aを、 翻訳の 読枠が合う よ う に 2 つ以上連結させた多量体、 などを挙げる こ とができ る。
また、 本発明の複合体と しては、 上記 したも のの他に発現 精製された該 リ ガン ドの細胞外 ドメ イ ンのポ リ べプチ ドを、 架橋剤を用いて架橘 したも の も挙げられる。 例えば、 リ シン 残基を架橘するジメ チルスべ口イ ミデー ト 2塩酸塩、 システ イ ン残基のチオール基で架橋する N— ( γ —マ レイ ミ ドブチ リ ルォキシ) ス ク シンイ ミ ド、 ァ ミ ノ基と ア ミ ノ基を架橋す るダルタールアルデヒ ドな どの架橋剤を用いて、 タ ンパク質 糖質の架橋反応を行い、 リ ガン ドの複合体を形成させる こ と ができ る。
実施例 1 3 および実施例 1 6 に示 した様に、 配列表の配列 番号 6 のア ミ ノ酸配列をコー ドする D N Aを有する発現べク ターを用いて発現させる と 、 天然の細胞膜上に存在する リ ガ ン ドと 同様の生理活性を有する リ ガン ドが得られる。 例えば. 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列、 も しく は配列表の配列 番号 5 のア ミ ノ酸配列の C末端に疎水性のア ミ ノ 酸を有する よ う なア ミ ノ 酸配列を有するポリ べプチ ドが、 Ν末端が細胞 外にでるよ う に して、 脂質、 リ ん脂質な どの生体膜などを模 倣した、 ミセルも しく は リ ポソ一ムの形態を有する物質上に 存在する形に して、 細胞膜上の分子と して発現させた場合と 同様の生理活性を発揮させる こ とができ る。
本発明の リ ガン ド及び該 リ ガン ドを含む複合体は、 血液未 分化細胞の分化及び増殖を促進する作用を有する こ とから、 白血病、 骨髄移植時の早期回復剤、 抗癌剤投与時の骨髄抑制 回復剤及びその予防剤等の医薬品の活性成分と して有用であ る。 また、 上記したよ う に、 該リ ガン ドを生体膜に類似 した 形態を有する物質 (例えば、 ミセルゃリ ボソーム) 上に存在 する形に したものも、 同様な医薬品の活性成分と して有用で ある。
本発明の リ ガン ドを ミセルゃリ ポソ一ム上に設ける方法と しては、 例えば、 リ ガン ドの一部分に リ ン脂質を共有結合さ せて、 この部分を リ ボソームゃミセルの脂質層に入れる方法 や、 α ヘ リ ッ ク スを持つペプチ ドを リ ガン ドにつなぎ、 その 部分を リ ポソ一ムゃミセルの脂質層に入れる方法がある。
また、 本発明の リ ガン ドを、 人体から摘出 した血液系細胞 を体外の培地において増殖、 活性化し、 再び体内に細胞を戻 す医療方法にも利用する こ とができ る。 その場合には、 本 ¾ 明の リ ガン ドを直接培地中に加える こ と も可能だが、 リ ガ ン ドを細胞培養容器に固定化する事が望ま しい。 固定化の方 と しては、 該 リ ガン ドのア ミ ノ基ゃカルボキシル基を利用す る と と もに適当なスぺーサーを用いる こ となどによって、 培 養容器に リ ガン ドを共有結合によ って固定化させる こ とがで き る。 リ ガン ドのァ ミ ノ基を用いる場合のスぺ—サ—の例と しては、 ω — カルボキシアルキル基誘導体、 ブロ モアセチル 誘導体、 ジァゾニゥム誘導体などが挙げられる。 リ ガン ドの カルボキシル基を用いる場合のスぺ—サ一の例と しては、 ω 一ア ミ ノ アルキル誘導体ゃヒ ドラ ジ ド誘導体が挙げられる。 また、 他の固定化方法と しては、 C N B r 活性化によ る方法 もある。 尚、 リ ガン ドの固定化方法の詳細については、 例え ば、 「実験と応用 ァフィ 二ティ 一ク ロマ ト グラ フィー」 ちばた いちろ う
千畑一郎ら、 日本国、 講談社、 1 9 7 6 年、 3 1 〜 9 5 頁を 参照する こ とができ る。 このよ う に、 固体表面に固定化され た形態を有し、 リ セブター型チロ シンキナーゼ リ ガン ド活性 を有し、 さ らに配列表の配列番号 6 又は 5 のァ ミ ノ 酸配列を 含有するポリ べプチ ドの少なく と も一部を含む化合物に関 し ても本発明に含まれる。
遺伝子工学的手法によ り 産生された本発明の リ ガン ドは、 上記 したよ う に本発明で使用する リ セプタ一型チロ シ ンキナ ーゼの細胞外部分のポリ べプチ ドを利用 して精製する こ と も でき るが、 実施例 1 5 に示 したよ う に、 該 リ ガン ドで適当な 動物を免疫する こ と によって作製されたポ リ ク 口 一ナル抗 又はモ ノ ク ロ ーナル抗体を用いたァフ ィ 二テ ィ ーク 匚 マ ト " ラ フィ ーを利用する こ と によ リ精製する こ と もでき る。
本発明の リ ガン ドはヒ ト さい帯血単核球のコ ロニ一形成を 促すこ と によ って、 血液未分化細胞の増殖を促す作用を有す ( 本発明の リ ガン ド及び該 リ ガン ドを含む複合体血液未分化細 胞の分化及び増殖を促進する作用を有する こ とから、 白血病 骨髄移植時の早期回復剤、 抗癌剤投与時の骨髄抑制回復剤及 びその予防剤等の医薬品の活性成分と して有用である。 本発 明の リ ガン ドを医薬品と して用いる場合は、 本発明の リ ガン ドの凍結乾燥品を、 注射用蒸留水にて溶解も し く は懸濁して 使用する こ とが望ま しい。 例えば 0 . 1 から l O O O g Z m 1 の澳度に調製した注射剤、 点滴剤と して提供する こ と が 簡便である。 さ らに、 血液細胞を体外にて増殖、 活性化させ るために用いる場合にも、 医薬品同様に凍結乾燥品や溶液剤 を作製して、 上記したよ う に培地に加えた リ 、 培養に使用す る容器に固定化して用いる こ とができ る。 また、 マウスに対 して本発明の リ ガン ド 1 μ g / k g を腹腔内投与した実験に おいて、 マウスが死ななかったこ とから、 医薬品と して使用 可能である こ とが確認された。
また、 本発明の リ ガン ドのィ ンビ ト 口 の生理活性の確認は 種々 の疾患モデルマウス、 またはそれらに準ずる疾患に似た 症状を呈するラ ッ ト 、 サル等の動物をモデルと して投与を行 い、 その身体的、 生理的な機能の回復、 異常を調べる こ と に ょ リ行う こ と ができ る。 例えば、 造血細胞に関する異常に対 する本発明の リ ガン ドの生理活性については、 5 — F U系の 抗癌剤を投与して、 骨髄抑制モデルマウスを作製し、 このマ ウスに本発明の化合物を投与した群と しなかった群を設け、 それぞれの群について骨髄細胞、 末梢血細胞の数、 生理的な 機能を調べる こ とで明 らかになる。 また更に、 体外で造血幹 細胞を含む血液未分化細胞の培養、 增殖を調べる場合には、 マウス骨髄細胞を培養器などを利用 して、 培養を行い、 その 際に本発明の化合物を加えた群と加えなかった群で培養後の 細胞を致死量放射線照射マ ウスに細胞移植を行い、 その結果 の回復の度合いを、 生存率、 血球数の変動などを指標にする こ とで調べる こ とが出来る。 これらの実験の結果は人にも外 挿でき るため、 本発明の化合物の薬効を評価するための有効 なデータ と して利用する こ とが出来る。
また、 本発明の化合物のポ リ ぺブチ ドをコ一 ド している m R N Aが どの臓器において発現されているかを示 した実施例 1 2 の結果、 並びに リ セプターの m R N Aがどの臓器におい て発現されているかを示した参考例 7 の結果を対比すれば、 本発明の化合物が何らかの生理活性またそれに準じる薬効が 生じるであろ う臓器と して肺、 腎臓が挙げられ、 この点から これらの臓器が関連する疾患が本発明の化合物を用いた治療 の対象と して予想される。 また、 肝臓に関 しては、 本発明に おける リ セプタ一型チロ シンキナーゼの遺伝子が肝臓ガンに おいて強く 発現されている こ とが本発明の参考例 7 の肝臓ガ ン細胞株 H e p 3 Bのノザンブロ ッ ト の結果、 並びに B e n n e t t らの論文 ( B e n n e t t e t a 1 . , J . B i o 1 . C h e m . , 2 6 9 , 1 4 2 1 1 - 1 4 2 1 8 , 1 9 9 4 ) 、 及び本発明者らによ る国際出願公開第 9 5 / 1 5 3 8 6 号の明細書に記載されている。 従って、 本発明 の リ ガン ドは肝臓ガンや肝臓正常組織の増殖等に関連 し、 こ れらに関連する疾患にと って有効な薬剤も し く は有効な薬剤 のスク リ 一ニング系などに応用可能である。
上記 したよ う に、 本発明の化合物を医薬品と して利用する 場合、 白血病、 骨髄移植時の早期回復剤、 抗癌剤投与時の骨 髄抑制回復剤及びその予防剤などの造血細胞に関連する疾患 に対する薬剤が考え られる。 その際の投与量と してはその医 薬品と しての形態、 リ ガン ドの活性にも よるが、 0 . l m g / k g から 1 0 O m g / k g程度投与すればよい。
また、 実施例 1 2 に示したよ う に配列表の配列番号 7 の遺 伝子配列の一部である 1 2 m e r から 1 6 m e r 以上の配列 と対をなす、 単離されたアンチセ ンス D N A断片及びアンチ セ ンス R N A断片、 及びそれらがメ チル化、 メ チルフォ ス フ ェ一 ト化、 脱ァ ミ ノ化、 またはチォフォ ス フ ェー ト化された 誘導体を用いて、 本発明の リ ガン ドの遺伝子発現をノ ーザン ブロ ッ ト によ リ調べる こ と が可能である。 実施例 1 2 に示し た方法と 同様な方法で、 マ ウス、 ラ ッ ト等の他の生物の本発 明の遺伝子のホモ口 グの検出や遺伝子ク ローニングに利用す る こ とができ る。 さ らに、 人のゲノ ムを含めたゲノ ム上の遺 伝子の検出及びク ローニングにも同様に利用可能でぁ リ 、 そ のよ う に してク ローニングされた遺伝子を用いれば、 本発明 の リ ガン ドの更に詳細な機能も明 らかにする こ とが出来る。 例えば、 近年の遺伝子操作技術を用いれば、 ト ラ ンスジェニ ッ クマ ウス、 ジータ一ゲッティ ングマウス、 また、 本発明の 遺伝子と関連する遺伝子を共に不活化したダブルノ ッ ク ァ ゥ トなどのあらゆる方法を用いる こ とが出来る。 また、 本発明 の遺伝子に対応するゲノ ム上の部分に異常がある場合は、 遺 伝子診断、 遺伝子治療への応用も可能である。 又、 配列表の 配列番号 7の塩基配列の一部を有する単離されたセ ンス D N A断片及びアンチセ ンス D N A断片あるいはそれらの誘導体 又それに対応する配列を有する単離されたセンス R N A断片 及びアンチセ ンス R N A断片あるいはそれらの誘導体、 によ リ細胞内の遺伝子発現を調節する事も可能である。
また、 実施例 1 5 に示した、 本発明の化合物を特異的に認 谶する抗体を用いれば、 本発明の化合物群の検出、 測定が可 能でぁ リ 、 上記に示 した疾患などの診断薬と して有用である ,
発明を実施するための最良の形態
以下参考例及び実施例によって、 本発明をよ リ 具体的に説 明するが、 本発明はこれらによって何ら限定される ものでは ない。
参考例 1 ヒ ト血液細胞株 U T— 7の P o 1 y (A) + R N
Aの調製
U T— 7細胞の培養、 継代は、 培地と して牛胎児血清 ( F C S、 以下本特許で用いた F C Sは全てオース ト ラ リ ア国、 フィノレ ト ロ ン社製) を 1 0 %含むイ スコ フ改変ダルベッ コ培 地 ( I MDM) (米国、 G I B C O— B R L社製) を用い、 ヒ ト顆粒球マ ク ロ フ ァ ージコ ロ ニー刺激因子 ( h GM— C S F ) (米国、 I n t e r g e n社製) を 2 n g /m l と なる よ う に加え、 C〇 2 イ ンキュベータ一にて 3 7 °Cの条件で行 つた。 未刺激細胞は、 同 じ条件で培養 した細胞を用いた。 巨 核球に分化させる際には、 細胞濃度 2 X 1 0 5 c e 1 1 s / m l に希釈し、 h GM— C S Fを 2 n g Zm l と なる よ う に カロえ、 さ らに P h o r b o l 1 2 —M y r i s t a t e 1 3 — A c e t a t e ( P MA : 米国、 s i g m a社製) を 1 O n g /m 1 となるよ う に加え、 3 日 間培養後細胞を回収 した。 これらの各条件で培養 した細胞を各々細胞数 1 X 1 0 8 個回収 し、 P B S (― ) ( 日本国、 二 ッスィ株式会社) に て 3回洗浄し、 R N Aの抽出に用いた。
回収 した細胞力 ら L i t h i u m C h l o r i d e /U r e a 法 (Eur. J. Biochei 107:303 ( 1980) ) にて T o t a 1 R N Aを抽出 した。 次に、 O l i g o t e x - d T 3 0 (日本国、 宝酒造社製) にて、 P o l y ( A) + R N Aを分 離 · 精製した。
参考例 2 チロ シンキナ一ゼに特異的なプライ マ一の作成
W i 1 k s の方法 (Proc. Nat l . Acad. Sc i . USA 86: 1603, 198 9 ) に従い、 チロ シンキナーゼのサブ ドメ イ ン 7 と 9 に対応 し、 かつ制限酵素の認識部位を連結した混合プライマ一、 す なわちセンスプライマー P T K I : 5' -TTGTCGACAC (AC) G (AG) GA(CT) (CT)T(CG)GC(ACGT)GC(ACGT) (AC)G - 3'、 ( 2 7 m e r : 制限酵素の認識部位と して S a 1 I 部位が付加されている。 配列表の配列番号 8 に記載) およびアンチセ ンスプライマー P T K I I : 3'-CT(AG)CA(CG)ACC(AT) (CG) (AG) A (AT) ACCTTAA GGT-5' ( 2 4 m e r : 制限酵素の認識部位と して E c o R I 部位が付加されている。 配列表の配列番号 9 に記載) を用い 以下の P C Rを行った。
合成オリ ゴヌ ク レオチ ドは固相法を原理とする全自動 D N A合成機を使用 して作成した。 全自動 D N A合成機と しては 米国のアプライ ドバイオシステム社 3 9 1 P C R -M A T E を使用 した。 ヌ ク レオチ ド、 3 '-ヌ ク レオチ ドを固定した担 体、 溶液、 および試薬は同社の指示に従って使用 した。 所定 のカ ップリ ング反応を終了 し、 ト リ ク ロ 口酢酸で 5 ' 末端の 保護基を除去 したオ リ ゴヌ ク レオチ ド担体を濃ア ンモニア中 にて室温で 1 時間放置する こ と によ り担体からオ リ ゴヌ ク レ ォチ ドを遊離させた。 次に、 核酸及びリ ン酸の保護基を遊離 させるために、 核酸を含む反応液を、 封を したバイ アル内に おいて濃アンモニア溶液中で 5 5 °Cにて 1 4時間以上放置し た。 担体及び保護基を遊離した各々 のオリ ゴヌ ク レオチ ドの 精製を米国のアプライ ドバイォシステム社の O P C力一 ト リ ッ ジを使用 して行い、 2 % ト リ フルォロ酢酸で脱 ト リ チル化 した。 精製後のプライマ一は最終濃度が 1 μ g / μ β と なる よ う に脱イオン水に溶解して P C Rに使用 した。
参考例 3 c D N Aの合成
参考例 1 によ リ得られた P o 1 y ( A ) + R N Aを用いて c D N Aの合成を行った。 すなわち、 P o l y ( A ) + R N Aの 2 g を脱イ オン水 1 2 . 3 £ に溶解し、 1 0 X緩衝 液 ( 5 0 0 m M K C 1 、 1 0 0 m M T r i s — H C 】
( p H 8 . 3 ) 、 1 5 mM M g C 1 2 、 0 . 0 1 %ゼラチ ン) 2 μ β 、 d N T P M i x t u r e (日本国、 宝酒造社 製) 4 μ β 、 前述のチ ロ シンキナーゼに特異的なアンチセ ン スプライマ ー Ρ Τ Κ Ι I ( 1 μ g / μ Ά ) 1 μ β 、 ア ビア ン ミ エロ ブ'ラ ス ト シス ウイノレス逆転写酵素 ( a V i a n m y e l o b l a s t o s i s v i r u s r e v e r s e t r a n s c r i p t a s e : 米国、 L i f e S c i e n c e社製 : 3 2 υ/ μ β ) 0 . 2 μ β 、 及び R N a s e イ ン ヒ ビタ一 (独国、 B o e h r i n g e r 社製 : 4 0 υ / μ β ) 0 . 5 μ β 加えて 3 7 °Cで 7 5分間放置後、 6 5 °Cで 1 0分 間放置した。
参考例 4 チロ シンキナーゼに特異的なプライマ一による P
C R
P C Rによ る増幅は以下のよ う に行った。 参考例 3 で得ら れた c D N A溶液 2 0 £ を使用 し、 1 0 X緩衝液 ( 5 0 0 m M K C 1 、 1 0 0 m M 丁 r i s — H C 1 ( p H 8 . 3 ) 、 1 5 mM g C 1 2 、 0 . 0 1 %ゼラ チン) 8 μ β 、 d N T P M i x t u r e ( 日本国、 宝酒造社製) 6 . 4 μ Ά 、 前述のチロ シンキナーゼに特異的なセンスプライマー Ρ Τ Κ
1 ( 1 μ g / μ β ) 1 . 5 β 、 及び T a q D N Aポ リ メ ラ —ゼ ( Am p l i T a q : 米国、 P e r k i n — E l m e r 社製、 5 U/ /i £ ) 0 . 2 £ を加え、 最後に脱イ オン水を 加えて全量を 1 0 0 μ β と して、 9 4 °Cで 1 分間、 3 7 °Cで 2分間、 7 2 °Cを 3分間からなる行程を 1 サイ ク ル と して 、 こ の行程を 4 0サイ クル行い、 最後に 7 2 °Cにて 7分間放置 して P C R を行った。 こ の P C R産物の一部を 2 %ァガロー スゲル電気泳動を行い、 ェチジュ ゥムブ口マイ ド ( 日本国、 日本ジーン社製) にて染色後、 紫外線下で観察し、 約 2 1 0 b p の c D N Aが増幅されている こ と を確認した。
参考例 5 P C R産物のク ロ ーニ ング及び塩基配列の決定
P C R産物の全量を低融点ァガロー ス (米国、 G I B C O 一 B R L社製) にて作成 した 2 %ァガロー スゲルにて電気泳 動 し、 ェチジュ ゥムブ口マイ ドにて染色後、 紫外線照射下に て約 2 1 0 b pのバン ドを切 リ 出 し、 ゲルと 同体積の蒸留水 を加え、 6 5 °Cにて 1 0分間加熱 し、 ゲルを完全に溶かした のち、 等量の T E飽和フ エ ノ ール (日本国、 日本ジー ン社製) を加えて、 1 5 0 0 0 r p m 5分間遠心分離後上清を分離し、 さ らに同様な分離作業を T E飽和フ エ ノ ール : ク ロ ロ フ オル ム ( 1 : 1 ) 溶液、 さ らにク ロ ロ フ オ ノレム にて行った。 最終 的に得られた溶液から c D N Aをエタ ノ ール沈澱して回収し た。 回収した c D N Aを制限酵素 E c o R I ( 日本国、 宝酒 造社製) 及び S a 1 I (日本国、 宝酒造社製) にて消化した のち、 ベク タ一への組み込みに用いた。
ベク ターと しては p B I u e s c r i p t I I K S (米国、 S t r a t a g e n e社製、 以下 p B l u e s c r i p t と示す) を用い、 先の c D N Aを組み込む前に、 制限 酵素 E c o R I 及び S a 1 I にて消化して、 上記の方法で精 製した。 これらの処理を行ったベク タ一と先の c D N Aのモ ル比力; 1 : 5 と なる よ う に混ぜ合わせて、 米国の N e w E n g l a n d B i o L a b社製 T 4 D N A リ ガ一ゼにて ベク タ一に c D N Aを組み込んだ。 c D N Aが組み込まれた p B I u e s c r i p t を大腸菌 J M 1 0 9 ( 日本国、 東洋 紡社製) に遺伝子導入し、 アンピシ リ ン (米国、 S i g m a 社製) を 5 0 / g /m l 含む L一 B r o t h ( 日本国、 宝酒 造社製) 半固型培地のプ レー ト に蒔き 、 1 2時間程度 3 7 °C に放置し、 現れてきたコ ロニーをラ ンダムに選択 し、 c D N Aが組み込まれている こ と を制限酵素 E c o R I 及び S a 1 I にて消化して、 2 1 0 b pの c D N Aが切れ出されて く る こ と を確認し、 確認されたク ローンについて、 組み込まれて いる c D N Aの塩基配列を米国のアプライ ドバイオシステム 社の螢光シークェンサ一にて決定した。 その結果、 未刺激の U T— 7細胞からはク ローニ ングされたが、 U T— 7 を巨核 球に分化させた場合にはク ローニングされなかったチロ シン キナーゼ遺伝子断片を得た。 この遺伝子断片は配列表の配列 番号 3 の 2 6 4 2番 目カゝら 2 8 1 2番目 であった。
参考例 6 c D N Aライブラ リ ーの作成及びチロ シ ンキナー ゼ遺伝子の全長ク ローニ ング及びその解析 前述の方法にて分離精製された未刺激状態の U T— 7 ¾ の P o l y ( A ) + R N Aを用レ、て c D N Aラ イ ブラ リ ー ' 作成した。 U T— 7 c D N Aライ ブラ リ ーの作成に: i p C :' M 8ベク タ一 c D N Aライブラ リ 一作成キ ッ ト (オラ ンダ I n V i t r ο g e n社製) を用い、 添付の作成方法に従つ て作成 した。 さ らに、 前述の方法に従って ヒ ト胎盤よ リ P o 1 y ( A ) + R N Aを精製し、 c D N Aライブラ リ 一を作成 した。 ヒ ト胎盤 c D N Aライ ブラ リ 一の作成には ; L Z A P c D N Aライブラ リ ー作成キ ッ ト (米国、 S t r a t a g e n e社製) を用い、 添付の作成方法に従って作成 した。
次に、 これらの c D N Aライ ブラ リ 一力 ら コ ロニーノヽイブ リ ダイゼーショ ンも し く はプラークハイ ブ リ ダイゼーシ ョ ン にて全長 c D N Aを持ったク ロ ー ンの検索を 5 X 1 05 相当 のコ ロニ一も しく はプラークから行った。 出現したコ ロニー も し く はプラーク をナイ ロ ンフイノレター ( H y b o n d N + : 英国、 Am e r s h a m社製) に転写し、 転写したナイ ロ ンフイノレターをアルカ リ 処理 ( 1 . 5 M N a C l 、 0 .
5 M N a O Hを染み込ませたろ紙上に 7分間放置) し、 次 いで中和処理 ( 1 . 5 M N a C l 、 0 . 5 M T r i s — H C 1 ( p H 7 . 2 ) 、 I mM E D丁 Aを染み込ませたろ 紙上に 3分間放置) を 2回行い、 次に S S P E溶液 ( 0. 3
6 M N a C l 、 0 . 0 2 M リ ン酸ナ ト リ ウム ( p H 7.
7 ) 、 2 mM E D T A) の 2倍溶液中で 5分間振と う後洗 浄し、 風乾した。 その後、 0 . 4 M N a O Hを染み込ませ たろ紙上に 2 0分間放置し、 5倍濃度の S S P E溶液で 5分 間振と う後洗浄し、 再度風乾した。 こ のフ ィ ルターを用いて 放射性同位元素32 Pにて標識された c D N Aプローブにてス ク リ 一ニングを行った。
放射性同位元素32 Pにて標識された c D N Aプロ一ブは以 下のよ う に作成した。 すなわち、 チロ シンキナーゼの部分 c D N Aが組み込まれた p B 1 u e s c r i p t よ り 、 S a 1 I と E c o R I にてベク タ一よ リ 切 リ 出 し、 低融点ァガ ロ ー スゲルから D N A断片を精製回収 した。 得られた c D N A断 片を D N Aラベ リ ングキ ッ ト (M e g a p r i m e D N A l a b e l i n g s y s t e m : 英国、 A m e r s h a m社製) を用いて標識した。 すなわち、 D N A 2 5 n g にプ ライマ一液 5 μ £ 及び脱イ オン水を加えて全量を 3 3 μ β と して沸騰水浴を 5分間行い、 その後、 d N T Ρ を含む反応緩 衝液 1 0 i fi 、 α — 3 2 P — d C T P 5 / fi 、 及び T 4 D N A ポリ ヌ ク レオチ ドキナーゼ溶液 2 μ £ を加えて、 3 7 °Cで 1 0分間水浴し、 更にその後、 セフ アデッ ク スカ ラム ( Q u i c k S p i n C o l u m n S e p h a d e x G — 5 0 : 独国、 ベ一 リ ンガーマ ンハイ ム社製) で精製し、 5分間 沸騰水浴を したのち、 2分間氷冷後使用 した。
前述の方法にて作成したフ ィ ルタ一を、 各々 の成分の最終 濃度が 5倍濃度の S S P E溶液、 5倍濃度のデンハル ト液
( 日本国、 和光純薬社製) 、 0 . 5 % S D S ( ドデシル硫酸 ナ ト リ ウム) 、 及び l O m g Z m l の沸縢水浴にょ リ 変性し たサケ精子 D N Aであるプレハイ ブ リ ダイゼ一シ ョ ン液中に 浸し、 6 5 °Cにて 2 時間振と う したのち、 前述の方法で32 P 標識されたプローブを含むプ レハイ プ リ ダイゼ一シ ョ ン液と 同一組成のハイ プ リ ダイゼーシ ョ ン液に浸し、 6 5 °Cにて 1 6 時間振と う し、 ハイプ リ ダイゼーシ ョ ンを行った。
次に、 フ イ ノレターを 0 . 1 % S D S を含む S S P E溶液に 浸 し、 6 5 °Cにて振と う し 2 回洗浄後、 さ らに 0 . 1 % S D S を含む 1 0倍希釈 した S S P E溶液に浸 し、 6 5 °Cにて 4 回洗浄 した。 洗浄を終了 したフ ィ ルタ一を增感ス ク リ ー ンを 使用 して、 オー ト ラ ジオグラフィ 一を行った。 その結果、 強 く 露光された部分のク ローンを拾い、 再度コ ロ ニー及びブラ ーク を蒔き直 し前述の方法にてス ク リ ーニ ングを行い、 完全 に単独のク ローンを分離した。
U T— 7のライブラ リ ーから分離されたク ローンの う ちィ ンサー トサイ ズの大きい 2 ク ローンを前掲の M a n i a t i s らの実験書に掲載の方法に従いブラ ス ミ ドを精製 し、 制限 酵素 X h o I にて消化し、 低融点ァガロース電気泳動にて c D N Aを精製し、 p B 1 u e s c r i p t に組み込んだ。 組 み込まれた c D N Aのサイ ズはおよそ 3 . O k b p及び 1 . 6 k b pであった。 また、 ヒ ト胎盤ライ ブラ リ ーから分離さ れたク ローンの う ちイ ンサ一 トサイ ズの大きい 2 ク ローンを M a n i a t i s らの実験書に掲載の方法に従いファージ D N Aを精製し、 制限酵素 E c o R I にて消化し、 同様に p B 1 u e s c r i p t に組み込んだ。 組み込まれた c D N Aの サイ ズはおよそ 3. 8 k b p ( c l o n e 2 ) 及び 3 . 5 k b p ( c l o n e 9 ) であった。
これらのク ローンの c D N Aの両端の遺伝子配列をス ゥェ —デン国、 フアルマシア社製 A L F D N Aシークェンサ一お よびス ウェーデン国、 フアルマシア社製 A L F シークェンサ —用ラベ リ ングキッ ト を用い、 添付の使用説明書に従い決定 した。 さ らに全長の塩基配列決定を行う ため 日 本国の宝酒造 株式 社製キロ シーク ェ ンス用デ リ ユ ーシ ョ ン ミ ユ ー タ ン ト キッ ト を用い、 添付の使用説明書に従い、 デ リ ュ一シ ヨ ンミ ユ タ ン ト を作成し、 c D N Aの両方向についての塩基配列を 決定した。
その結果、 全長の c D N Aがク ローニ ングされていないこ とが判明 したため、 さ らに c 1 0 n e 2 の制限酵素 X h o I サイ トから 5 ' 部分の約 2 0 0 b p (配列表の配列番号 3の 4 8 4番から 6 9 6番に当たる) を用いて、 市販のヒ ト胎児 肝臓 c D N Aライ ブラ リ 一 ; L g t 1 1 (米国、 C I o n t e c h社製) を同様な方法にてス ク リ ーニ ング した結果、 X h 0 I サイ ト ょ リ 5 ' 方向の c D N Aを含むク ローン ( c 1 0 n e M 1 、 配列表の配列番号 3 の 1番から 1 2 1 4番目 に 当たる) がク ローニ ングでき、 遺伝子配列をシーク ェ ンス し て、 本発明の全長 c D N A遺伝子の塩基配列が決定された。 全長の遺伝子配列を持った D N Aの作製は配列表の配列番 号 3 に記載の D N Aの X h o I サイ ト を用いて上記の c 1 o n e 2 と c 1 o n e M l のつなぎ、 ライ ブラ リ ーの リ ンカ一 の E c o R I サイ ト を用いて p B l u e s c r i p t の E c o R I サイ ト にサブク ローニングして作製した。 以下、 本べ ク タ一を p B S R T K F U L L と示す。
以上のよ う に して作製 した遺伝子の塩基配列を配列表の配 列番号 3に示 した。
尚、 この塩基配列から推定されるア ミ ノ酸配列を、 他の リ セブタ一型チ口 シンキナーゼである ヒ ト E P H (Hi rai el aに, Sc i ence, 238 , 1717 - 1720 , 1987 ) 、 ヒ ト E C K
(Li ndberg and Hunt er, Mo 1. Ce l l . Bio l . , 10, 6316 -6324, 1990 ) 、 ラ ッ ト E L K (Lhotak e t aに, Moに Ce l l . Bioに, 11, 2496-2502 , 1991 ) 、 ヒ ト H E K (Wi cks e t aに, Proc. Na t 1. Acad. Sc i . USA. , 89, 1611 - 1615, 1992 ) 、 マ ウ ス S E K ( G i I a r (1 i -Heb en s t r e i t e t a 1. , Oncogene, 7 , 2499-2506,
1992 ) 、 チキン C e k — 5 (Pasqua 1 e, Ce l l Regu l at ion, 2, 523-534, 1991 ) と比較した結果、 ア ミ ノ酸配列のホモ ロ ジ一は最も高い場合の E L Kで 5 6 . 3 %と低く 、 これら の物質と は異なるア ミ ノ酸配列を有する リ セプター型チロ シ ンキナーゼである こ とが分かった (以下の参考例及び実施例 では、 屡々 、 単に 「 リ セブタ一型チロ シンキナーゼ」 又は
「チロ シンキナーゼ」 と称する) 。
参考例 7_ リ セプタ一型チロ シンキナーゼ遺伝子のノ ーザン ブロ ッティ ングによる m R N Aの発現
参考例 6 で得られた リ セプタ一型チ口 シンキナーゼの m R N Aの発現を調べるため、 あらカゝじめ m R N Aが転写されて レ、るフ ィ レターである 米国、 Clont ech社 Human Mu l t i p l e Ti ssue Nor thern Blot , Human Mu l t i p l e Ti ssue Nor thern B lo t 11、 Human Fe t a l Mu l t i p le Ti ssue Nort hern Blot 並び に参考例 1 に示 した方法にて回収された m R N Aをァガロー スゲル電気泳動 し、 Z e t a — P r o b (米国、 B i o — R a d社製) に ト ラ ン ス フ ァ 一 して作成したフ ィ ルタ—を用い p B S R T K F U L Lを制限酵素 S m a I にて消化して、 1 %のァガロ ースゲルで電気泳動を行い、 7 4 6 b p の断片 (配列表の配列番号 3の 6 1 0番目から 1 3 5 5番目) を切 リ 出 し、 G e n e c l e a n I I (米国、 B I O 1 0 1社 製) を用いて精製した遺伝子断片を前掲の D N Aラベ リ ング キ ッ ト 、 M e g a P r i m e D N A l a b e l i n g s y s t e m : 英国、 Am e r s h a m社製) にて前述の方 法で32 P標識し発現を調べた。
その結果、 ヒ ト成人組織の う ち心臓、 胎盤、 肺、 肝臓、 骨 格筋、 腎臓、 すい臓、 脾臓、 前立腺、 卵巣で発現が認められ た。 しかしながら、 脳、 胸腺、 精巣、 小腸、 大腸、 末梢血リ ンパ球においては発現が認められなかった。 また、 ヒ ト胎児 組織では心臓、 肺、 肝臓、 胬臓において発現が認められたが 脳においては発現が認められなかった。
また、 血液細胞株では、 前述の骨髄巨核芽球性白血病細胞 株 U T— 7 、 ヒ ト慢性骨髄性白血病細胞株 K 5 6 2 ( 日本国 理化学研究所、 細胞開発銀行よ り 入手可能、 N o . R C B O 0 2 7 ) 及びヒ ト急性巨核芽球性白血病細胞株 C MK (B100 d 74:42 , 1989 ) に発現されてお リ 、 非血液細胞株では肝細胞 ガン細胞株 H e p 3 B (ァ メ リ カ ン ' タ イ プ ' カルチャー ' コ レ ク シ ョ ン (以下 A T C C と示す) よ り 入手可能、 H B 8 0 6 4 ) 及びヒ ト胎児肺繊維芽細胞株 M R C— 5 (日本国、 理化学研究所、 細胞開発銀行よ リ 入手可能、 N o . R C B O 2 1 1 ) に発現が認め られた。 さ らに、 U T— 7、 K 5 6 2 C MKに於いては P MAによ る細胞分化を起こ させる とその 発現がほぼ完全に認められなく なる こ と が確認された。 しか しなが ら、 ヒ ト さい帯血から樹立された細胞株 KMT— 2
( 日本国、 理化学研究所、 細胞開発銀行よ リ 入手可能、 N o R C B 0 7 1 2 ) , ヒ ト慢性骨髄性白血病細胞株 K G 1 a
(A T C Cょ リ入手可能、 C C L 2 4 6 . 1 〉 、 急性 リ ンパ 球性白血病細胞株 MO L T— 4 (A T C Cよ り 入手可能、 C C L 1 5 8 2 ) に於いては発現が認め られなかった。
以上のこ とから、 こ の遺伝子は血液細胞が未分化の状態に おいて発現されてお リ 、 血液細胞が分化するに と もない、 そ の発現が消失する こ とが推察された。 従って、 この リ セブタ 一型チロ シンキナーゼは血液幹細胞の維持、 巨核球分化に fV: 連する と考えられた。
参考例 8 リ セブター型チロ シンキナ一ゼポ リ ぺブチ ト ¾ ¾ 細胞株の作成
(工程 1 ) 配列表の配列番号 2のア ミ ノ 酸配列を有する リ セ プタ—型チロ シンキナーゼポ リ べプチ ドの発現細胞株 B a /
F 3 Z F U L L , B a / F 3 / F U L L F L A G , B a l b ノ F U L L及び B a 1 b Z F U L L F L A Gの作製 :
配列表の配列番号 2に記載の リ セプター型チロ シンキナー ゼポ リ べプチ ドをコ一 ドする D N Aおよび米国、 コ ダッ ク社 製 I B I F L A Gを用いて、 配列表の配列番号 2のァ ミ ノ 酸配列の C末端に 8 ア ミ ノ酸、 すなわちア ミ ノ 酸配列と して Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lysを持つポ リ ペプチ ド ( F L A G , 配列表の配列番号 1 3 に記載) を付加 したポ リ ぺプ チ ドをコー ドする D N Aを、 S R ct のプロモーターとネオマ イ シン耐性遺伝子を含む発現べク ター p MK I T n e o (丸 山 ら、 9 1 年度日本分子生物学会予稿集、 日本国、 東京医科 歯科大学丸山よ リ入手可能) に各々別々 につなぎ、 発現べク タ一を作製した。
配列表の配列番号 2 のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプチ ド発現細胞の発現べク ター作製にあたって、 配列表の配列番 号 3 の 3 ' 非転写領域を除き制限酵素 E c o R I サイ ト を付 力 Uするため、 5' -AACTCGAGATCTCTGCTGAGGACCTG-3'の酉己歹 iJであ るオリ ゴ D N A (プライマ一 1 、 配列表の配列番号 1 0 に記 載) 、 5' - AAGAATTCTCAGTACTGCGGGGCCGGTC - 3'の配歹 IJであるォ リ ゴ D N A (プライマ一 2 、 配列表の配列番号 1 1 に記載) ををブ 7ラフイイ ママ一—とと しして!:用用いレヽて、、 pp B B S ϋ R K T I KK FF UU LL LL ををテア ンンプ ー ト と して用いて P C Rを行った。 およそ 1 6 0 b p の D N
Aが增幅されている こ と をァガロ ースゲル電気泳動で確認後 こ の P C R産物を参考例 5 記載の方法にて精製 して、 制限酵 素 X h o I 及び E c o R I にて処理し、 同様に処理した p B l u e s c r i p t に米国、 N e w E n g l a n d B i o L a b社製 T 4 D N A リ ガ一ゼにて こ の精製した遺伝 子をつないでサブク ロ一ユング した。 その後、 4 ク ローンの コ ロ ニーからプラス ミ ド D N Aを精製して、 シー ク ェ ンスを して遺伝子配列を確認し、 遺伝子配列に誤 り がなく 目的の遺 伝子配列、 すなわち配列表の配列番号 3 の D N A配列の 3 2 3 0番から 3 3 7 3番の配列を持ったフラ グメ ン トであるこ と を確認した。 以下、 本フラ グメ ン ト を有するベク タ一を p B S F 1 とする。
さ らに、 配列表の配列番号 2 の リ セプター型チロ シンキナ —ゼ全長ア ミ ノ酸配列のポ リ べプチ ドの C末端に 8 ア ミ ノ酸 すなわちア ミ ノ 酸配列と して Asp Ty r Ly s Asp Asp Asp Asp Lysを持つポ リ ペプチ ド ( F L A G、 配列表の配列番号 1 3 に記載) を付加したポ リ べプチ ドをコ一 ドする遺伝子配列を 持つ発現べク タ一の作製にあたって、 同様な方法で上記のプ ライマ一 1 、 5' -GGGAATTCATTTATCATCATCATCTTTATAATCGTACTG CGGGGCCGGTCCTCCTGT-3' の配列であるオ リ ゴ D N A (プライ マ一 3 、 配列表の配列番号 1 2 に記載) をプライマーと して P C R を行レヽ、 p B 1 u e s c r i p t にサブク ローニ ング して、 4 ク ローンをシーク ェ ンス し、 遺伝子配列を確認して 目的の遺伝子配列、 すなわち配列表の配列番号 3 の D N A配 歹 IJの 3 2 3 0番カ ら 3 3 7 0番の酉己歹 ijの 3 ' 端に 5'— GATTATA AAGATGATGATGATAAATGA-3' (酉己歹リ表の酉己歹 IJ番号 1 3 に記載) がつながった配列を有する フ ラ グメ ン トである こ と を確認し た。 以下、 本フラ グメ ン ト を有するベク タ—を P B S F 2 と する。 次に、 p B S R T K F U L Lを制限酵素 B a m H I ( 日本 国、 宝酒造社製) で消化し、 上記と 同様な方法で精製 したお よそ 3 k b p の遺伝子断片、 すなわち配列表の配列番号 3の D N A配列の 3 8 4番から 4 2 9 0番の配列を有する遺伝子 の 3 ' 末端に え Z A P c D N Aライ ブラ リ ー作製に使用 した リ ンカ一、 すなわち 日本国の宝酒造社製 E c o R I - N o t I — B a mH I A d a p t o r の B a m H I 部分がつなが つた配列を有する D N A断片を、 同様に B a m H I で消化後 脱リ ン酸化処理を行った P U C 1 9 ( 日本国、 宝酒造社製) に T 4 D N Aリ ガーゼでつなぎ、 サブク ロ一ユング した。 遺伝子の方向は配列表の配列番号 3の D N A配列の 5 ' 方向 の B a m H I の部分が p U C 1 9 のマルチク ローニングサイ トの S a 1 I 側にぁ リ 、 3 ' 方向が E c o R I 側にある こ と を確認されたク ローンを選択 した。 以下、 こ のべク タ一を p U C R T K F U L L とする。
このよ う に して作製された P U C R T K F U L Lを制限酵 素 S a 1 I と B g 1 I I にて消化 し、 ァガロースゲル電気泳 動にておよそ 3 k b p のフラ グメ ン ト 、 すなわち配列表の配 列番号 3の D N A配列の 3 8 4番から 3 2 3 0番の配列の 5 末端の先に P U C 1 9 の制限酵素サイ 卜 の S a 1 I から B a m H I までの部分がつながったフ ラ グメ ン ト を切 リ 出 し、 前 述の方法で精製した。 この遺伝子断片を F 3 とする。 同様に p B S F l及び P B S F 2ついて制限酵素 S a 1 I 及び B g 1 I I 消化を行い、 マルチク ローユングサイ 卜の S a 1 I サ ィ トカ らベク ター中のフラ グメ ン トの B g 1 I I サイ 卜の部 分およそ 3 0 b P の遺伝子断片を除いた遺伝子断片を上記の 方法にて精製した。 これらの遺伝子断片を各々 F 1 , F 2 と する。 そ して、 F 1 と F 3 、 F 2 と F 3 を各々前述の方法で つなぎ、 制限酵素 S a 1 I 及び N o t I で配列表の配列番号 3のポ リ べプチ ドをコ一 ドする部分の遺伝子断片が切 り 出さ れるベク タ一 p B S F U L L l及び制限酵素 S a 1 I 及び N 0 t I で配列表の配列番号 2のポ リ ペプチ ドの C末端に F L A Gァ ミ ノ酸配列を有するポ リ べプチ ドをコ一 ドする部分に 対応する遺伝子断片が切 リ 出されるべク ター P B S F U L L 2 を作製した。
このよ う に して作製されたべク タ— P B S F U L L l 、 p B S F U L L 2 を制限酵素 S a 1 I 、 N o t I 、 P v u l に て消化 し、 電気泳動にておよそ 3 k b p の遺伝子断片、 すな わち リ セプタ一型チロ シンキナーゼのァ ミ ノ酸配列をコー ド する遺伝子断片部分を含む遺伝子断片を分離し精製 した。 こ の 2種の遺伝子断片を前掲の p MK I T n e o を制限酵素 S a 1 I 及び N o t I 処理して、 ス タ ッ フ ァ一部分を除いたも のに T 4 D N A リ ガ一ゼにてつなぎ、 リ セプター型チロ シ ンキナーゼの発現べク タ一を構築 した。 以上のよ う に作製さ れた F L A G配列を含まないベク タ一を p MK F U L L、 F L A G配列を含むベク タ一を p MK F U L L F L A G とする。 遺伝子導入する細胞株はマ ウ ス p r o — B c e 1 1 1 i n e B aノ F 3 (日本国、 理化学研究所、 細胞開発銀行 ょ リ 入手可能、 N o . R C B 0 8 0 5 ) 及びマ ウス繊維芽細 胞 B a l b // 3 T 3 c l o n e A 3 1 (日本国、 理化学 研究所、 細胞開発銀行よ り 入手可能、 N o . R C B 0 0 0 5 ) に行った。 遺伝子導入前の細胞の培養は B a / F 3は R P M 1 1 6 4 0 (米国、 G I B C O— B R L社製) 、 1 0 % F C S、 l O O Ai g /m l マウス I L— 3 (米国、 I n t e r g e n社製) で培養し、 B a 1 b Z 3 T 3 は D— M E M (ダル べッ コ改編 M E M培地、 米国、 G I B C O— B R L社製) 1 0 % F C Sにて培養 した。
発現べク タ一は制限酵素 N r u I ( 日 本国、 宝酒造社製) にて消化して、 直鎖型に してから遺伝子導入 した。
B a / F 3 での遺伝子導入細胞株の作製は次のよ う に行つ た。 すなわち、 前日 に細胞の培地を交換し、 細胞数を 5 X I 0 5 c e 1 1 s Zm l に して一晚培養 した。 翌日 、 遠心分離 にて細胞を沈澱させ、 P B S (—) にて 2回遠心洗浄後、 1 mM M g C 1 2 、 P B S (一) に 1 X 1 0 7 e e l I s / m l と なるよ う に して細胞を調製した。 遺伝子導入は米国の B i o - R a d社製遺伝子導入装置ジー ンパルサ一を用いた エ レク ト ロ ポレーシ ヨ ン法で行った。 上記の細胞懸濁液を 5 Ο θ β エ レク ト ロ ボ レ—シ ヨ ン専用セノレ ( ◦ . 4 mm) に 取り 、 発現べク タ一を 2 0 / g加え、 氷中で 5分間放置する , その後、 1 回 目 は 6 0 0 Vの条件で電圧をかけ、 1 分間室温で放置後、 更に 2回目 は 9 6 0 F 、 2 5 0 Vの 条件で電圧をかけた。 その後、 氷中で 5分間放置後、 直径 1
0 c m細胞培養用デイ シュで上記の培地 1 0 m 1 で一晚培養 を行った。 翌日 、 遠心にて上記の培地に G 4 1 8 (米国、 S
1 g m a 社製) を l m g Zm l と なる よ う に加えた培地の 2 0 m l に懸獨 し、 2 4穴細胞培養プレー トに 1 m 1 分けて培 養 した。 l m g Zm 1 の G 4 1 8入 り の同様な培地を用いて 2 日 おきに半量の培地を交換して培養を 1 0 日 間程度ほど行 い、 細胞が増殖してきたゥエルから細胞を培地量 1 0 m 1 で 細胞濃度 1 X 1 0 6 c e 1 1 s /m l 程度まで增やした後、 細胞濃度が 0 . 0 2力 ら 0 . 0 5 c e l l s /m l になるよ う 9 6 穴プレー 卜に限外希釈 して培養 し、 ク ロ一ニングをお こない . ク ローン化された遺伝子の安定発現する細胞を得た このよ う に して作製された B a / F 3 に遺伝子導入 し、 配列 表の配列番号 2 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプチ ドを安定発現する細胞株を B a / F 3 / F U L L と命名 し、 配列表の配列番号 2 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの C末端に F L A Gア ミ ノ酸配列を有するポ リ べプチ ド安定発現細胞株を B a ノ F 3 / F U L L F L A G と命名 し た。 また、 同 じ方法で 1^ 1: 1 丁 11 6 0 そのものを遺伝子導 入したコ ン ト ロールの形質転換細胞株を作製し、 これを B a / F 3 Z C O N と命名 した。
B a 1 b / 3 T 3 での遣伝子導入細胞株の作製は次のよ う に行った。 すなわち、 前日 に細胞の培地を交換し、 細胞数を 直径 1 0 c mの細胞培養用ディ ッ シュあた リ 5 X 1 0 6 個に して 1 0 m 1 の上記培地を加え一晩培養 した。 翌日 、 遠心分 離にて細胞を沈澱させ、 P B S (― ) にて 2 回遠心洗浄後、 1 m M M g C 1 2 、 P B S (― ) に 1 X 1 07 e e l 1 s Z m l と なる よ う に して細胞を調製した。 遺伝子導入は米国 の B i o - R a d社製遺伝子導入装置を用いたエ レク ト ロポ レ一シ ョ ン法で行った。 上記の細胞懸濁液 5 0 0 μ fi をエ レ ク ト ロ ポ レーシ ヨ ン専用セル ( 0 . 4 m m ) に取 リ 、 発現べ ク タ一を 2 0 / g加え、 氷中で 5 分間放置する。 その後、 あ いだを 1 分間室温で放置して、 2 回の 3 F、 4 5 0 Vの電 圧をかけた。 その後、 氷中で 5分間放置後、 直径 1 0 c m細 胞培養用ディ ッシュで上記の培地 1 0 m 1 で 3 日 間培養を行 つた。 3 日後、 上記の培地に G 4 1 8 (米国、 S i g m a 社 製) を 4 0 0 μ g / m \ と なるよ う に加えた培地に交換し、 その後 2 日 おきに培地の 1 Z 3 を交換して 1 0 日 間ほど培養 を続けた。 1 0 日後、 ディ ッシュ上に形成されたコ ロニーを ト リ ブシン溶液 (米国、 G I B C O — B R L社製) を使って はが し、 ク ロ ーン化された遺伝子の安定発現細胞株を得た。 このよ う に して作製された B a 1 b / 3 T 3 の配列表の配列 番号 2 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの安定 発現細胞株を B a 1 F U L L と命名 し、 配列表の配列番 号 2 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの C末端 に F L A Gア ミ ノ酸配列を有するポ リ べプチ ドの安定発現細 胞株を B a l b Z F U L L F L A G と命名 した。 また、 同 じ 方法で P M K I T n e o そのものを遺伝子導入したコ ン ト ロ —ルの形質転換細胞株を作製し、 これを B a 1 b Z C O N と 命名 した。
(工程 2 ) 配列表の配列番号 1 のア ミ ノ 酸配列を有する リ セ プター型チロ シンキナーゼポリ べプチ ドの発現細胞株の作製 また、 リ セプタ一型チロ シンキナーゼの細胞外部分、 つま リ配列表の配列番号 1 に記載のポ リ べプチ ドを含有するポ リ ぺブチ ドを動物細胞に産生させる発現べク タ一を構築 した。
すなわち、 配列表の配列番号 1 の リ セプター型チロ シンキ ナ一ゼ細胞外部分ァ ミ ノ酸配列のポ リ べプチ ドの C末端に 8 ア ミ ノ 酸、 すなわちア ミ ノ 酸配列と して Asp Ty r Lys Asp A s p Asp Asp L y sを持つポ リ ペプチ ド ( F L A G配列表の配列 番号 1 3 に記載) を付加したポ リ ペプチ ドをコー ドする遺伝 子配列を持つ発現ベク ターの作製にあたって、 全長の場合と 同様な方法で、 5' -CGGAATTCGTGCGGTTCCTGAAGACGTCAG-3'の配 列であるオ リ ゴ D N A (プライマ一 4 、 配列表の配列番号 1 4 に記載) 、 5' -GGGAATTCATTTATCATCATCATCTTTATAATCCTGCTC CCGCCAGCCCTCGCTCTCA - 3,の配歹リであるオ リ ゴ D N A (プライ マ一 5 、 配列表の配列番号 1 5 に記載) をプライ マ一と して . 配列表の配列番号 3 の遺伝子を含む p B 1 u e s c r i p t をテ ンプ レー ト と して用いて P C Rを行った。 およそ 1 5 0 b p の D N Aが增幅されている こ と をァガロースゲル電気泳 動で確認後、 この P C R産物を参考例 5記載の方法にて精製 して、 制限酵素 E c o R I にて消化し、 同様の制限酵素処理 を し、 末端の脱 リ ン酸処理した p B 1 u e s c r i p t に米 国の N e w E n g l a n d B i o L a b 社製 T 4 D A リ ガーゼにて遺伝子をつないでサブク ローニング した c その後、 1 0 ク ローンのコ ロニー力 らプラス ミ ド D N Aを精 製して、 シーク ェンスを して遺伝子配列を確認 し、 遺伝子配 列に誤り がな く 目的の遺伝子配列、 すなわち配列表の配列番 号 3 の D N A配列の 1 8 5 3番カゝら 2 0 2 0番の配列の 3 ' 端に 5, -GATTATAAAGATGATGATGATAAATGA-3' (酉己歹リ表の酉己歹 ,j番 号 1 3 に記載) がつながった配列を有するフ ラ グメ ン トであ る こ と を確認した。 また、 P B 1 u e s c r i p t つながつ た遺伝子断片の方向は遺伝子配列確認の際に、 配列表の配列 番号 3 に示す配列の 5 ' 末端部分の上流に P B 1 u e s c r
1 p t のマルチク ロ一ニングサイ 卜の S a 1 I サイ ト 、 また 3 ' の F L A G配列をコー ドする遺伝子配列の下流に N 0 t I サイ トが来る よ う につながったク ローンを選びだした。 以 下、 本ベク ターを p B S F 4 とする。
上記のベク ター p U C R T K F U L Lを制限酵素 S a 1 I 及び A a t I I ( 日本国、 東洋紡社製) にて消化し、 上記の 方法でおよそ 1 . 6 k b p の遺伝子断片を精製した。 本遺伝 子断片は配列表の配列番号 3の D N A配列の 3 8 4番から 1 8 5 2番までの配列を含む。 同様に、 P B S F 3 を制限酵素 S a 1 I 及び A a t I I で消化し、 上記の方法でおよそ 3 .
2 k b p の遺伝子断片を精製した。 この 2つの遺伝子断片を つなぎ作製されたべク タ一を、 更に制限酵素 S a 1 I 及び N o t I にて消化して上記の発現ベク ター P MK I T n e o に つないで、 配列表の配列番号 1 のァ ミ ノ 酸配列の C末端に F L A G配列を有するポ リ べプチ ドを産生し う るべク タ一を作 製した。 この発現べク タ一を P MK E X F L A G とする。
さ らに、 同様に配列表の配列番号 1 に記載のア ミ ノ酸配列 を有するポ リ ペプチ ドの C末端にヒ トイ ムノ グロブ リ ン I g G 1 の ヒ ンジ部分以下の F c部分のア ミ ノ酸配列を有するポ リ ぺプチ ドを産生 し う るベク ターは以下のよ う に作製した。 73
すなわち、 配列表の配列番号 1 の リ セプタ一型チロ シンキナ ーゼ細胞外部分ア ミ ノ酸配列のポ リ ペプチ ドの C末端にヒ ト I g Gのヒ ンジ部分以下の F c部分のア ミ ノ酸配列を付加 し たポ リ ぺプチ ドをコ一 ドする遺伝子配列を持つ発現べク ター の作製にあたって、 上記の場合と 同様な方法で、 プライマ一 4 、 5' -AAGGATCCTGCTCCCGCCAGCCCTCGCTCTCA-3 'の配歹りである オリ ゴ D N A (プライマ一 6 、 配列表の配列番号 1 6 に記載) をブライマーと して、 配列表の配列番号 3の遺伝子を含む P B 1 u e s c r i p t をテ ンプレー ト と して用いて P C Rを 行った。 およそ 1 5 0 b p の D N Aが增幅されてレ、る こ と を ァガロースゲル電気泳動で確認後、 こ の P C R産物を参考例 5記載の方法にて精製して、 制限酵素 E c o R I 及び B a m H I にて消化し、 同様の制限酵素処理を した P B 1 u e s c r i p t に米国の N e w E n g l a n d B i o L a 社製 T 4 D N A リ ガ一ゼにて遺伝子をつないでサブク c— ニング した。 その後、 得られた 1 0 ク ロ ーンの コ ロ ニーか プラス ミ ド D N Aを精製して、 シーク ェ ンスを して遺伝子配 列を確認した結果、 遺伝子配列に誤リ がなく 目 的の遺伝子配 列、 すなわち配列表の配列番号 3 の D N A配列の 1 8 5 3番 から 2 0 2 0番の配列を有するフ ラ グメ ン トである こ と を確 認した。 以下、 このべク タ一を P B S F 5 とする。
次に、 ィ ム ノ グロブ リ ン F c タ ンノ、。ク と の融合タ ンパク の 作製は Z e t t 1 m e i s s 1 らの方法 (Zet t lmeissl e t a 1. , DNA cel l Bioに, 9, 347-354, 1990) に従って 、 イ ン ト ロ ン を含むゲノ ム D N Aを用いた遺伝子を利用 し、 その遺伝子を P C R法を用いて作製した。 すなわち、 ヒ トゲノ ム D N Aを テ ンプ レー ト と して使用 して、 ヒ ト I g G l F c 部分をコ一 ドする遺伝子配列を制限酵素 B a m H I サイ トのついた 5' -A ACCATCCCCGAGGGTGTCTGCTGGAAGCCAGGCTCA-3' の配歹リを有する オ リ ゴ D N A (プライマー 7 、 配列表の配列番号 1 7 に記载) 、 制限酵素 X b a I サイ トのつレ、た 5' - CCTCTAGAGTCGCGGCCGT CGCACTCATTTACC - 3, の配歹リを有するオリ ゴ D N A (プライマ — 8 、 配列表の配列番号 1 8 に記載) をプライマーと して用 いて P C Rを行い、 およそ 1 . 4 k b p のバン ドを精製し、 制限酵素 B a m H I 及び X b a I (日本国、 宝酒造社製) で 処理を して、 同様の制限酵素処理を した P B 1 u e s c r i p t に米国の N e w E n g l a n d B i o L a b社製 T 4 D N A 1 i g a s e にて遣伝子をつないでサブク ロ 一二ングした。 その後、 ブラス ミ ド D N Aを精製して、 シー クエンスを して遺伝子配列を確認し、 遺伝子配列が確かにヒ ト I g G l のへビーチェーンのヒ ンジ部分にあたるゲノ ム D N Aである こ と を確認した (その配列は K a b a t e t a I . , Seque n c e of Immunologica l Interest, N I H pub cat ion No 91-32 42, 1991を参照のこ と) 。 以下、 このべク タ一を p B S h l g F c とする。
上記のベク ター p B S F 5 を制限酵素 B a m H I 及び E c o R I にて消化し、 上記の方法にておよそ 1 5 0 b p の遺伝 子断片を精製し、 ついで上記のベク タ一 p B S h I g F c を 制限酵素 B a mH I 及び E c o R I にて消化し、 上記の方法 にておよそ 4 . 4 k b p の遺伝子断片を精製し、 この両者を 米国の N e w E n g l a n d B i o L a b社製 T 4 D Ν Α リ ガーゼにて遺伝子をつなぎ、 次にこのよ う に作製さ れたベク タ一を制限酵素 S a 1 I 及び A a t I I で消化 し、 上記の方法でおよそ 4 . 4 k b p の遺伝子断片を精製した。 また同時に、 上記のベク ター P U C R T K F U L Lを制限酵 素 S a 1 I 及び A a t I I で消化し、 上記の方法でおよそ 1 · 6 k b P の遺伝子断片を精製した。 この 2つの遺伝子断片を つなぎ作製されたベク ターを、 更に制限酵素 S a 1 I 及び N 0 t I にて消化して上記の発現ベク ター P MK I T n e o に つないで、 配列表の配列番号 1 のア ミ ノ酸配列の C末端に ヒ ト I g G l F c のア ミ ノ酸配列を有するポリ ペプチ ド産生べ ク タ一を作製した。 この発現べク タ一を p MK E X I g とす る。
発現ベク ター p MK E X F L A G、 及び p MK E X I gの 遺伝子導入は C O S— 7 (日本国、 理化学研究所、 細胞開発 銀行から入手可能、 R C B 0 5 3 9 ) にて行った。 C O S— 7の培養法並びに遺伝子導入方法は B a 1 b / 3 T 3 と同様 に行い、 遺伝子を導入した細胞を得た。
遺伝子導入の翌日 、 細胞の培養上清無血清の D— M E M (米国、 G I B C O— B R L社製) を 4 日間おきに交換し、 2週間にわたって培養上淸を分取した。 分取した培養上清を 各々セン ト リ コ ン 3 0 (米国、 ア ミ コ ン社製) にてバッファ 一を培地から P B S (—) に交換及び 1 0倍に澳縮した。
細胞上淸中に配列表の配列番号 1 に示すポリ べプチ ドを含 有するポ リ ペプチ ドが産生されている こ と を確認するため、 以下のよ う にウェス タ ンブロ ッ トにて確認した。 すなわち、 濃縮した培養上淸を 日本国の A C I ジャパン社製の S D S— P A G E用電気泳動槽及び S D S — P A G E用ポ リ アク リ ノレ ア ミ ドゲル (グラディエン トゲル 5〜 1 0 % ) を用い、 添付 の取扱い説明害に従って S D S— P A G Eを行なった。 サン ブルは 2 —メルカプ トエタ ノール ( 2 — M E ) を加え加熱処 理した還元条件下のサンブルと、 その処理を行わなかった非 還元条件下のサンプルについて行い、 マ一力一と しては英国 の Am e r s h a m社製レイ ンボーマーカ一 (高分子量用) を用い、 サンブルバッファー、 泳動ノく ッ ファーにっレ、ては添 付の取扱い説明書に従って作製した。 S D S— P A G E終了 後、 アク リ ルア ミ ドゲルを P V D Fメ ンブラ ンフイ ノレター
(米国、 B i 0 R a d社製) に米国の B i 0 R a d社製ミ ニ ト ラ ンスブロ ッ トセルによ リ転写 した。
こ の よ う に作製されたフ ィ ルタ —を 5 % B S A (米国、 S i g m a社製) 、 T B S— T ( 2 0 m M T r i s 、 1 3 7 m N a C 1 ( p H 7 . 6 ) 、 0 . 1 % T w e e m 2 0 ) に 4 °C—晚摇すり ながらブロ ッキング した。 目 的のタ ンパク 質が F L A Gキメ ラ の場合は一次抗体と してマ ウ スモ ノ ク 口 ーナル抗体 A n t i — F L A G 2 (米国、 コダッ ク社製) 、 二次抗体と してペルォキシダーゼ標識抗マウス I g羊抗体
(英国、 Am e r s h a m社製) を反応させた。 また、 I g Gキ メ ラ の場合は、 ペルォキシダーゼ標識抗ヒ ト I g羊抗体
(英国、 Am e r s h a m社製) を反応させた。 抗体の反応 時間は各々室温で一時間反応させ、 各反応間は T B S 一丁に て 1 0分間室温で摇すリ 洗浄する操作を 3回づっ繰リ返した。 最後の洗浄後、 フィルターを英国の Am e r 5 3 111社製 £ C L ウェスタ ンブロ ッティ ング検出システムの反応液に五分 間浸 し、 ポリ塩化ビニ リ デンラ ップに包んで X線フ ィ ルムに 感光させた。 その結果、 F L A Gキメ ラではいずれの場合も およそ 8 0 k ダル ト ン程度のタ ンパクが、 また、 I g Gキメ ラでは 2 — M E処理の場合は 1 1 O k ダル ト ン、 未処理の場 合は 2 2 0 k ダル ト ンの蛋白が検出できた。 以上の結果から、 目的の配列表の配列番号 1 に記載のァ ミ ノ酸配列を含有する ポ リ べプチ ド産生細胞を得る こ とが出来た。 細胞外部分はァ ミ ノ酸組成から予想される分子量よ リ と もにおよそ 2 0キロ ダル ト ン大き く 、 糖鎖付加されている と予想された。
参考例 9 リ セブタ一型チロ シンキナーゼ細胞外部分蛋白の 精製
参考例 8の工程 2で得たベク ター P M K E X F L A G及び p K E X I gを用いて形質転換した細胞の培養上清を各々 5 リ ッ トル作製した。 これらの培養上清を米国、 コ ダック社 製 A n t i — F L A G M 2 A f f i n i t y G e l 力 ラムおよびス ウェーデン国のフアルマシア社製 p r 0 t e i n G セファ ロースカラ ムも し く は P r o t e i n A セフ ァ ロースカラムに通 して、 各々のタ ンパク をカ ラムに吸 着させた。 カラムのサイ ズは共に 1 c m X 3 c mで容積はお よそ 2 m l であ リ 、 流速は全て l m l Zm i n . で行った。 吸着後、 カラムを P B S (—) 2 O m l で洗浄し、 その後、 0 . 5 T r i s—グリ シン ( P H 3 . 0 ) で溶出 した。 溶 出画分を 2 m l ずつ分取し、 0. 5 MT r i s — H C I ( p H 9 . 5 ) 2 0 0 μ βづっ加えて、 各々 の画分を上記の方法 で S D S— P A G Eを行った。 泳動が終わった後、 日本国の 和光純薬社製銀染キッ ト ヮ コ一 I I で添付の説明書に従い染 色した。 その結果、 F L A Gキメ ラ、 I g G F c キメ ラ と も 参考例 8に記載したウェスタンプロ ッ 卜の結果と 同様大き さ のバン ドに精製タンパクが得られている こ とが確認できた。 この結果から、 配列表の配列番号 1記載のポ リ べプチ ドを純 品で得る こ とが出来た。 よ リ 高純度なポ リ べプチ ドを得るた めに、 上記の方法で精製された F L A Gキメ ラ 、 I g G F c キメ ラ タ ンパク を各々 のゲル濾過にて精製を行った。 ァフ ィ 二ティ 一カラムからの溶離液を米国のア ミ コ ン社製セン ト リ コ ン 3 0にて澳縮及び P B S (― ) へのバッフ ァー交換を行 い、 ゲル濂過はス ウェーデン国のフアルマシア社製 F P L C システムを用い、 同社の S u p e r o s e 1 2 カ ラムにて行 つた。 参考例 8 の 2 — M Eな しの条件のウェス タ ンブロ ッ ト 結果と同様の分子量の位置に溶離される メ イ ンピーク を分取 した。 以下、 このよ う に精製された配列表の配列番号 1 に記 載のア ミ ノ酸配列を有するポ リ べプチ ドと F L A G も し く は I g G F c と のキメ ラ タ ンパク を各々 E X F L A G — P T N . E X I g — P T Nと示す。
参考例 1 0 リ セプタ一型チ口 シンキナーゼを認識するモ ノ ク 口一ナル抗体の榭立及び リ セプター型チコ シ ンキナーゼの発現の確認
上記のよ う に精製された E X F L A G — P T Nを免疫原と して、 成書の方法に従いマウスモ ノ ク ローナル抗体を作成し た。 免疫は 3 回行い、 1 回に 1 匹あた リ 3 0 /i g を免疫 し、 3 回目 の免疫前に採血を行い、 血淸を分取して、 免疫 した E X F L A G — P T Nを用いた抗体価の測定を行い、 ス ク リ 一 ニングの際には細胞培養上清が E X F L A G — P T N、 E X I g — P T Nを共に認識する ゥエルからク ロ ーユングを行つ た。 その結果、 マウスモノ ク ローナル抗体を産生するハイブ リ ドーマが 3株、 すなわちク ローン 3 8 — 1 E 、 6 6 - 3 A および 6 8 — 3 Aが、 樹立された。 以下の実験にはこの中の ク ロ ーン 3 8 - 1 E の産生するモ ノ ク ロ ーナル抗体 3 8抗体 を使用 して行った。 このよ う に して作成されたモノ ク ローナル抗体を用いて、 XJ T _ 7 、 M R C — 5 、 および上記の形質転換細胞株 B a Z F 3 / F U L L 、 B a / F 3 / F U L L F L A G , B a l b F U L L及び B a 1 b Z F U L L F L A Gを米国のコール ター社製フ ローサイ トメーター E P I C Sエ リ 一 トにて細胞 表面の抗原解析を行った。 抗体による染色は成書の方法に従 つて行った。 1 次抗体と してハイプリ ドーマ培養上清からス ゥエーデン国のフアルマシア社製 M a b t r a ρ G I I を用 い、 添付の説明書に従って精製した抗体を用い、 2次抗体と して米国のべク ト ンデッキンソ ン社製ャギ抗マ ウス I g F I T C標識で行った。 その結果、 U T — 7 、 M R C — 5及びリ セブタ一型チ口 シンキナーゼ遺伝子を導入 した細胞が上記の モノ ク 口一ナル抗体によ リ染色される こ とが確認された。
また、 B a Z F 3ノ F U L L 、 B 3 / F 3 / F U L L F L A G 、 B a 1 b / F U L L及び B a 1 b / F U L L F L A G の細胞破砕物を用いて同モ ノ ク 口 一ナル抗体によ る ゥエス タ ンブロ ッ ト を行った。
細胞破砕物の調製は以下のよ う に行った。
2 X 1 0 6 個の細胞をセル リ シスバッ ファ一 ( 5 0 mM H e p e s ( p H 7 . 5 ) 、 1 % T r i t o n X 1 0 0 、 1 0 % グリ セロール、 1 0 mM N a 4 P 407、 1 0 0 m M N a F 、 4 mM E D T A、 2 m N a 3 V O 4 , 5 0 μ g / m \ A p r o t i n i n , 1 0 0 μ M L e u p e p t i n 、 2 5 μ P e p s t a t i n A , 1 m M P M S F ) 2 0 0 / fi に懸濁し、 氷中に 2 0分間放置し、 その 1 4 0 0 0 r p mで 2 0分間遠心 し上清を取り 細胞破砕物を 得た。
こ のよ う に して得た各種細胞破砕物を同マ ウ スモ ノ ク 口一 ナル抗体を用いて、 参考例 8 に記載の方法でウェス タ ンプロ ッ ト を行った。 その結果、 1 3 0 キロ ダル ト ンのバン ドを特 異的に認識する こ とが確認できた。
以上の結果から リ セプター型チロ シンキナーゼを認識する モノ ク 口一ナル抗体を樹立し、 なおかつ配列表の配列番号 2 に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポリべプチ ド産生細胞株が 確かに作製されている こ と を確認 した。
実施例 1 各種ヒ ト細胞培養上淸の分取及び濃縮精製
上記の方法で精製 した配列表の配列番号 1 に記載のア ミ ノ 酸配列を有する リ ガン ドの細胞外 ドメ イ ン と 、 F L A G及び I g G F c のそれぞれとのキメ ラ タ ンパク を用いて、 リ ガン ドを発現している細胞の同定をバイオセンサー B I A c 0 r e (ス ウェーデン国、 フアルマシア社製) にて行う ために、 B I A c o r e で測定するサンプルの調製を以下のよ う に行 つた。
細胞の名前、 細胞の種類、 細胞增殖継代時の培地、 細胞の 入手先については表 1 にま と めた。
細胞の培養は表 1 に示すよ う に各々の細胞に対応 した培地 で培養 し、 付着細胞の場合は米国のコーニング社製の T一 2 '2 5 フラスコにコ ンフルェン トになった時点で、 それぞれの 細胞株の培地を、 血清を含まない I MDM (米国、 G I B C Ο— B R L社製) 、 l O n g Zm l P MAを含む I MDM、 及び、 1 0 0 U/m l ヒ ト T N F を含む I MD Mの各培地に 交換し、 4 日 間培養 して培養上淸を回収 した。 浮遊細胞の場 合は細胞濃度 5 X 1 05 c e 1 】 s Zm l となる よ う に上記 の条件で 4 日 間培養 し培養上淸を回収した。 回収した培養上 淸は米国のア ミ コ ン社製セン ト リ ブレップ 1 0で濃縮して、 溶液交換し、 最終的にス ウェーデン国、 フ ア ルマ シア社製 B I A c 0 r e用 H B Sバ ッ フ ァ ーに溶液交換澳縮倍率 4 0倍 から 2 0 0倍と してサンプルを得た。
実施例 2 バイオセンサ一 B I A c o r e を用いた細胞培養 上清のスク リ 一ニング
リ ガン ドを発現している細胞の同定を、 バイ オセンサ一 B I A c o r e (ス ウェーデン国、 フアルマシア社製) を用レ、 て、 添付の取扱い説明書に従って実施した。
参考例 9に記載の方法で作製、 精製された E X I g — P T N及び E X F L A G— P T Nを、 1 0 0 / g Zm l の濃度に なる よ う に l O mM酢酸ナ ト リ ウムバッ ファー ( p H 4 . 0 ) にて調製し、 活性化された B I A c o r eセンサーチップ C C e r t i f i e d (ス ウェーデン国、 フ ァ ノレマシア社 製) に、 添付の取扱い説明書の方法に従ってァ ミ ノ カ ツプリ ングにて結合させた。 イ ンジェ ク シ ョ ン量は 5 O β で 2回 行い、 結合後エタ ノ ールァ ミ ンでブロ ッ キ ング して、 ベース ライ ンが安定するまで、 H S Bバ ッ フ ァ 一で洗浄した。 流速 は以下のサンプルの測定を含め全て 5 μ β ノ m i nで行った。 セ ンサーチ ッ プと 、 E X I g — P T N及び E X F L A G— P T Nのそれぞれとの結合前と結合後の レス ポンス . ュニ ッ ト ( R U ) の差はおよそ 1 0 0 0 0 R U程度であった。
B I A c 0 r e のサンプル導入、 測定の条件は以下のよ う に行った。 上記のぺプチ ドが結合したセンサーチ ップに対し サンプル量 3 0 μ β ( 6分間) で流した。 代表的なプロ フ ァ ィルと して、 C一 1 細胞 (未刺激) 培養上清中に含まれる リ ガン ドの、 チロ シンキナ一ゼへの結合活性の測定結果を示す グラ フを図 1 に示す。 R U値は、 サンプルが導入される前の ベース ラ イ ンの部分、 サンプルが入る こ と に よ るマ ス ト ラ ン スポー ト (ベースライ ンの上が リ ) を起こ し リ ガン ドが リ "t: プターであるチロ シンキナーゼに結合する部分、 及び通常の H S Bノく ッフ ァーに置換される部分において変化 している。 図 1 に矢印で示した 2点の値、 つま リ初めのベー ス ライ ンの 値 (サンプル導入の 3 0秒前の値。 図 1 の矢印 Aで示す) と 最終的に H S Bバ ッ フ ァーに置き変わった直後の値 (つま リ サンプル導入後 6分 1 0秒後の値。 図 1 の矢印 Bで示す) の 2点の値の差を、 リ ガン ド結合活性と した。 1 回サンプルを 測定しおわった毎に 5 O mM酢酸ナ ト リ ゥムを含む 0 . 5 M N a C 1 ( p H 4 . 0 ) を 1 5 μ β 流してセンサ一チップを
¾t した。
測定結果を表 2に示す。
表 2から解るよ う に、 E X I g — P T N及び E X F L A G — P T Nの両方に対して高い リ ガン ド結合活性を示 した リ ガ ン ド発現細胞候補の代表的な細胞株と しては C— 1細胞、 リ ガン ドを発現していない細胞株と しては B T— 2 0細胞が明 らかになった。
実施例 3 リ セブタ一型チ口 シンキナーゼ細胞外蛋白を用い た リ ガン ド発現細胞の同定
実施例 2では各種細胞培養上淸を調べる こ と によ リ リ ガン ド発現細胞を同定したが、 も し、 リ ガン ドが細胞膜上にも存 在するならば、 細胞を参考例 9で作製した リ セブター型チロ シンキナーゼの細胞外部分を含むポ リ ぺプチ ドで リ ガン ド発 現細胞は染色されるはずである。 そこで、 参考例 9 に示した よ う に作製された配列表の配列番号 1 のア ミ ノ 酸配列を含有 するポ リ ペプチ ド E X I g — P T Nを用いて、 リ ガン ド発現 細胞の同定をフ ローサイ ト メ一ターにて行った。
実施例 2で リ ガン ド発現細胞候補と された、 C一 1 及び発 現されていないと考えられた B T— 2 0 について、 5 X
1 06 個の細胞を調製し、 まず初めに 2 % F C Sを含む P B S (一) (以下 P B S— F と示す) に懸渴して、 遠心分離 3 0 0 0 r p m、 1 分間の条件で遠心分離し、 洗浄した。 そ し て、 これらの細胞を正常マ ウス血清 (米国、 オルガノ ンテク 二力社製) を P B S— F にて 1 0 0倍希釈した溶液の 5 0 β に懸濁して、 氷中 1 時間放置した後、 上記の方法で 1 回洗 浄し、 次に参考例 9で作製された Ε Χ Ι §— ? 丁 1^を 5 0 0 n g / μ β の濃度で P B S — Fにて作製された溶液の 5 0 μ β も し く は P B S— Fの 5 0 μ β に懸濁 し氷中にて 3 0分間 放置した。 その後、 上記の方法で 2回洗浄した後、 F I T C 標識抗ヒ ト I g G l (英国、 B i n d i n g S i t e社製) を同様に反応させて、 2回洗浄した後、 最終的に 2 0 Ο μ β の P B S— Fに懸濁してフ ローサイ ト メ 一ターにて解析した。 フローサイ ト メ 一ターは米国のコールタ一社製 E P I C Sェ リ ー ト を使用 した。
その結果を図 2に示す。 なお、 図 2の縦軸は細胞数を示す。 横軸は相対蛍光強度を示し、 右に行く ほど強く なる。 この結 果から、 C— 1 については E X I g — P T Nを加えなかった コ ン ト ロールに比べ蛍光ピークのシフ 卜が見られ、 細胞表面 上にも リ ガン ドが存在する こ とが判った。 また、 B T— 2 0 については、 このよ う なピークのシフ ト は認められないこ と から細胞膜上に リ ガン ドが発現されていないこ とが判った。
以上の結果から、 少なく と も結腸癌由来細胞株 C一 1 はリ ガン ド候補分子を細胞表面にも発現している こ とが判明 した。 実施例 4 リ セプタ一型チロ シンキナーゼ遺伝子導入細胞を 用いた リ ン酸化アツセィ系によ る リ ガン ド発現細 胞の同定
実施例 2及び 3の結果、 リ ガン ドを発現している と考えら れる細胞株の 1 つである C— 1細胞が結合だけではな く 参考 例 8の工程 1 に記載の形質転換細胞 B a / F 3 Z F U L L F L A Gの細胞膜表面上に発現されている リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼの リ ン酸化を引 き起こすかど う かについて調べる ため以下の実験を行った。
すなわち、 実施例 2 に記載した方法で作製された C— 1細 胞培養上清濃縮液、 C一 1 細胞それ自身、 参考例 1 0 に記載 のモノ ク ローナル抗体作製時の抗体価測定時に採取されたマ ウス抗血淸について、 リ セブター型チロ シンキナーゼが反応 して リ ン酸化され得るかど う か調べた。
リ ン酸化を行う前日 に新しい培地に交換し、 細胞数 5 X 1 05 c e l l s /m l に した B a Z F S / F U L L F L A Gを実験当 日細胞数を 5 X 1 06 個取リ 出 して以下の 5種の 液 5 0 0 μ β に懸濁 して、 2 0分間、 3 7でにて。 02 イ ン キュベータ一中で反応させた。
反応液 1 : 培地 ( R P M I 1 6 4 0 、 1 0 % F C S、 1 0 0 / g Zm l マウス I L一 3 ) のみ ;
反応液 2 : C一 1 細胞 5 X 1 06 個を反応液 1 の培地で懸 濁 した懸濁液 ;
反応液 3 : 参考例 1 0に記載のマウス抗血淸を反応液 1 の 培地で 1 0 0倍希釈 した溶液 ;
反応液 4 : 参考例 1 0に記載のマウス抗血清を反応液 1 の 培地で 5 0 0倍希釈 した溶液 ; 及び
反応液 5 : 実施例 2に記載した方法で作製された C一 1細 胞の細胞培養上清をセン ト リ ブレ ップ 1 0 (米国、 ア ミ コ ン 社製) にて 5 0倍濃縮し、 反応液 1 の培地に溶液交換を行つ た溶液
反応後細胞をすぐさ ま氷中に置き 、 あらかじめ冷やしてお いた 2 mMバナジン酸ナ ト リ ウム ( N a 3 V O„ ) を含む P B S (― ) を l m l 加え、 4 °Cにて 3 0 0 0 r p m、 1分間 遠心して細 '胞を沈降させ、 同様の作業を さ らにも う 1度行つ た後、 参考例 1 0記載の方法で細胞破砕溶液を得た。
こ の細胞破砕溶液に米国の K o d a k社製 A n t i 一 F L A G M 2 A f f i n i t y G e l を 3 0 μ β加えて、 沈澱を起こ さないよ う にゆつ く リ と回転させながら、 4 °Cに て反応させて、 ゲル上に F L A Gア ミ ノ 酸配列を有する配列 表の配列番号 2のァ ミ ノ酸配列を有するポ リ べプチ ドを吸着 させた。 反応後、 4 °C、 5 0 0 0 r p mの条件で 3分間遠心 を行いゲルを沈澱させて、 ゲルを吸わないよ う に上淸を除い た後、 参考例 1 0に記載のセルリ シスバッファーを 2 0 0 μ β加えて懸濁した。 更に同様に遠心操作、 懸濁操作を 3度行 い、 ゲルの沈澱物を得た。 以上と 同様な実験を B a Z F 3 / F U L L F L A Gだけではなく B a / F 3 / C O Nについて も行って同様のゲル沈澱物を得た。
このゲル沈澱物に参考例 8に記載の方法でウェスタ ンブロ ッ ト を行った。 ゲルの沈澱物 3 0 μ β の S D S — P A G Eサ ンプルバ ッ フ ァーを加えて、 2 — ME存在下で沸騰水浴 5分 行い、 1 5 μ β を 1 つの レーンに流して S D S — P A G Eを 行った。 同一サンブルが転写された P V D Fメ ンブラ ンを 2 組作リ 、 1組は目的の F L A G配列を有する配列表の配列番 号 2番のア ミ ノ酸配列を有するポ リ べプチ ドが回収されてい る こ と を確認し、 も う 一方ではチロ シン残基の リ ン酸化の有 無の判定に用いた。
このウェスタ ンブロ ッ 卜の写真を図 3 に示す。 A及び Bは 目的の配列表の配列番号 2のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ド B a Z F 3 Z F U L L F L A Gの結果で、 C及び Dは それのコ ン ト ロールである B a / F 3 C O Nの結果である。 抗体の染色は A及び Cが抗 リ ン酸化チロ シン抗体 (米国、 U B I 社製) で、 B及び Dは A n t i — F L A G M 2 (米国、 K o d a k社製) によって行なった。 各 レー ンの番号は上記 の反応液の番号に対応する。 矢印は F L A G配列を有する配 列表の配列番号 2に記載のポリ ペプチ ドの位置を示す。
この結果から、 C— 1 細胞との共培養、 も し く はマ ウス抗 血清の刺激によって リ セプタ一型チ口 シンキナーゼのチ口 シ ンキナーゼ活性を活性化させ、 自 己のチロ シン残基の リ ン酸 ィヒを引き起こすこ とが判明 した。 しかしながら、 培地のみで はそのよ う なチロ シン残基の リ ン酸化は見られなかった。
さ らに、 マウス抗血清の濃度条件を変化させても、 C— 1 細胞と の共培養ほど強く リ ン酸化されていないこ とから、 ポ リ ク 口 一ナル抗体は本発明の リ ガン ドと 同等の作用を有する が、 明 らかに本発明の リ ガン ドの方がょ リ 強く リ セブター型 チロ シンキナーゼの酵素活性を上昇させ、 ょ リ 強く チロ シン 残基の リ ン酸化を引き起こ し、 リ セプター型チロ シンキナー ゼを通 した生理活性作用を細胞に及ぼすと考え られた。
一方、 実施例 2の B I A c 0 r e の結果では リ ガン ドが細 胞培養上清に存在する こ と が分かるが、 C 一 1 細胞の培養上 淸の 5 0倍濃縮液ではチロ シン残基の極めて弱い リ ン酸化し か引き起こ さなかった。 これは、 細胞培養上清中の リ ガン ド 量が極めて少なく 5 0倍濃縮程度の濃度では十分に リ セプタ 一型チロ シンキナーゼの細胞内部分のチロ シンキナーゼ活性 を上昇させないため力 も し く は リ ガン ドが細胞表面上の方 で部分的に高溏度にな リ 高い活性を有すためかは不明である が、 結果的に極めて弱い リ ン酸化しか引 き起こ さなかったと 推定された。
同様な実験を ヒ ト正常血清、 マウス正常血清、 F C S 、 細 胞株と しては B T— 2 0 について行ったがチロ シン残基の リ ン酸化は確認できなかったこ とから、 こ の反応は リ セプタ一 型チロ シンキナーゼに対する、 C一 1 細胞膜上にある特異的 な リ ガン ドによる作用によ る と考えられた。
以上の実施例 2 、 3及び 4 の結果から リ ガン ド発現細胞と してすく なく と も C— 1 細胞が挙げられ、 またその リ ガン ド はその細胞培養上淸、 及び細胞膜上に存在し、 これらから精 製でき る こ と が示された。
実施例 5 リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドのァフィ 二ティーカラムを用いた精製
実施例 4 までの結果から、 結腸癌由来細胞株 C一 1 が リ セ プター型チロ シンキナーゼの リ ガン ドを確実に発現している と考えられる こ とから、 その培養上清から p E X I g — P T Nを結合させたァフ ィ 二ティ ーゲルカラ ムを用いて精製する こ と を試みた。
C一 1 の上清は実施例 1 に記載の方法で作製されて最終的 に 5 4 O m l 分取し、 これを米国のア ミ コ ン社製セン ト リ ブ レップ 1 0で 4 5 m 1 に した濃縮液を用いた。 この濃縮液を 実施例 2に記載した方法にて測定 した B I A c 0 r e の値は 1 3 4 R Uであった。
ァフィ 二ティーカラムの作製はス ウェーデン国のフアルマ シァ社製 C N B r活性化 S e p h a r o s e 4 Bにて添付の 取扱い説明書に従い行った。 最終的に 4 . l m gの E X I g 一 P T Nが 3 . 5 m 1 のゲルに結合 したァフ ィ 二ティ 一ゲル が作製できた。 カ ップリ ング効率は 9 9 . 6 %であった。 こ のゲルの 2 m 1 を 2 c m2 X 1 c mのサイ ズのカラムを作製 した。
このカラムに対し上記の細胞培養上清濃縮液を 2 0 m 1 / h r の速度で流し、 その後同一速度で P B S (—) を 1 5 m 1 流して洗浄し、 最終的に 0. 1 M酢酸ナ ト リ ウム、 0 . 5 M N a C 1 ( P H 4 . 0 ) にて溶出 した。 この溶離液を l m 1 づっ分取し、 各画分に l MT r i s — H C 1 ( p H 9 . 5 ) を 2 0 0 μ β づっ加えて、 中和 した。
このよ う にァフイ エティ 一カラムにて精製分画された溶液 を各画分を S D S— P A G Eにて中に含まれている タ ンパク 分子の分子量の確認を行った。 その際のサンプルバ ッフ ァ一 は 2 — M Eを含まないものを用い、 加熱しない非還元条件で 行い、 ゲルは 1 5〜 2 0 %のグラディエン トゲルを用いて行 つた。 分子量マーカーはス ゥ エーデン国のフ アルマ シア社製 L MW K i t Eを用いた。 電気泳動終了後、 日本国の和 光純薬社製ヮ コ一銀染キッ ト I I を用いて、 添付の染色方法 に従って銀染色を行った。 その結果を図 4 に示す。 溶出液に 入れ替わった直後から溶離されて く るバン ドが各種確認され たが、 この中のバン ドのどれが 目的の リ ガン ドに当たる力 ま この時点では不明であった。 そのため、 澳縮前、 カ ラム素通 リ 画分、 洗浄液、 及び分画した溶離液 (これについては 5分 の 1 希釈) の各画分を、 米国の ミ リ ポア社製ウル ト ラフ リ ー C 3 L G C ( 1 0 Kカ ッ ト) を用いて、 H B Sバッファ一に 溶液交換し、 再度 B I A c 0 r e で実施例 2 に記載の方法で 測定した。
その結果を表 3 に示す。
この結果から、 配列表の配列番号 1 に記載のア ミ ノ 酸配列 を有するポ リ べプチ ドを含むポ リ べプチ ドに結合する リ ガン ドと考えられる化合物が確かにフ ラ ク シ ョ ン番号 4の画分を ピーク と して濃縮、 精製されている こ と が確認できた。
実施例 6 リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドのゲル濾 過精製及び分子量の測定
次に、 実施例 5に示 したァ フ ィ 二ティ 一精製されたピーク のフ ラ ク シ ョ ン番号 4 の画分の 3 0 0 μ β を米国の ミ リ ポア 社製ゥノレ ト ラ フ リ ー C 3 L G C ( 1 0 Kカ ッ ト) を用いて、 0. 0 2 % T w e e n 2 0 を含む P B S (—) に溶液交換し、 同時に 6倍に濃縮し、 ゲル濾過を行った。
ゲル濾過のカラムはス ウェーデン国のフアルマシア社製 S u p e r d e x 7 5 H R 1 0 Z 3 0 を使用 し、 分離バッファ —は 0 . 0 2 % T w e e n 2 0を含む P B S (― ) を使用 し た。 流速は 4 0 μ β Ζπι ί ηの条件で行なった。 サンプルの 分離前にス ウェーデン国のフアルマシア社製分子量マーカ測 定キッ ト L MW用にて溶離位置の分子量の測定を行なったの ち、 上記のサンプルのゲル濾過を行い、 1面分 2 0 ^ β に分 画した。
このよ う に分子量分画されたサンプルを H B Sバッ ファー にて 1 0培希釈し、 B I A c 0 r e の測定を行った。
ゲル濂過フラ ク シ ョ ンの 2 1 4 n mの吸光度の値変化を図 5に示 し、 各フ ラ ク シ ョ ンの B I A c o r e の測定結果を図 6 に示す。 この結果からフ ラ ク シ ョ ン番号 1 3及び 1 4 にピ ーク を持つ配列表の配列番号 2のァ ミ ノ酸配列を有すポ リ べ プチ ドに結合する リ ガン ドのピーク が検出された。 さ らに、 フ ラ ク シ ョ ン番号 2 1及び 2 2 にも小さなピーク が同様に認 められた。 前もって行った分子量マ一カーの結果から、 フラ ク シヨ ン番号 1 1 と 1 2 の間が 6 3 0 0 0 ダル ト ン、 1 3 と 1 4の間力 ί 5 4 0 0 0 ダノレ ト ン、 1 5 と 1 6 の間力 S 4 3 0 0 0 ダル ト ンで有る こ と力ゝら、 フラ ク シ ョ ン番号 1 3及び 1 4 をピーク とする本発明の リ セプタ一型チロ シンキナーゼ リ ガ ン ドの分子量はゲル濾過の結果から 5 4 0 0 0 土 9 0 0 0 ダ ル ト ンと推定された。
さ らに、 同一分画サンプルを画分毎に実施例 5 に記載の方 法で同様に S D S — P A G Eにて中に含まれる化合物の解析 を行った。 その結果を図 7 に示す。
この結果から、 こ の活性面分 (フ ラ ク シ ョ ン番号 1 1 から 1 6 ) に含まれているバン ドは 3種確認された。 B I A c o r e の測定結果と の相関から本発明の リ ガン ドはおよそ 4 2 Kダル ト ンにあるスメ ァなバン ド (図 7 の右矢印で示す。 ) である と判断された。 従って、 本発明の リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼリ ガン ドの分子量は 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ン と推定された。
ゲル濾過の結果と S D S — P A G Eの分子量の値は一致し ないがゲル濾過はゲルとの相互作用などによ り その推定分子 量が実際の物質と異なる こ とがあるため、 S D S — P A G E の値である 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンが本発明の リ セブ ター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドの分子量である こ と が推察 された。
実施例丄 リ セプタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドのァフィ 二ティ一カラムを用いた精製
さ らに、 上記のゲル濾過の活性画分 (フラ ク シ ョ ン番号 1 2 から 1 5 ) を回収 して、 再度実施例 5 に記載の方法で配列 表の配列番号 2に記載のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドを用いたァフィ 二ティーカ ラムにて精製 した。
カ ラ ムは小スケールのべ ッ ト ボ リ ューム 1 5 0 μ β の もの を用いて、 自然落下にて溶出 した。 上記の活性画分フラ ク シ ヨ ン番号 1 2から 1 5 を集め、 上記の小スケールカラムに流 した。 その後、 1 5 0 £ の 0. 0 2 % T w e e n 2 0 を含 む P B S (― ) を 8回流して洗浄した後、 1 5 0 £ の 0 . 1 M酢酸ナ ト リ ウム、 0 . 5 MN a C l ( P H 4 . 0 ) を 4 回流して各画分に分画して溶出 した。 溶出液には l MT r i s — H C 1 ( p H 9 . 5 ) を 3 0 μ βづっ加えて中和 した。 このよ う に して最終精製された リ ガン ドをその純度を確か めるために、 各画分を米国のミ リ ポア社製ウル ト ラ フ リ ー C 3 L G C ( 1 0 Kカ ッ ト) を用いて Ι Ο μ β に濃縮後、 各画 分ごと に S D S— P A G Eにて中に含まれている物質の確認 を行った。 その際のサンプルバッ フ ァ一は 2 — M Eを含まな い ものを用い、 加熱 しない非還元条件で行い、 ゲルは 1 5〜 2 0 %のグラディエン トゲルを用いて行った。 分子量マーカ —はス ウェーデン国のフアルマシア社製 L MW K i t E を用いた。 電気泳動終了後、 日本国の和光純薬社製ヮ コ一銀 染キッ ト I I を用いて、 添付の染色方法に従って銀染色を行 つた。
結果を図 8 に示す。 図 7では 3種の混合物の 1 つであった 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダノレ ト ンのバン ド力;フ ラ ク シ ョ ン番号 1 及び 2 に単一物と して精製されている こ とが確認された。 以上の結果から、 これらの方法で本発明の リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドが精製でき る こ とが示され、 純品を得 るこ と が出来た。
実施例 8 リ セプター型チロ シンキナーゼ リ ガン ドの呈色反 応
実施例 7 に記載の方法で精製された リ ガン ドの純品を、 実 施例 5 に記載の方法で同様に S D S— P A G E を行なった。
このよ う に して新規な リ ガン ドが泳動されたポ リ アク リ ル ア ミ ドゲルを、 タンパク質の特異的な染色法である クマシ一 プリ リ ア ン トブルー染色用 日本国の和光純薬社製クイ ック C B Bキ ッ ト を用いて、 添付の実験方法に従って染色を行った と こ ろ、 本発明の リ ガン ドであるおよそ 4 2 0 0 0 ダル ト ン のバン ドが染色され、 本発明の リ ガン ドにはタ ンパク質が含 まれている こ とが判明 した。
更に、 同様に作製されたポリ アク リ ルア ミ ドゲルを糖鎖の 特異的な染色法である P A S染色にて検出 した。 すなわち、 新規 リ セプタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドが泳動されたポ リ アク リ ノレア ミ ドゲルを 1 2 . 5 %の ト リ ク ロ ロ酢酸溶液に 3 0分間振と う しなが ら浸し、 次に蒸留水にて同様に 3 0秒 間振と う しながら浸 し、 ついで 1 %過ヨ ウ素酸を含む 3 %酢 酸溶液にて 5 0分間振と う しながら浸した。 その後、 蒸留水 にてよ く 振と う して洗浄を行なった。 洗浄は 1 回 1 0分間で 8回行った。 洗浄後、 暗所にてフ ク シン液 ( 1 gの塩基性フ ク シン (日本国、 和光純薬社製) を 6 0 °Cに加熱 した 2 0 0 m l の蒸留水に溶かし、 これに対して l gの亜硫酸水素ナ ト リ ウム、 2 0 m l の 1 N H C 1 を加えて作製した。 ) に 1 時 間程度浸して染色した。 最後に 0 . 5 %亜硫酸ナ ト リ ウム溶 液にて 1 0分間振と う して洗浄し、 更にこれを 2回繰 リ返し 最終的に蒸留水中に置きバン ドの観察を行っ た と こ ろ、 P A S染色されている赤色バン ドが分子量およそ 4 2 0 0 0 ダル ト ンに確認できた。 こ の結果から本発明の リ ガン ドは糖を含 むこ と が判明 した。
以上の 2つの呈色反応の結果から、 本発明の リ ガン ドは糖 タンパク質を含む化合物である こ とが判明 した。
実施例 9 新規リ セプタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドの N 末端からのア ミ ノ酸配列の決定
実施例 7に記載した方法によ リ 精製した リ ガン ドを含む溶 液を、 プロ ス ピン (米国、 アプライ ドバイオシステム社製) にのせ、 遠心後、 専用のポンチでプロ ス ピン中の P V D Fフ イ ノレタ一を取 リ 出 した。 フ イ ノレターは、 5 0 %メ タ ノ ール水 溶液、 及び精製水でよ く 洗浄後、 ペプチ ドシーク ェ ンサ一解 析機にて N末端の配列を決定した。 ぺプチ ドシ一クェンサ一 は、 米国のアブライ ドバイ オシステム社のプロテイ ン ' シー タエンサー m o d e 1 4 9 2 を使用 し、 附属の取扱い説明書 に従って解析を行った。 N末端からの解析の結果、 配列表の配列番号 1 9 に記載し たア ミ ノ酸配列、 すなわち N末端から Lys- Se r- Π e- Va卜 Leu- Glu-Pro-l l e-Tyr-Trp-Asn-Ser-Ser-Asn-Se r-Lys-Phe-Leu-Pr o-Gi y-Gln-Gl y-Leu-Va l-Leu-Tyr-Pro-Gln-l l e-Gl -Asp-Lys- Le u-As p-I 1 e-1 I e-XXX-P r o -L y s -V a 1 -A s p -XXX-L y s -Th r -V a 1 - G 1 y - XXX- Tyrの配列を有している こ とが示された。 ただし、 こ のア ミ ノ酸配列にはア ミ ノ酸残基が決定できなかった残基が 3 つぁ リ 、 これらの残基については各々 XXX と示した。 この 結果から、 本発明の リ ガン ドは配列表の配列番号 1 のア ミ ノ 酸配列を有すポリ ペプチ ドを含む化合物である こ とが示され た。
ア ミ ノ酸残基が不明である部分に関して、 配列表の配列番 号 1 9 のア ミ ノ酸配列の 3 7番のア ミ ノ 酸残基前後のァ ミ ノ 酸配列が明瞭に判断できている こ とから、 ジスルフ ィ ド結合 したシスティ ン残基、 も し く は糖鎖などで修飾されたア ミ ノ 酸残基など、 ア ミ ノ 酸が何らかの修飾を受けた結果ア ミ ノ酸 配列が決定できなかったと考えられる。
実施例 1 0 P C R法によ る リ ガン ドの c D N Aプローブの 作成
実施例 9 で行った N末端からのア ミ ノ 酸配列よ リ 、 オ リ ゴ ヌ ク レオチ ド混合プライマ一を用いた P C R法にて c D N A プローブの作成を行った。 すなわち、 実施例 1 に記載の P M Aを含む条件で培養された該 C一 1 細胞の m R N Aよ リ c D N Aを作成し、 実施例 9 の結果判明 したア ミ ノ 酸配列よ リセ ンス及びアンチセンスの 2 O m e r の混合プライマーを合成 し、 R T— P C Rを行レヽ、 p B 1 u e s c r i p t にサブク ローニングして、 遺伝子配列を決定し、 その遺伝子がコー ド しているア ミ ノ酸配列と実施例 9 で決定されたア ミ ノ酸配列 を比較して、 確かに リ ガン ドのア ミ ノ 酸配列の一部をコ一 ド している c D N Aプローブである こ と を確認した。
C— 1細胞からの m R N A、 すなわち P o 1 y (A) + R N Aの分離、 精製は次のよ う に行った。 実施例 1 の条件で培 養した C一 1 細胞をセルス ク レイ パ一 (米国、 コ 一ニング社 製) で剥し、 P B S (—) で 2回遠心分離洗浄を行った。 こ の細胞沈澱物の細胞数 3 X 1 08 個を 4 Mグァニジン · ィォ シァネー ト、 2 0 mM酢酸ナ ト リ ウム ( p H 5 . 2 ) 、 0 . 1 M D T T , 0. 5 % N— ラ ウ リ ルサルコ シルカ ら構成さ れる全 R N A抽出溶液 2 0 m l に懸濁させ、 日本国のテルモ 社製の 2 0 Gの針を通すこ と によ り 完全に溶解、 分散させた, その後、 5 0 0 0 gで遠心分離を 2 0分間行い、 上清を回収 した。 次に、 上記の全 R N A抽出溶液で全量を 2 5 m l と し た後、 5 . 7 M塩化セシウム、 0 . 1 M E D T A ( p H 8 0 ) 溶液の 1 2 m l を前もって入れておいた遠心分離チュ一 ブに重層 し、 1 8 °Cにて 2 5 0 0 0回転でー晚遠心分離した 遠心分離の結果、 全 R N Aを含む沈澱物を回収 し、 それに T E S溶液 ( l O m M T r i s ( p H 7 . 4 ) 、 5 m M E D T A、 1 % S D S ) の 7 2 0 μ β を力 Dえて室温に 1 0 分間放置して溶解し、 こ の溶液を 1 . 5 m l のエ ツペン ドル フチューブに移し、 溶液に対して同体積のク ロ ロ フ オルム/ ^ 1 ーブタ ノ ール ( 4 : 1 ) を加えて良く 撹拌し、 1 5 0 0 0 回転、 5分間遠心分離し、 上層を回収し同様の操作を更にも う 1 度繰り 返し、 上層を回収 した。
次に回収した溶液を 2本のエツペン ドル フチューブに等量 ずつ分注し、 各々 に 3 M酢酸ナ ト リ ウム溶液 ( p H 5 . 2 ) を 3 0 μ β 、 エタ ノ ーノレを 8 5 0 χ βカ卩えて、 一 8 0 °Cに 3 0分間放置後、 4 °Cにて 1 5 0 0 0 回転で遠心分離を 1 5 分 間行い、 全 R N Aを沈澱させた。 更に同様に、 全 R N Aを含 む沈澱物を各々 3 6 0 μ Ά の滅菌蒸留水に溶かして、 3 M g 酸ナ ト リ ウム溶液 ( P H 5 . 2 ) を 3 6 μ β 、 エ タ ノールを 1 m 1 加え、 — 8 0 °Cに 3 0分間放置後、 4 °Cにて 1 5 0 U 0 回転で遠心分離を 1 5分間行い、 再度全 R N Aを沈澱させ て精製 した。
このよ う に して得られた全 R N Aを 7 0 %エタ ノールで洗 浄し、 風乾した後、 各々 1 0 Ο μ β の滅菌蒸留水に溶解し、 2 6 0 :1 111の吸光度にて 1^ 1^八量を定量した。 この結果、 2 4 m g の全 R N Aが回収されているこ と が確認された。
次に、 上記の方法で得られた C — 1 細胞の全 R N Aから m R N A , すなわち P o 1 y ( A ) + R N Aの分離を行った。 分離はス ウェーデン国のフ ァ ノレマシア社製の m R N A p u r i f i c a t i o n K i t を用い、 添付の説明書に従つ て、 オリ ゴ d Tカラムによ る精製を行った。 この結果、 6 0 Ο g の全 R N Aょ リ 1 5 /i g の P o l y ( A ) + R N Aが 回収された。
このよ う に して、 精製された P o 1 y ( A ) + R N Aを米 国のライ フサイエンス社製 F i r s t — s t r a n d c D N A S y n t h e s i s K i t (日本国、 宝酒造株式会 社よ リ購入) を用いて、 添付の取扱い説明書に従って、 c D N Aの合成を行った。 すなわち、 上記の P o 1 y ( A ) * R N Aの 2 μ g を最終的に体穢が 1 6 μ β になる よ う に希釈し、 これに対して本キッ トに添付のオ リ ゴ d T ( 1 2 - 1 8 ) 溶 液 ( 0 . 5 y g / fi ) も しく はラ ンダムへキサマー ( 1 0 0 n g / μ Ά ) を Ι μ β力 Dえ、 7 0 °Cに 1 0分間放置 し、 次 いで氷中に 1 0分間放置した。
次に、 キ ッ トに添付の 5 X緩衝液を 5 £ 、 R N a s e ィ ン ヒ ビタ一である R N a s i n溶液を 1 μ β 、 0 . 2 5 Μ D T Tを 1 β 、 ア ビア ン ミ エ ロ ブラ ス ト シス ウイノレス逆転 酵素 ( a v i a n m y e l o b l a s t o s i s v i r u s r e v e r s e t r a n s c r i p t a s e : 2 5 / μ β ) 溶液を 1 μ β を各々加え、 4 1 °Cで 6 0分間放 置して c D N Aを合成した、 その後 7 2 °Cに 1 0分間放置し て酵素を失活させ、 これを次の P C Rに用いた。 リ ガン ドのア ミ ノ酸配列の 1 部をコ一 ドする c D N Aプロ —ブの作製の為の P C Rは次のよ う に行った。 すなわち、 配 列表の配列番号 1 9 に記載の リ ガン ドの N末端からァ ミ ノ酸 配列の 5番目 のロイ シンから 1 1 番目 のァスパラギンまでの ア ミ ノ酸配列、 すなわち Leu- Gl U- Pro-11 e- Ty r- Trp- Asn の ア ミ ノ酸配列をコ一 ドする c D N A配列のあらゆる可能性に 対応した 2 0 m e r のオリ ゴヌ ク レオチ ド混合セ ンスプライ マ一、 すなわち配列表の配列番号 2 0 に記載の配列 (5'-(TC) T(ACGT)GA(AG)CC(ACGT)AT(TCA)TA(TC)TGGAA-3',ブライマ一 9 ) を有す合成 D N A、 更にこのア ミ ノ 酸配列の C末端方向 のア ミ ノ酸配列、 すなわち配列表の配列番号 1 9 に記載のァ ミ ノ酸配列の 3 4番目 のァ スパラ ギン酸から 4 1 番目 のバ リ ンまでのア ミ ノ酸配列、 すなわち Asp- I 1 e- 1 I e- XXX-Pro- Lys -Va 1 のア ミ ノ酸配列に関して、 ア ミ ノ酸配列が不明である X XX 部分については、 実施例 9 に示したよ う に リ ガン ドが内 部でジスルフ ィ ド結合しているシスティ ン残基でぁ リ 、 ぺブ チ ドシークェンサ一で解析不能であつたと予想されたため、
As p-11 e-1 I e-Cy s-Pro-Lys-Va I のァ ミ ノ酸配列をコー ドする c D N A配列のあらゆる可能性に対応した 2 0 m e r のオ リ ゴヌ ク レオチ ド混合ア ンチセ ンスプラ イ マー、 すなわち配列 表の配列番号 2 1 に記載の配列 (5' - AC (TC)TT(ACGT)GG(AG) C A(AGT)AT(AGT) AT(AG)TC-3'、 プライマ一 1 0 ) を有す合成 D N Aの以上 2種を参考例 2 に記載 した方法に従って作製した。 P C Rによ るプローブ作製は以下のよ う に行った。 上記の 方法で作製された C一 1 の c D N A溶液を 2種混合 し、 この 混合液の Ι Ο μ β を使用 し、 1 0倍濃度緩衝液 ( 5 0 0 mM
K C 1 、 1 0 0 m M T r i s — H C l ( p H 8 . 3 ) 、 1 5 mM M g C 1 2 、 0 . 0 1 %ゼラチン) 1 0 μ β 、 d N T P M i x t u r e ( 日本国、 宝酒造社製) 8 /ζ β 、 及 び T a q D N Aポリ メ ラーゼ (A m p l i T a q : 米国、 P e r k i n — E l m e r社製、 5 υ/ μ β ) 0 . 5 μ β を加 え、 上記のプライマー 9及び 1 0が最終濃度で 1 0 にな るよ う に加え、 最後に脱イオン水を加えて全量を 1 0 0 μ β と して、 9 5 °Cで 0 . 5分間、 4 2 °Cで 0. 5分間、 7 2 °C を 1 分間からなる行程を 1 サイ クルと して、 この行程を 5サ イ クノレ行い、 続いて、 9 5 °Cで 0. 5分間、 4 8 °Cで 0 . 5 分間、 7 2 °Cを 1分間からなる行程を 1 サイ ク ルと して、 こ の行程を 3 5サイ ク ル行い、 最後に 7 2 °Cにて 7分間放置し て P C Rを行った。 こ の P C R産物の一部を 3 %ァガロース ゲル電気泳動を行い、 ェチジュ ゥムブ口マイ ド ( 日本国、 日 本ジーン社製) にて染色後、 紫外線下で観察し、 約 1 1 0 b Pの D N Aが増幅されている こ と を確認した。
次にこの P C R産物の全量を低融点ァガロ ース にて作成 し た 3 %ァガロ ースゲルにて電気泳動し、 ェチジュ ゥムブロマ ィ ドにて染色後、 紫外線照射下にて約 1 1 O b p のバン ドを 切 リ 出 し、 ゲルの 3倍量の T E溶液を加え, 6 5 °Cにて 1 0 分間加熱し、 ゲルを完全に溶かしたの ち 、 等量の T E飽和フ エノ一ノレ ( 日本国、 日本ジーン社製) を加えて、 1 5 0 0 0 r p m 5分間遠心分離後上淸を分離し、 さ らに同様な分離作 業を T E飽和フ エ ノ ール : ク ロ ロ フ オノレム ( 1 : 1 ) 溶液、 さ らにク 口 ロ フオルムにて行った。 最終的に得られた溶液か ら D N Aをエタ ノール沈澱して回収 した。 回収 した D N Aを 日本国の宝酒造社製の D N A B 1 u n t i n g K i t を用 いて、 添付の取扱い説明書に従い、 末端の平滑化を行い、 次 いで 日本国の宝酒造社製 T 4 P 0 1 y n u c 1 e o t i d e K i n a s e を用いて、 同社発行の遺伝子工学製品ガイ ド ( 1 9 9 4一 1 9 9 5年版) に記載の方法に従って、 末端 の リ ン酸化を行った。
このよ う に末端が平滑化、 リ ン酸化された P C R産物を、 前もって制限酵素 E c o R V (日本国、 宝酒造社製) で消化 し、 末端を 日本国の宝酒造社製 A l k a 1 i n e P h o s p h a t a s e ( C I A P ) にて、 同社発行の遺伝子工学製 品ガイ ド ( 1 9 9 4— 1 9 9 5年版) に記載の方法に従って 末端の脱 リ ン酸化した P B 1 u e s c r i p t に 日本国の 宝酒造社製 D N A L i g a t i o n K i t V e r 2 を用 いて、 添付の取扱い説明書に従ってライ ゲ一シ ョ ンを行った。
このライ ゲ一シヨ ン液の 2 /i β を大腸菌 J M 1 0 9 (日本 国、 東洋紡社製) に遺伝子導入し、 ア ン ピシ リ ンを 5 0 /i g Zm l 含む L一 B r o t h ( 日本国、 宝酒造社製) 半固型培 地のプレー ト に蒔き 、 1 2 時間程度 3 7 °Cに放置し、 現れて きたコ ロ ニーをラ ンダムに選択し、 c D N Aが組み込まれて いる こ と を M l 3ユニバーサルプライマー、 リ バースブライ マー (これらのプライマーの配列などに付いては米国のス ト ラ タ ジーン社の p B 1 e u s c r i p t の取扱い説明書を 参考に して参考例 2 に記載した方法で作製した。 ) を用いた P C R法にて、 イ ンサー ト を含まなレヽ p B 1 u e s c r i p t ょ リ 1 1 O b p 大きなバン ドが確認されるク ローンを 選択 した。 確認されたク ローンについて、 組み込まれている c D N Aの塩基配列を米国のアプライ ドバイオシステム社の 螢光 D N Aシークェンサ一にて決定した。
その結果、 配列表の配列番号 7 に記載の D N A配列の 1 3 8番から 2 0 4番の配列を有す遺伝子断片を有している P C R産物がク ローニングされている こ とが確認され、 リ ガン ド のア ミ ノ酸配列の一部のア ミ ノ酸配列をコ一 ド している c D N A断片のプローブが作製された。 その D N Aプローブの遺 伝子配列を配列表の配列番号 2 2 にそれがコ一 ドするア ミ ノ 酸配列と共に示す。 本 D N A配列と配列表の配列番号 7 に記 載の D N A配列の 1 1 8番から 2 2 4番の配列とは 5 カ所異 なっているが、 これらは P C Rブライマー由来の D N A配列 部分にあた リ 、 P C Rによ リ人工的に作製されたものに由来 する と考えられる。
実施例 1 1 C 一 1 細胞 c D N Aライブラ リ ーの作成及び リ ガン ドの全長 c D N Aク ローニング並びにその 解析
実施例 1 0 で作製した c D N Aプローブを用いて、 リ ガン ドのァ ミ ノ酸配列の全長をコー ドする c D N Aのク ロ ーニン グを行った。
まず初めに、 実施例 1 0 で精製された P o 1 y A + R N A を用いて、 C一 1 細胞の c D N Aライブラ リ 一を作製した。 c D N Aの作製は米国の G I B C O — B R L社の S u p e r
S c r i t I I R N a s e H— を使用 した。 実施例 1 0で精製された P o 1 y A + R N Aの 2 μ g を最終的な体積 力; 6 μ β となるよ う に 5 m M T r i s ( p H 7 . 5 ) で希 釈し、 6 5 °Cで 5分間放置し、 次いで氷上に 5 分間放置後、 次の溶液を加えた。 すなわち、 上記の米国の G I B C O - B R L社の S u p e r S c r i p t I I R N a s e H - に 添付の 5 X R e v e r s e T r a n s c r i p t a s e ノく ッ ファ一 ( 0 . 2 5 M T r i s — H C 1 ( p H 8 . 3 ) 、 0 . 3 7 5 M塩化カ リ ウム、 1 5 m M塩化マグネシウム) を 5 μ H 、 0 . 1 M D T Tを 2 . 5 μ β 、 1 O m M d N T P 溶液 (独国のベ一 リ ンガーマンハイ ム社製の 1 0 O m Mの d A T P , d C T P 、 d G T P 、 d T T P溶液を等量混ぜ合わ せて作製し、 各々の最終濃度が 1 0 m Mと なるよ う に蒸留水 で希釈 して作製 した溶液) を 1 . 5 μ β 、 米国のプロ メ ガ社 製の R N a s e イ ン ヒ ビタ一溶液を 1 μ β 、 米国の G I B C O — B R L社製の 5 0 0 gノ m l オリ ゴ d T ( 1 2 — 1 8 ) 溶液を 2 . 5 μ β 、 滅菌蒸留水を 1 0 . 5 μ β を加えた。 そ の後、 1 0分間室温で放置し、 次に米国の G I B C O — B R L社の S u p e r S c r i p t I I R N a s e H— 酵素 溶液を 1 β 加え、 3 7 °Cで 1 時間放置 した。 そ して、 更に 同酵素溶液を 1 μ β加え、 4 5 °Cで 3 0分間放置し、 次に氷 中で 2 0分間放置した。 以上の過程によ リ 一本鎖 c D N Aが 作製された。
そ して次に、 この溶液に 1 O x S e c 0 n d - S t r a n d反応用バッファー ( 1 8 0 mM T r i s — H C 1 ( p H 8 . 3 ) 、 9 0 6 mM塩化カ リ ウム、 4 6 mM塩化マグネシ ゥム) を 2 0 μ β 、 0 . 1 M D T Tを 7 . 5 / β 、 上記の l O mM d N T P溶液を 3 μ β 、 滅菌蒸留水を 1 3 4 . 4 μ β を各々加え、 氷中に 5分間放置後、 ス ウ ェーデン国のフ ァ ノレマシア社製 R N a s e H ( 2 u n i t / μ 0, ) を 2 μ β 、 ス ウェーデン国のフアルマシア社製 D N Aポ リ メ ラーゼ ( 5 O u n i t / μ β ) を 8 . Ι μ β を加え、 1 6 °Cに 2 時間半 放置した。 その後、 フエ ノ ール ク ロ ロ フ オノレム ( 1 : 1 ) 溶液を 2 0 0 μ β加え、 良く 混ぜ合わせた後、 1 5 0 0 0 回 転で 5分間遠心分離した後、 上層を回収 し、 さ らにク ロ ロ フ オルムを 2 0 0 /i β 加え、 同様に遠心分離し上層を回収した。 次に、 3 Μ酢酸ナ ト リ ウム溶液 ( Ρ Η 5 . 2 ) を 1 6 . 7 μ β 、 エタ ノールを 4 3 4 /χ β加え、 — 8 0 °Cに 3 0分間放置 した後、 4 °C、 1 5 0 0 0回転で 1 5分間遠心分離し、 2本 鎖になった C一 1 の c D N Aを沈澱させた。 そ ' 、 7 0 % エタ ノ ールで洗浄した後、 風乾し、 滅菌蒸留水で 1 Z 1 0に 希釈 した T Eバ ッ フ ァ 一 ( 日本国、 日本ジーン社製) の 3 0 μ & に溶解した。
次に、 この c D N Aを 日本国の宝酒造社製の D N A B 1 u n t i n g K i t を用いて、 添付の取扱い説明書に従い, 末端の平滑化を行い、 最終的に 2 0 μ β の T Eバ ッ フ ァーに 溶解した。 こ の c D N Aを用いて、 英国のアマ シャ ム社製 c D N Aク ローニングシステム ; I g t 1 0 にて、 添付の実験方 法に従って、 C一 1 細胞の ; L g t l O c D N Aライ ブラ リ 一 を作製した。 最終的に作製された c D N Aのタイ タ一はホス ト と して NM 5 1 4 (上記キッ ト に添付されている) 使用 し て測定したと ころ、 およそ 1 X 1 08 p f u / μ g p o l y A + R N Aであった。
以上の方法で作製された c D N Aライ ブラ リ 一を参考例 6 に記載した方法と同様の方法でブラ一クハイブ リ ダィゼーシ ョ ン法にてスク リ ーエングした。 検索したライ ブラ リ ーのプ ラーク数は 4 X 1 05 個で、 スク リ ーニングに用いたプロ一 ブは配列表の配列番号 2 2 に記載の D N A配列を有する D N Aを P C R法にて作製し、 そのラベ リ ング方法は同様に参考 例 6 に記載したラベ リ ング方法で 32 Pラベルした。
ス ク リ ーユ ングの結果、 最終的に 4 ク ロ ー ン分離された。 ク ローン名は T 2 、 T 3 、 T 5 、 Τ 6 と命名 した。 各々 ク ロ —ンのファ一ジ D N Aを M a n i a t i s らの編集した前述 の成書の方法に従い、 精製した。 これらの 4種の D N Aを制 限酵素 E c 0 R I にて消化 してァガロールゲル電気泳動にて、 λ g t 1 0から リ ガン ドの c D N Aのイ ンサー ト部分を切 リ 出 し、 ァガロールゲル電気泳動にてそのサイ ズを調べたと こ ろ、 全てのク ローンと も 3つのバン ドが確認された。 それら ののおおおおよよそそのの DD NN AAののササイイ ズズはは各各々々 TT 22が力; 33 00 00 bb pp 、、 5 0 O b p 、 1 8 0 0 b p で、 T 3力; 3 0 0 b p 、 8 0 0 b P 、
4 0 0 0 b pで、 丁 5力 3 0 0 b p 、 8 0 0 b p 、 1 5 0 0 b pで、 丁 6力 3 0 0 b p 、 8 0 0 b p 、 2 0 0 0 b pであ つた。 そこでこれらの 1 2種のバン ドをァガロースゲルから 切 り 出 して、 前述の方法で精製し、 前もって制限酵素 E c o R I にて消化し、 末端の脱 リ ン酸化を行った p B 1 u e s c r i p t に前述の方法でライ ゲ一シ ヨ ン し、 大腸菌 J M 1 0 9 に遺伝子導入した。 これらのク ローンに各々 の遣伝子断片 がサブク ロ一ニングされている こ と を確認後、 ブラス ミ ド D N Aを精製して、 米国のアプライ ドバイ オシステム社製 D N Aシークェンサ一と 同社の蛍光ラベ リ ングキ ッ ト を使用 して 遺伝子配列を決定した。 また、 上記の 3 0 0 b p以上のサイ ズの D N Aについては各々制限酵素サイ 卜のマ ッ ビングを行 い、 その結果生 じた遺伝子断片を上記の方法でサブク 口 一二 ングを行う こ と及び日本国の宝酒造社製のキロ シ一キエ ンス 用デ リ ュ一シ ヨ ン ミ ュータ ン ト ' キ ッ ト を用い、 添付の取极 い説明書に従ってデリ ュ一シ ョ ン ミ ユータ ン ト作製する こ と を組み合わせて両方向からの遣伝子配列を決定した。
その結果、 明 らかになった遺伝子配列から、 上記の T 2 、 T 3 、 Τ 5 、 Τ 6の 4 ク ローンと も共通であった約 3 0 0 b P の遣伝子断片は配列表の配列番号 7の D N A配列の 1 3 5 番から 3 8 1番の部分にあたる 2 4 6 b P遺伝子配列を有す る遺伝子断片である こ とが明らかと なった。 従って、 ち ょ う どこれらの遺伝子断片は配列表の配列番号 7の D N A配列の 1 3 5番から 1 4 0番及び 3 7 6番から 3 8 1 番にある制限 酵素 E c 0 R I のサイ 卜で切 り 出されたものである こ とが明 らカ こなった。 次に、 T 2の 5 0 0 b p 、 T 3の 8 0 0 b p 、 T 5の 8 0 0 b p 、 丁 6の 5 0 0 b pの 1 方向において遺伝 子配列に一致部分が見いだされ、 さ らにその一致しなかった 方向に関 しては、 ライ ブラ リ 一作製に使用 した英国のアマシ ャ ム社製 c D N Aク ローニ ングシステム え g t 1 0のァダプ ターの配列が見いだされた。 また、 T 2の 1 8 0 0 b p 、 T 3の 4 0 0 0 b p 、 T 5の 1 5 0 0 b p 、 T 6 の 2 0 0 0 b Pにおいても同様に 1 方向において遺伝子配列に一致部分が 見いだされ、 さ らにその一致しなかった方向に関 しては、 ラ ィ ブラ リ ー作製に使用 した英国のアマ シャ ム社製 c D N Aク ローニングシステム え g t 1 0のアダプタ一の配列が見いだ された。 また、 最も大きな遺伝子断片 T 3の約 4 0 0 0 b p の遺伝子断片については、 そのアダプター配列に続き P o 1 y Aの配列が見いだされた。
これらの遺伝子配列から、 各々 ク ローンの各々の遺伝子断 片方向とつなが リ方を P C R法を用いた方法及び上記のファ —ジ D N Aの制限酵素サイ 卜のマ ッ ピング、 さ らにそれらの 遺伝子配列を決定し、 これらを対比 した結果、 リ ガン ドをコ — ド してレヽる c D N Aは、 その 5 ' 方向には各々 のク ロー ン の約 5 0 0〜 8 0 0 b p の遺伝子断片が位置し、 ついで約 3 0 0 b p の遺伝子断片が、 そ して 3 ' 方向には残 り の約 1 5 0 0〜 4 0 0 0 b p の遺伝子断片が位置 している こ と が明 ら かになった。
上記のよ う に並べた c D N A遺伝子配列をそれがコ 一 ド し ているア ミ ノ酸配列を配列表の配列番号 1 9に記載した リ ガ ン ドの N末端ア ミ ノ 酸配列を対比 した結果、 該 リ ガ ン ドが 々 ンパク質と して翻訳された際のア ミ ノ 酸配列は配列表の配 W 番号 7 に記載したア ミ ノ酸配列である こ と が明 らかと なった c また、 上記のク ローン T 3 由来のア ミ ノ 酸配列をコー ド して いる c D N Aの遺伝子配列をその遺伝子配列がア ミ ノ酸をコ — ド している部分及びその前後の遺伝子配列を同様に配列表 の配列番号 7 に記載した。
本遺伝子配列の全長を有する c D N Aは上記のク ローン T 3であるため、 各々 の制限酵素 E c 0 R I サイ ト において c D N Aの方向が合う形でつないで (およそ 5 0 0 0 b P ) 、 p B 1 u e s c r i p t のマルチク ローニングサイ ト上につ ないで作製したプラス ミ ドを P B S— L I G— F U L L と し、 さ らに別のベク タ一である P U C 1 8 (ス ウェーデン国、 フ アルマシア社製) に同様にサブク ローニングして作成 したプ ラ ス ミ ドを P U C M E K L と した。 また、 配列表の配列番号 7に記載の D N A配列を有する遺伝子断片 (およそ 1 0 0 0 b p ) のみを同様に p B 1 u e s c r i p t のマノレチク ロ一 ニングサイ ト上につないで作製したプラ ス ミ ドを p B S— L I G— C O D E と した。
実施例 1 2 ノーザンブロ ッティ ングによ る リ ガン ドの m R
N A発現の解析
本発明の リ ガン ドをコ一 ド している m R N Aの発現を調べ るため、 あらかじめ m R N Aが転写されている フ イ ノレターで ある米国のし 1 0 n t e c h社 Human Mult iple Tissue No r thern Blot , Human Mult iple Tissue Northern Blot I I、 H u man Fetal Mult iple Tissue Northern Blot を用い、 実施例 1 1 で分離された配列表の配列番号 7の D N A配列の 1 3 8 番から 3 8 1番の 2 4 6 b P の遺伝子断片、 すなわち リ ガン ドのア ミ ノ酸配列をコー ド している部分の制限酵素 E c o R I で切 リ 出されるおよそ 3 0 0 b Pの遺伝子断片を用いて、 前述の方法にて 32 P標識してその m R N Aのサイ ズ、 発現臓 器を調べた。
その結果、 m R N Aのサイ ズはおよそ 5 2 0 0 b であ り 、 バン ドは 1 種類しか確認されなかった。 また、 発現臓器に関 しては、 ヒ ト成人組織の う ち心臓、 脳、 胎盤、 肺、 骨格筋、 胬臓、 脾臓、 前立腺、 精巣、 卵巣、 小腸で発現が認められ、 特に胎盤、 肺、 ^臓において若干は強く 発現が認められた。 しかしながら、 肝臓、 すい臓、 胸腺、 大腸、 末梢血 リ ンパ球 においては発現が極めて弱いカ も しく は発現が認め られな かった。 また、 ヒ ト胎児組織では心臓、 脳、 肺、 腎臓におい て発現が認められたが、 肝臓においては発現が認められなか つた。
また、 同様のプローブを用いて、 同様の方法でラ ッ トの臓 器における発現を米国の C 1 o n t e c h社 Rat Mult iple Tissue Northern Blot を用いて調べたと ころ、 m R N Aの サイ ズはおよそ 5 0 0 0 b であ り 、 心臓、 脳、 脾臓、 肺、 骨 格筋、 精巣に発現が認められ、 特に肺において強い発現が認 められた。 しかしながら、 肝臓、 腎臓においては発現が認め られなカゝつた。
これらの結果から、 実施例 1 1 でク ローニングされた c D N Aのク ローン T 3 はほぼ全 m R N Aの遺伝子配列を含んで いる と予想される。
実施例 1 3 遺伝子導入による リ ガン ド発現細胞の作成
上記の配列表の配列番号 7記載の遺伝子を用いて、 リ ガン ドの発現べク タ—並びに リ ガン ドとのキメ ラ タ ンパク の発現 べク タ一を作製し、 リ ガン ドの遺伝子を発現させた。 発現させた形態及び方法を 1 ) 〜 5 ) に上げた。 すなわち、 1 ) 配列表の配列番号 7 に記載した D N A配列、 すなわち 全長の c D N Aを、 発現ベク ターを用いて、 動物細胞に遺伝 子導入してシグナルべプチ ドを含む膜結合型と して発現させ、 最終的にシグナルぺプチ ドを含まない形態、 すなわち配列表 の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有する形態の リ ガン ドと し て細胞表面上に発現させ、 最終的に培養上清中に発現させる 方法。
2 ) 発現された該 リ ガン ドの検出を容易にするため、 配列 表の配列番号 7に記載の D N A配列の終止コ ドンの前、 すな わち配列表の配列番号 7の D N A配列の 1 0 2 9番の C と 1 0 3 0番の Tの間に、 配列表の配列番号 1 3の D N A配列を 有する D N Aが挿入された遺伝子配列を有する D N Aを、 発 現ベク ターを用いて、 1 ) と同様に発現させ、 細胞内部分の C末端に配列表の配列番号 1 3 に記載のア ミ ノ 酸配列、 すな わち F L A G配列を有する形態を取る よ う に発現させる方法。
3 ) 配列表の配列番号 7 に記載の D N A配列の 3 1番から 6 9 0番の D N A配列の 3 ' 末端に停止コ ドンが挿入された 遺伝子配列を有する D N A、 すなわち配列表の配列番号 7に 記載のア ミ ノ酸配列の— 2 5番から 1 9 5番のア ミ ノ酸配列 のみをコー ドする c D N Aを、 発現べク タ一を用いて、 動物 細胞に遺伝子導入して、 シグナルペプチ ドを含む分泌型と し て発現させ、 最終的にシグナルペプチ ドを含まない形態、 す なわち配列表の配列番号 5 に記載のア ミ ノ酸配列を含有する 形態の リ ガン ドと して、 培養上清中に発現させる方法。
4 ) 配列表の配列番号 7 に記載の D N A配列の 3 1番から 6 9 0番の D N A配列の 3 ' 末端に配列表の配列番号 1 3の D N A配列を有する D N A、 次いで停止コ ドンが挿入された 遺伝子配列を有する D N A、 すなわち配列表の配列番号 7に 記載のア ミ ノ酸配列の一 2 5番から 1 9 5番のア ミ ノ 酸配列 の C末端に配列表の配列番号 1 3 のア ミ ノ 酸配列が結合した ア ミ ノ酸配列をコ一 ドする D N Aを、 発現べク タ一を用いて、 3 ) と 同様に発現させ、 最終的にシグナルペプチ ドを含まな い形態、 すなわち配列表の配列番号 5に記載のア ミ ノ酸配列 の C末端に配列表の配列番号 1 3 のア ミ ノ酸配列、 すなわち F L A G配列を有する形態を取る リ ガン ドと して、 培養上清 中に発現させる方法。
5 ) 配列表の配列番号 7 に記載の D N A配列の 3 1 番から 6 9 0番の D N A配列の 3 ' 末端に、 参考例 8 に示 した方法 で作製された ヒ ト I g G F c部分をコー ドするゲノ ム遺伝子 配列を有する D N Aがつながった配列を有する D N A、 すな わち配列表の配列番号 7 に記載のァ ミ ノ 酸配列の— 2 5番か ら 1 9 5番のア ミ ノ酸配列コ ー ドする D N Aとその C末端に ヒ ト I g G l の F c 部分のア ミ ノ 酸配列をイ ン ト ロ ンを含む 形態でコー ドする D N Aを、 発現ベク ターを用いて、 3 ) と 同様に発現させ、 最終的にシグナルべプチ ドを含まない形態、 すなわち配列表の配列番号 5に記載のア ミ ノ酸配列の C末端 に ヒ ト I g G l の F c部分のア ミ ノ酸配列を有する形態で発 現され、 最終的にその I g G F c部分のヒ ンジ領域のシステ イ ン残基がおこすジスルフ ィ ド結合にょ リ 、 2量体を形成し た形態を有する リ ガン ドと して、 培養上清中に発現させる方 法。
これらの 1 ) から 5 ) の形態を取 り得る発現べク タ一を、 参考例 8に示 した発現ベク ター p MK I T n e o を用いて作 製した。 作製の詳細は参考例 8 に示した方法と 同様の方法に 従い、 P C R法等を用いて作製した。
作製された 1 ) カゝら 5 ) の発現べク タ一を各々 、 1 ) 〖ま p MK L i g F U L L、 2 ) は p MK L i g F U L L F L A G、 3 ) は p MK L i g E X、 4 ) は p MK L i g E X F L A G、 5 ) は p MK L i g E X I g とする。
遺伝子導入は p MK L i g F U L Lに関 しては該 C O S — 7細胞及び該 C— 1 細胞に行い、 残り のは該 C O S — 7細胞 のみで行い、 その遺伝子導入法は参考例 8 に示 したエ レク ト ロボレ一ショ ン法で行い、 その他の培養条件等については参 考例 8 に記載した C O S — 7細胞の条件で行った。
1 ) に示した方法で作製された C一 1 細胞を、 遺伝子導入 後、 1 日間 1 0 % F C S入 り の条件で培養 し、 その後無血清 培地に置き換え、 培養上淸を 4 日 間おき に 3回を分取した。 同様操作を、 リ ガン ド遺伝子を含まない発現べク タ一を用い て、 遺伝子導入を行い、 コ ン ト ロールと した。 この様に して 作製された培養上淸 2種を、 実施例 1 に記載の方法で 1 0倍 に濃縮し、 実施例 2 に記載した方法に従い、 B I A c o r e を用いて、 それらの B i n d i n g A c t i v i t yを E X l g — P T Nの結合したチップで測定した。 その結果、 コ ン ト ロ 一ノレでは B i n d i n g A c t i v i t y力;結合活 性が 9 8 R Uであったが、 リ ガン ド遺伝子導入サンプルでは 3 1 0 R Uであった。
さ らに、 この 2種の培養上清を実施例 5から 7に記載の方 法と 同様の方法で リ ガン ドの精製を行ったと こ ろ、 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンの リ ガン ドが精製された。 精製された リ ガン ドの精製量は、 ポ リ アク リ ルア ミ ド電気泳動ゲルの銀 染色の結果から、 視覚的に確認したと こ ろ 、 リ ガン ド遺伝子 導入サンプルはコ ン ト ロ ールに比べておよそ 3倍程度であつ た。 また、 こ の様に精製された リ ガン ドを、 再度同様に B I A c o r e にて B i n d i n g A c t i v i t y を測定し たと こ ろ、 コ ン ト ロールに比べておよそ 3倍の B i n d i n g A c t i v i t y を有している こ とが明 ら力 こなった。 この結果から、 配列表の配列番号 7の遺伝子導入細胞株は リ ガン ドをよ リ 効率的に産生する こ とが出来る こ とが明 ら力 こ なった。
同様な実験、 すなわち上記の遗伝子導入、 培養上淸分取、 培養上清からの リ ガン ドの精製を C O S - 7細胞にて行い、 参考例 8に記載した方法に従い、 非還元条件下でサンプルを 調製し、 S D S— P A G Eを行い、 銀染色を行ってバン ドの 確認を行ったと こ ろ、 コ ン ト ロールでは 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0ダル ト ンのバン ドは確認されなかったが、 遺伝子導入細胞 上淸中には 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダノレ ト ンのバン ドが同俵に 確認された。 この精製された リ ガン ドを実施例 9 に記載の方 法で N末端のア ミ ノ酸配列を決定したと こ ろ、 配列表の配列 番号 4 に記載したア ミ ノ酸配列を有していた。 これらの結果 から、 リ ガン ドを発現していない、 も し く は発現の弱い細胞 株に配列表の配列番号 7の遺伝子導入を行う こ と によ リ 、 リ ガン ドを産生させる こ とが出来る こ とが明 ら力 こなった。 次に、 2 ) に示 した発現べク タ一で遗伝子導入を行った C O S— 7細胞を、 F C S入リ培地で 4 日 間培養後、 参考例 9 に記載した方法で細胞の破砕物を得て、 参考例 8 に記載した 方法に従い、 還元条件下でサンプルを調製 し、 S D S — P A G E及び抗 F L A G抗体を用いた抗体染色法にてウェスタン プロ ッ トを行い、 上記の 2 ) に示 した C末端に F L A G配列 を有する配列表の配列番号 6 のァ ミ ノ 酸配列を含有する リ ガ ン ドが細胞上に発現されているかを調べた。 その結果、 分子 量が 3 0 0 0 0カゝら 6 0 0 0 0 ダル ト ン程度の極めて幅広い 部分が染色された。 し力 しながら、 コ ン ト ロ ールの C O S — 7細胞はそのよ う なバン ドは認められなかったこ とから、 本 リ ガン ドが細胞上で発現された場合、 極めて幅広い分子量を 有してなる物質と して発現される こ とが明 らかになった。
次に、 3 ) に示した方法で作製された C — 1 細胞を、 遺伝 子導入後、 1 日 間 1 0 % F C S入 リ の条件で培養後、 無血清 培地に置き換え、 培養上淸を 4 日 間おきに 3 回を分取 した。 こ の様に して作製された培養上清を、 実施例 1 に記載の方法 で 1 0倍に濃縮し、 実施例 5 から 7 に記載の方法と 同様の方 法で リ ガン ドの精製を行ったと こ ろ、 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンの リ ガン ドが精製された。 こ の精製された リ ガン ド を実施例 9 に記載の方法で N末端のァ ミ ノ酸配列を決定した と こ ろ、 配列表の配列番号 4 に記載 したァ ミ ノ 酸配列を有 し ていた。 これらの結果から、 リ ガン ドを発現していない、 も し く は発現の弱い細胞株に、 少な く と も 3 ) で示 した遺伝子 を遺伝子導入を行う こ と によ リ 、 リ ガン ドを産生させる こ と が出来る こ とが明ら力 こなった。 次に、 4 ) に示した方法で作製された C _ 1 細胞を、 遺伝 子導入後、 1 日間 1 0 % F C S入 り の条件で培養後、 無血清 培地に置き換え、 培養上清を 4 日 間おきに 3回を分取した。 この様に して作製された培養上清を、 実施例 1 に記載の方法 で 1 0倍に濃縮した。 こ の濃縮液を参考例 8 に記載した方法 に従い、 非還元条件下でサンプルを調製 し、 S D S — P A G E及び抗 F L A G抗体を用いた抗体染色法にて ウェス タ ンブ ロ ッ ト を行なった。 このよ う に して、 上記の 4 ) に示した C 末端に F L A G配列を有する配列表の配列番号 5 のア ミ ノ酸 配列を含有するポリ ぺブチ ドを含むリ ガン ドが培養上清中に 発現されているかを調べた。 その結果、 分子量がおよそ 2 0 0 0 0から 5 0 0 0 0 ダル ト ン程度の極めて幅広い部分が染 色され、 特に強く 染まった部分は、 4 2 0 0 0 ダル ト ンを中 心と した部分と 、 2 4 0 0 0ダル ト ンを中心と した部分であ つた。 し力 >しながら、 コ ン ト ロールの C O S — 7細胞の培養 上淸では、 そのよ う なバン ドは認められなかったこ と から、 上記の 4 ) に示した C末端に F L A G配列を有する配列表の 配列番号 5のア ミ ノ 酸配列をコー ドする D N Aを動物細胞に 遗伝子導入する と 、 およそ 2 0 0 0 0力 ら 5 0 0 0 0 ダル ト ンの リ ガン ド、 またこれらには少なく と も分子量が 4 2 0 0 0ダル ト ン付近、 2 4 0 0 0 ダル ト ン付近である リ ガン ドが 含まれている こ とが明 らかになった。
次に、 5 ) に示した方法で作製された C— 1 細胞を、 遺伝 子導入後、 1 日 間 1 0 % F C S入 リ の条件で培養後、 無血清 培地に置き換え、 培養上淸を 4 日 間おき に 3回を分取 した。 こ の様に して作製された培養上清を、 実施例 1 に記載の方法 で 1 0倍に濃縮した。 この濃縮液を参考例 8 に記載した S D S— P A G E及びペルォキシダーゼ標識抗ヒ ト I g羊抗体を 用いた抗体染色法にてウェス タ ンブロ ッ ト を行なった。 但し、 S D S — P A G Eの際のサンプル調製の条件と して、 還元条 件下のサンブルと非還元条件下のサンプルの 2つで行った。 このよ う に して、 上記の 5 ) に示した C末端にヒ ト I g Gの F c部分のァ ミ ノ酸配列を有する配列表の配列番号 5 のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドを含む リ ガン ドが培養上清 中に発現されているかを調べた。 その結果、 還元条件下では、 分子量の中心がおよそ 8 0 0 0 0 ダル ト ン程度の極めて幅広 い部分のバン ドが染色され、 非還元条件では 2 0 0 0 0 0 ダ ノレ ト ン程度の極めて幅広いの部分のバン ドが染色された。 し 力 しなが ら、 コ ン ト ロールの C O S— 7細胞の培養上清では、 そのよ う なバン ドは認められなかったこ とから、 上記の 5 ) に示 した C末端にヒ ト I g Gの F c部分のア ミ ノ酸配列を有 する配列表の配列番号 5のア ミ ノ酸配列をコー ドする D N A を動物細胞に遺伝子導入する と 、 還元条件下では、 分子量の 中心がおよそ 8 0 0 0 0 ダル ト ン程度、 非還元条件では 2 0 0 0 0 0 ダル ト ン程度をの ヒ ト I g Gの F c部分と リ ガン ド と融合物が培養上清中に産生 し、 また分子量の大き さ と ヒ ト I g Gの F c 部分のア ミ ノ 酸配列の構造から、 こ の融合物は 2量体も しぐはそれ以上の多量体構造を有している こ とが明 らかになった。
以上に示した結果から、 上記 1 ) 〜 5 ) の方法を用いれば, 該リ ガン ドの生産効率の向上、 並びに該 リ ガン ド未産生細胞 に該 リ ガン ドを産生させる こ とが出来、 さ らに配列表の配列 番号 5及び 6 のア ミ ノ 酸配列を有するポ リ べプチ ドの 1部も しく は全部を含有してなる化合物が作製でき 、 また、 それら の 2量体も し く はそれ以上の多量体構造を有する複合体が作 製でき るこ とが示された。
実施例 1 4 遺伝子導入細胞によ リ 生産された リ ガン ド細胞 外部分の精製
実施例 1 3記載の 4 ) 及び 5 ) の方法で作製された C O S 一 7の培養上淸を用いて、 参考例 9に記載した方法にて各々 の細胞培養上淸中からァフ イ エティ—カ ラ ムにて リ ガン ドと の融合蛋白を精製した。
4 ) の培養上淸に関 しては、 培養上清の 5 1 を米国のコダ ッ ク社製 A n t i — F L A G M 2 A f f i n i t y G e l カ ラムに通して、 リ ガン ドを C末端部分の F L A G配列 を有する部分でカ ラ ムに吸着させた。 カ ラ ムのサイ ズは共に 1 c m X 3 c mで容稍はおよそ 2 m 1 であ リ 、 流速は全て 1 m l /m i n . で行った。 吸着後、 カ ラ ムを P B S (―) 2 O m l で洗浄し、 その後、 0. 5 M T r i s—グ リ シン ( p H 3 . 0 ) で溶出 した。 溶出画分を 2 m l ずつ分取し、 0 . 5 M T r i s - H C 1 ( p H 9 . 5 ) 2 0 0 /i fi ずつ加えて, 各々 の画分を中和した。 また、 5 ) の培養上清に関 しては、 培養上清の 5 1 をス ウェーデン国のフアルマシア社製 P r o t e i n A セフ ァ ロ一スカ ラムに通 して、 上記と 同 じ力 ラ ムのサイ ズ、 流速で行った。 また、 洗浄、 溶離に関 しても 同様に行った。
さ らに、 上記の方法で精製された C末端に F L A G配列を 有する配列表の配列番号 5のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ドを含む リ ガン ド、 及び C末端に ヒ ト I g Gの F c部分 のア ミ ノ酸配列を有する配列表の配列番号 5のァ ミ ノ 酸配列 を含有するポリべプチ ドを含む リ ガン ドを各々 のゲル濾過に て精製を行った。 ァフィ 二ティーカラムからの溶離液を米国 のア ミ コ ン社製セン ト リ コ ン 3 0 にて濃縮及び P B S (―) へのバッファー交換を行い、 ゲル濾過はス ゥエーデン国のフ アルマ シア社製 F P L Cシステムを用い、 同社の S u p e r o s e 1 2 カ ラムにて行った。 その溶離画分を各々実施例 2 に記載 した B I A c o r e を用いて、 それらの B i n d i n g A c t i v i t y を E X I g — P T Nの結合したチップ で測定した。 次に、 B i n d i n g A c t i v i t yの高 い画分を 4 ) の培養上清由来、 5 ) の培養上淸由来各々別々 にま と め、 さ らに、 上記の方法で濃縮し、 それらを実施例 1 4 に記載した方法で S D S — P A G Eを行い、 さ らに銀染色 を行った。 その結果、 実施例 1 4 で得られたウェス タ ンプ ロ ッ 卜の結果染色された部分に対応する部分が銀染色された。 従って、 C末端に F L A G配列を有する配列表の配列番号 5 のア ミ ノ酸配列を含有するポリ ペプチ ドを含む リ ガン ド (以 降こ の物質を L i g F L A G— P T Nとする) 及び、 C末端 にヒ ト I g Gの F c 部分のア ミ ノ酸配列を有する配列表の配 列番号 5のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドを含むリ ガ ン ド (以降こ の物質を L i g I g — P T N) の精製物を得た。
これら精製産物を実施例 9 に記載の方法で N末端のァ ミ ノ 酸配列を決定したと こ ろ、 配列表の配列番号 4 に記載したァ ミ ノ酸配列を共に有していた。 この様に して、 L i g F L A G— P T N及び L i g I g — P T Nを精製でき る こ とが示さ れた。
実施例 1 5 リ ガン ドを認識する抗体作成、 タ ンパク発現の 確認
配列表の配列番号 7 に記載のア ミ ノ酸配列の 1 1番から 3 7番のア ミ ノ酸配列から構成されるオリ ゴペプチ ドを常法に 従い、 米国のアプライ ドバイオシステム社製ペプチ ド合成機 によ り 作製し、 カブ トガニ由来へモシァニン ( K L H) (米 国、 シグマ社製) と末端のシスティ ン残基で結合させて、 こ れを免疫原と してゥサギに免疫 して、 抗体価の測定後、 全血 の採血を行い、 血淸を採取 して、 米国の B i o R a d社製の ェコ ノ パッ ク血清 I g G精製キ ッ ト を用いて、 添付の取扱い 説明書に従って、 抗リ ガン ドウサギポ リ ク ロ一ナル抗体を精 製して作製した。
さ らに、 実施例 1 4 に記載の方法で精製された L i g F L A G— P T Nを免疫原と して、 上記の方法と 同様に、 ゥサギ に免疫 して抗 リ ガン ドウサギポリ ク 口 一ナル抗体を作製した。
また、 実施例 1 4 に記載した方法で精製された L i g F L A G— P T Nを免疫原と して、 成書の方法に従いマ ウ スモ ノ ク ロ一ナル抗体を作成した。 すなわち、 上記のよ う に精製さ れた L i g F L A G— P T Nを B a 1 b / cマ ウス ( 日本国、 ョ本エスエルシー社製) に 1 匹あた り 1 g を皮下 · 皮内 に免疫 した。 2回の免疫後、 眼底採血を行い血清中の抗体価 の上昇を認めた後、 3回目の免疫を行ってからマウスの脾臓 細胞を取 リ 出 し、 マ ウ ス ミ エローマ細胞株 P 3 X 6 3 A g 8 ( A T C C T I B 9 ) とポ リ エチ レングリ コール法にて細 胞融合を行った。 H A T培地 ( 日本国、 日本免疫生物研究所 製) にてハイ プリ ドーマを選択し、 酵素抗体法にて リ ガン ド の細胞外部分を認識する抗体を培地中に産生しているハイブ リ ドーマ株を株を分離し、 リ ガン ドを特異的に認識するマ ウ スモノ ク ローナル抗体を産生するハイプ リ ドーマ産生株が榭 立された。
このよ う に して樹立されたハイ プ リ ドーマの培養上淸をス ゥエーデン国のフ アルマ シア社製 M a b T r a p G I I を用いて、 添付の取扱い説明書に従って、 抗 リ ガン ドモノ ク 口 一ナル抗体を精製 し作製した。
これらの抗体を用いて、 実施例 7で精製された リ ガン ド、 及び実施例 1 3の 1 ) 、 2 ) 及び 3 ) の方法で作製 した遺伝 子導入された C O S — 7細胞の細胞培養から、 実施例 5から 7に記載の方法で精製された各々 の リ ガン ドの濃縮液を、 参 考例 8 に記載の条件でウェスタ ンブロ ッ ト を行った。 ただし、 ゥサギで作製したポ リ ク ローナル抗体に関 しては、 2次抗体 と して英国のアマシャ ム社製抗ゥサギ I g羊抗体を使用 した。 その結果、 すべて 4 2 0 0 0 ダル ト ン付近のブロー ドな部分 のバン ドを染色でき 、 これらの抗体は何れも リ ガン ドを特異 的に識別でき るこ とが明 らかになった。 同様に、 実施例 1 3 の 4 ) 及び 5 ) に記載の方法で作製し、 実施例 1 4に記載の 方法で作製した L i g F L A G— P T N及び L i g I g — P T Nについては、 米国の B i o R a d社製の P V D F メ ンブ ラ ンを用い、 添付の取扱い説明書に従って、 ド ッ ト ブ ロ ッ ト を行なった。 すなわち、 L i g F L A G— P T N及び L i g I g — P T Nの溶液の 5 /x β を米国の B i o R a d社製 P V D F上に落と し、 風乾後、 実施例 8に記載したウェス タ ンブ ロ ッ トの条件と同様の方法で抗体染色 した。 その結果、 共に コ ン ト ロール抗体では染色されなかったが上記の精製抗体全 てによ リ染色される こ とが明 ら力 こなった。
さ らに、 特に上記モ ノ ク ローナル抗体に関 して、 C— 1 細 胞及び実施例 1 3の 1 ) の方法で遺伝子導入され、 4 日後の C O S — 7細胞について、 参考例 1 0に記載 した方法で米国 のコールター社製フ ロ ーサイ ト メ ーター E P I C Sエ リ ー ト にて細胞表面の リ ガン ドの発現の解析を行った。 抗体によ る 染色は成書の方法に従って行った。 1 次抗体と して上記の精 製されたモノ ク ローナル抗体を用い、 2次抗体と して米国の べク ト ンデッキン ソ ン社製ャギ抗マ ウス I g F I T C標識で 行った。 その結果、 C一 1 細胞の全て、 並びに遺伝子導入 C O S— 7細胞およそ 2 0 %が上記のモノ ク ロ ーナル抗体によ リ染色される こ とが確認された。
以上の結果から、 本実施例に示された抗体は実施例 7で精 製された リ ガン ド、 C— 1 細胞上に存在する リ ガン ド、 並び に実施例 1 3 の各々 の条件で発現が確認された リ ガン ドを特 異的に認識するこ と が確認された。
実施例 1 6 リ ガン ドによ るチロ シン残基 リ ン酸化反応
実施例 7で精製された リ ガン ド、 及び実施例 1 4で得られ た L i g F L A G— P T N及び L i g I g — P T Nが参考例
8 に記載の形質転換細胞 B a / F 3 / F U L L F L A Gの細 胞膜表面上に発現されている リ セブタ一型チロ シンキナーゼ の自 己 リ ン酸化を引き起こすかど う かについて調べるため以 下の実験を行った。
リ ン酸化を行う前日 に新しい培地に交換 し、 細胞数 5 X
1 05 c e 1 1 s Zm l に した B a Z F 3 F U L L F L A Gを実験当 日細胞数を 5 X 1 06 個取リ 出 して以下の 8種の 液 5 0 0 /χ β に懸濁 して、 2 0分間、 3 7 °〇にて〇 02 イ ン キュベータ一中で反応させた。 反応液 1 : 培地 ( R P M I 1 6 4 0、 1 0 % F C S , 1 0 0 /i g /m l マウス I L一 3 ) のみ ;
反応液 2 : C— 1 細胞 5 X 1 06 個を反応液 1 の培地で懸 濁した懸濁液 ; 及び
反応液 3 : 実施例 7で精製された リ ガン ドを 5 0 0 μ g / m 1 の濃度で含む反応液 1 の培地 ;
反応液 4 : 実施例 7で精製された リ ガン ドを 1 0 0 g / m 1 の濃度で含む反応液 1 の培地 ;
反応液 5 : L i g F L A G— P T Nを g Zm l の 濃度で含む反応液 1 の培地 ;
反応液 6 : L i g F L A G— Ρ Τ Νを 1 0 0 g /m l の 濃度で含む反応液 1 の培地 ;
反応液 7 : L i g I g — P T Nを 5 0 0 g /m 】 の濃度 で含む反応液 1 の培地 ;
反応液 8 : L i g l g — P T Nを l O O g /m l の濃度 で含む反応液 1 の培地
反応後細胞をすぐに氷中に置き、 あらかじめ冷やしておい た 2 mM N a 3 V O , を含む P B S (― ) を l m l 加え、 4 °〇にて 3 0 0 0 111、 1分間遠心して細胞を落と し、 同 様の作業をさ らにも う 1度行った後、 参考例 1 0記載の方法 で細胞破砕溶液を得た。 この細胞破砕溶液に米国の K o d a k社製 A n t i 一 F L A G M 2 A f f i n i t y G e l を 3 0 β加えて、 沈緞を起こ さないよ う にゆつ く リ と回転させながら、 4 °Cに て反応させて、 ゲル上に F L A Gア ミ ノ 酸配列を有する配列 表の配列番号 3のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドを吸 着させた。 反応後、 4 °C、 5 0 0 0 r p mの条件で 3分間遠 心を行いゲルを沈澱させて、 ゲルを吸わないよ う に上清を除 いた後、 参考例 1 0に記載のセル リ シスバ ッ フ ァ ーを 2 0 0 μ β加えて懸濁した。 更に同様に遠心操作、 懸'渴操作を 3度 行い、 ゲルの沈澱物を得た。 同様の方法によ り コ ン ト ロール 実験実験を B a / F 3 / F U L L F L A Gだけではな く B a Z F 3 Z C O Nについても行って同様のゲル沈澱物を得た。
こ のゲル沈澱物に参考例 8 に記載の方法でウ ェ ス タ ンブ c ッ ト を行った。 ゲルの沈澱物 3 0 β の S D S — P A G Eサ ンプルバッファーを加えて、 2 — M E存在下で沸騰水浴を 5 分行レヽ、 1 5 μ β を 1 つの レーンに流 して S D S — P A G E を行った。 同一サンプルが転写された P V D F メ ンブラ ンを 2組作り 、 1 組は目的の F L A G配列を有する配列表の配列 番号 3番のァ ミ ノ酸配列を有するポ リ ぺブチ ドが回収されて いる こ と を確認し、 も う 一方ではそれのチロ シン残基が リ ン 酸化されているかの判定に用いた。
この結果、 リ ン酸化が確認されたのは反応液 2 、 3 、 5 、 7及び 8であ リ 、 その リ ン酸化の程度は反応液 2 、 7 、 及び 8が強く 、 反応液 3 、 5 はそれよ り も弱く 、 視覚的にみたと こ ろ半分以下程度であった。 従って、 C— 1 細胞との共培養 と同様実施例 8で精製された リ ガン ド、 実施例 1 4 で得られ たし i g F L A G— P T N及び L i g I g — P T Nは リ セプ タ一型チロ シンキナーゼのチ口 シンキナーゼ活性を活性化さ せ、 自 己のチロ シン残基の リ ン酸化を引き起こすこ とが判明 した。 しかしながら、 培地のみではそのよ う なチロ シン残基 の リ ン酸化は見られなかった。 しかしながら、 実施例 8で精 製された リ ガン ド、 実施例 1 4で得られた L i g F L A G— P T Nは希釈された条件、 すなわち反応液 4 、 6 の条件では リ ン酸化を惹起しなかった。 一方、 L i g I g — P T Nは同 様な濃度に希釈した条件下でも十分な リ ン酸化活性を有し、 前の 2者よ り もずつ と強い活性を有していた。
さ らに、 この点に付いて詳細に解析するため、 実施例 1 4 で得られた L i g F L A G— P T Nについて、 反応液 9 (反 応液 5 に対して、 米国のコダック社製モ ノ ク ロ ーナル抗体 A n t i - F L A G M 2 を l O O g Zm l と なる よ う に添 加した反応液) 、 反応液 1 0 (反応液 6 に対して、 米国のコ ダッ ク社製モ ノ ク ロ ーナル抗体 A n t i - F L A G M 2 を I 0 0 g /m l と なるよ う に添加 した反応液) 、 そ してコ ン ト ロールと して、 反応液 1 1 (反応液 1 に対して、 米国の コ ダ ッ ク社製モ ノ ク ロ ーナル抗体 A n t i - F L A G M 2 を l O O g Zm l と なる よ う に添加 した反応液) 、 で同様 な実験を行った。
その結果、 反応液 9及び 1 0では十分に リ ン酸化がされて ぉ リ 、 反応液 2 、 7 、 及び 8 と 同等な程度の リ ン酸化活性を 有 していた。 また、 コ ン ト ロールの反応液 1 1 では リ ン酸化 は見られなかった。
従って、 実施例 8 の方法で精製された リ ガン ドは配列表の 配列番号 3 に記載のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ べプチ ドを リ ン酸化する活性を有する こ と が明 らカ こなった。 また、 実 施例 1 4で得られた L i g F L A G— P T N及び L i g I g 一 P T Nに付いても同様であった。 また、 こ の中で最も高い 活性を有している形態は L i g I g — P T Nの形態でぁ リ 、 さ らに L i g F L A G— P T Nも C末端部分を認識する抗 F L A G抗体を投与する こ と によ リ 、 同様の強い活性を示すこ とから、 2量体も しく はそれ以上の多量体構造を有してなる 形態の方が、 よ リ強い活性を有する リ ガン ドの形態と して望 ま しいこ とが明ら力 こなった。
よって、 これらの化合物は本 リ ガン ドは リ セブタ一型チロ シンキナーゼを発現している細胞に作用 して、 チロ シン残基 の リ ン酸化を促して増殖のシグナルを伝え得る化合物である こ とが示された。
実施例 1 7 リ ガン ドの生理活性
実施例 7で精製された リ ガン ド、 及び実施例 1 4で得られ た L i g F L A G— P T N及び L i g I g — P T Nを用いて その生理活性の確認を行った。
へパ リ ンを加えたさい帯血に P B S ( ― ) を等量加え、 フ イ コーノレノ ッ ク (ス ウェーデン国、 フ ァ ノレマ シ ア社製) にて さい帯血中の単核細胞を遠心分離によ リ 分離した。
こ の よ う に して分離された細胞を更に 2回 P B S (—) に て遠心分離で洗浄し最終的に細胞澳度が 5 X 1 06 c e 1 1 s / m 1 に I MDM培地にて懸濁 してさい帯血単核球懸濁液 を調製した。
コ 口 ニーア ッセィ に必要な試薬は前もつて以下のよ う に調 製した。 3 %メ チルセルロ ース溶液はメ チルセルロ ース ( 日 本国、 和光純薬社製) を沸騰水にて撹拌しなが ら溶かし、 体 温程度まで冷えた後に、 前もって作製した 2倍濃度の I MD M培地を等量加え、 4 °Cにて 5 日 間程度放置して作製した。 1 0 % B S A溶液は米国の S i g m a社製 B S Aを蒸留水に 加えて、 ゆつ く リ と撹拌しながら 4 °Cにて 2 日 間放置して、 完全に溶けたら、 0 . 2 2 μ πιのメ ンブラ ンフ イ ノレター (米 国、 ミ リ ポア社製) にて濂過 して作製した。 こ の溶液につい ては使用直前に 7. 5 %重炭酸ナ ト リ ウム溶液 (米国、 G I B C O— B R L社製) を 1 0 % B S A溶液 5 m l あた リ 2 0 Ο μ β加えた。 5 6 3 7 コ ンディ シ ョ ンメ ディ ウム ( 5 6 3 7 C Μ) は ヒ ト細胞株 5 6 3 7 を米国のコ一ニング社製 Τ— 2 2 5 フラ スコを用レヽて 1 0 % ? 。 5を含む 1 ? ^1 1 1 6 4 0培地 5 0 m 1 にて、 およそ 5 日 間培養 した培養上清を 0. 2 2 μ πιのメ ンブラ ンフ イ ノレター (米国、 ミ リ ポア社製) に て濾過 し作製した。
上記のよ う にコ ロニーア ツセィ用に調製したさい帯血単核 球細胞懸濁液を 3 0 μ β 、 1 0 % B S A溶液を 3 0 0 μ β 、 1 0 mM 2—メノレカプ トエタ ノール溶液を 1 5 β 、 4 0 0 U/m l の ヒ トエ リ ス ロ ポエチン (日本国、 中外製薬社製) 溶液を 1 5 // β , これらを混ぜ合わした溶液に対して、 反応 液 1 ( I MD M培地のみ) 、 反応液 2 ( 5 6 3 7 C Mを 3 0 0 μ H ) 、 反応液 3 (実施例 7 で精製された リ ガン ドを 9 0 0 μ g ) 、 反応液 4 (実施例 1 4 で得られた L i g F L A G 一 P T Nを 9 0 0 /i g ) 、 反応液 5 (実施例 1 4 で得られた L i g l g — P T Nを 3 0 0 /i g ) 、 の各々 を加え、 最終的 な体積が 1 . 8 m 1 になる よ う に I M D M培地を加えた。
この 3者に対して上記のよ う に作製された 3 %メ チルセル ロース溶液を 1 . 2 m l 加えて、 良く 撹拌して均一に し静置 して、 気泡が抜けた後、 シ リ ンジを用いて l m l を米国のフ アルコ ン社製 3 5 m inディ ッ シュに均一になる よ う にまき、
3 7 °Cの C 02 イ ンキュベー タ一にて 2週間培養 した。
2週間の培養後、 1 つのディ ッ シュあた リ のコ ロ ニ一数を 倒立顕微鏡 ( 日本国、 ォリ ンパス社製) にて計測 した。 その 結果、 反応液 1 の I M DMのみではコ ロニ一形成が極めて少 なく ( 1 個及び 0個) 、 反応液 2 の 5 6 3 7 C Mではコ ロニ —の形成が多く みられ ( 5 6個及び 4 8個) 、 反応液 3 の リ ガン ドを含むディ ッ シュはその中間的な値 ( 2 8個及び 3 1 個) の数のコ ロニー形成が観察できた。
また、 別のさい帯血のサンプルを用いた実験から、 反応液 1 の I M D Mのみではコ ロ ニー形成が極め少な く ( 1 個及び 0個) 、 反応液 2の 5 6 3 7 C Mではコ ロ ニーの形成が多く みられ ( 3 5個及び 2 8個) 、 反応液 3 の リ ガン ドを含むデ イ ツシュはその中間的な値 ( 1 0個及び 1 5個) 、 反応液 4 のし i g F L A G— P T Nを含むデイ シュでは 3 と ほぼ同 じ ( 1 2個と 1 4個) 、 反応液 5の L i g I g— P T Nを含む デイ シュではそれらよ り も若干多く ( 2 0個と 2 2個) の数 のコ ロ ニー形成が観察できた。
さ らに別の実験と して別のさい帯血のサンプルにおいて、 コ ロニー形成を促すこ とが知られている ヒ トイ ンターロイ キ ン 3 ( I L— 3 ) (米国、 イ ンタージヱ ン社製) 、 ヒ ト GM 一 C S F (米国、 イ ンタ一ジェ ン社製) 、 ヒ ト S C F (米国、 イ ンタ一ジェン社製) を加えた条件に对し、 さ らにコ ロニー の形成を促すかについて調べた。 すなわち、 上記の反応液 1 、 反応液 3 、 反応液 4 に加えて、 反応液 5 (最終濃度が I L一 3力; I 0 n g 、 GM— C S F力 2 0 n g 、 S C F力 2 0 0 η g ) 、 反応液 6 (反応液 5の条件に実施例 7で精製された リ ガン ドを 5 0 0 g ) 、 反応液 7 (反応液 5の条件に実施例 1 4で得られた L i g I g — P T Nを 1 0 0 μ g ) 、 と した 各々の反応液において同様のコ 口ニーア ッセィ を行った。 その結果、 反応液 1 は 0個及び 0個、 反応液 3 は 7個及び 1 0個、 反応液 4 は 1 5個及び 1 2個、 反応液 5 は 5 5個と 6 8個、 反応液 6 は 6 3個と 7 5個、 反応液 7 は 8 0個と 8 9個であった。 また、 顕微鏡下で観察した結果、 反応液 7 の コ ロニーは他の反応液に比べて視覚的に判断したと こ ろ、 2 割から 5割程度大きかった。
これらの結果から リ ガン ドは血液未分化細胞の増殖を促し、 コ ロニー形成作用を有し、 2 量体も し く はそれ以上の多量体 を有する構造に方がよ り その活性が高いこ と が判明 した。
実施例 1 8 液体培養によ る細胞増殖作用
液体培地における血液細胞の増殖に与える該 リ ガン ドの効 果を調べるため以下の実験を行った。
増殖のァ ッセィに用いた細胞は本願で使用 した リ セプタ一 型チロ シンキナーゼを発現している臍帯血単核細胞を用いた。 該チロ シンキナーゼ発現細胞の検出及び分離は参考例 1 0に 記載した 3 8抗体にて染色 し、 米国のべク ト ンデ ッ キン ソ ン 社製フ 口一サイ ト メ 一ター F A C S V a n t a g e を用い、 添付の取扱い説明書の方法にて細胞の解析、 分離を行った。 この結果、 リ セプタ一型チロ シンキナ一ゼは骨髄単核細胞中 の約数パ一セン 卜 に発現されてお り 、 ま た この細胞は造血幹 細胞のマ一カーである C D 3 4弱陽性、 c — k i t 陽性の細 胞である。 同様に臍帯血単核細胞においてもおよそ 0 . 0 5 %程度の細胞に発現されている こ とが明 らカ こなった。 また、 骨髄並びに臍帯血単核細胞を 1 0 0 n g /m 1 ステムセルフ ア ク ター (米国、 イ ンタ一ジェン社) の存在化で 1 0 %牛胎 児血清 (日本国、 I C Nジャパン社) を含むイ ス コ フ改変ダ ルべ ッ コ培地 (米国、 G I B C O— B R L社) にて 1 X 1 0 7 c e 1 1 s / 1 5 m l で培養を行う と リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼ発現細胞が増加 し、 1 週間程度の培養で培養前に 比べて 1 0倍程度以上の該チロ シ ンキナーゼ発現細胞の割合 が高ま る。 上記の条件で 1 週間の培養後、 F A C S V a n t a e e にて該チロ シンキナーゼを発現 している細胞を分離し た。 また、 同様に培養前の該チロ シンキナーゼ発現細胞も同 様に分離した。
このよ う に分離された細胞を詳 し く 調べるために、 サイ ト ス ピン 3 (英国、 シャ ン ドン社) にて標本を作成し、 メ イ グ リ ュ ワル ト一ギムザ染色し、 顕微鏡下で細胞を調べた。 該チ 口 シンキナーゼ発現細胞は血液細胞ア ト ラ ス ( 日本国、 文光 堂) を参考に細胞を同定したと こ ろ、 血液未分化細胞である こ とが明らかになった。
このよ う に して、 分離された細胞を該 リ ガン ド存在下、 非 存在下の条件で培養して、 細胞数の増加を調べた。 培養の条 件は上記の培地に 1 O n g / m 1 のイ ンタ一ロ イ キン 3 (米 国、 イ ンタ一ジェ ン社) 、 2 U n i t /m l のエ リ ス ロ ポェ チン (日本国、 中外製薬) を加え、 該 リ ガン ド存在区には上 記の方法で作成された L i g I g — P T Nを 5 0 0 n g /m 1 、 抗ヒ ト I g G F c ャギ抗体を 5 μ g / m 1 (米国、 オル ガノ ンテク二力社) を加え、 比較区には該 リ ガン ドの替わ リ にヒ ト血淸由来 I g G (米国、 オルガノ ンテク 二力社) を同 量加えた。 この条件で 5 日 間の培養 した。 細胞数は 2 . 4 X 1 0 A c e 1 1 s / 6 m 1 の条件で行った。
この結果、 該リ ガン ド存在区では細胞は 1 . 7 6 X 1 05 c e 1 1 s / 6 m 1 におよそ 5倍に増加 し、 比較区では 7 .
X 1 0 ' e e l 1 s Z 6 m l で該 リ ガン ド存在区の半分に と どまった。 また、 細胞を詳 しく 調べるため、 上記同様に細 胞の標本染色を行ったと こ ろ、 前の形質を保持 していた。 こ の結果から、 本願の リ ガン ドは血液未分化細胞を増殖させる 作用を有する こ とが判明 した。
実施例 1 9 L E R K— 2 との比較
本新規リ セブタ一型チロ シンキナーゼ リ ガン ドは既知分子 である L E R K— 2 と 5 4 %のホモロ ジ一が有 り 、 該 リ ガン ドと 同様な作用を有する こ とが想像されるため、 リ セプタ一 に対する作用についての比較を行った。
L E R K— 2遺伝子の入手は以下のよ う に行った。 すなわ ち、 Beckmannらの論文 ( EMBO J , 13 , 3757-3762 , 1994 ) も しく は W0 9 4 Z 1 1 3 8 4 の明細書に記載されている遺伝子配 列を基に配列表の配列番号 2 3 ( L E R K— 2 のア ミ ノ酸を コー ドする初めのメ チォニンから 2 9ベース上流の遺伝子配 列から 2 0ベースのセ ンス鎖の配列に相当する) 及び配列番 号 2 4 ( L E R K— 2 のア ミ ノ酸配列をコー ドする部分の終 止コ ドンから上流の 2 3ベース上流の遺伝子配列から終止コ ドンま での 2 3ベースのア ンチセ ンス鎖の配列に相当する) の遺伝子配列を有するオ リ ゴヌク レオチ ドをブライマ一と し て、 ヒ ト胎盤 c D N A (米国、 C I o n t e c h社) をテ ン プレー ト と して用いて、 上記に示 した P C R法にて遺伝子ク ロ ーニ ンク を行った。
このよ う に して分離された L E R K— 2遺伝子を実施例 1 3及び参考例 8 に記載した方法と全く 同様な手法を用いて、 該 リ ガン ドと 同様に L E R K— 2 リ コ ンビナン ト タ ンパク発 現べク タ一を構築し、 遺伝子導入にょ リ 生産し、 'さ らに細胞 培養上清から参考例 9 に記載の方法にて精製した。 これらの 発現ベク ターは L E R K— 2の細胞外部分、 すなわちに上記 の Bee kmannらの論文に記載されている L E R K - 2のァ ミ ノ 酸配列の 2 3 7番目 のア ミ ノ酸までの部分のア ミ ノ 酸配列に ヒ ト I g Gの F c部分のア ミ ノ酸配列がつながった分子また は F L A G配列がつながった分子を発現させるべク ターの 2 種でぁ リ 、 この各々 の分子を L E R K— 2 I g — P T N、 及 び L E R K— 2 F L A G— P T Nとする。
まず初めに リ セプタ一型チロ シンキナーゼに対する該 リ ガ ン ドと L E R K— 2 の結合能力に関 して B I A c o r e にて 調べた。 実施例 2に記載した方法で E X I g を結合させた ンサーチップに対し、 該リ ガン ドの細胞外部分タ ンパクすな わち L i g I g — P T N及び L i g F L A G— P T N も し 、: は L E R K— 2の細胞外部分タ ンパクすなわち L E R K— 2 I g — P T N及び L E R K— 2 F L A G— P T Nを 1 から 1 O O i g /m l の澳度段階で流し、 測定 した。 また、 コ ン ト ロールと して牛血淸アルブミ ン ( B S A ) (米国、 シグマ社) を用いた。
この結果を図 9に示す。 この結果は L i g F L A G - P T N力 5 μ g / m 1 、 L E R K— 2 F L A G— P T N力 5 0 μ g /m l 、 また B S Aが 1 0 0 μ g Zm l の濃度で測定した 結果である。 こ のグラフカゝら明らかなよ う に、 L E R K— 2 は該リ セプター型チロ シンキナーゼに対し、 かな リ の高濃度 でも弱い結合を示すにと どま リ 、 それに比べ該 リ ガン ドは極 めて強く 結合する こ とが明 らかになった。 またさ らに、 異な つた濃度及び I g Gキメ ラタ ンパク を用いて測定を行い、 こ のデータを基に各々 の結合定数を求めた。 計算方法に関 して は B I A c 0 r e に附属のコ ンピュータ一ソフ ト ウエア B I A e v a 1 u a t i o n 2 . 1 及びその取扱い説明害に した がって計算 した。 その結果、 該リ ガン ドの K d値は 1 . 2 3 X 1 0—9Mで L E R K— 2 は 1 . 3 5 X 1 0— 7Mであ リ 、 該 リ ガン ドは L E R K— 2 に対しおよそ 1 0 0倍の結合能を有 する こ とが明 ら力 こなった。
次に、 該チロ シンキナーゼの リ ン酸化活性について実施例 1 6及び参考例 8 の方法を用いて調べた。 その結果を図 1 0 に示す。 各レーンのサンプルは 1 がコ ン ト ロール、 2 カ L i g I g — P T N、 1 0 0 n g / m 1 に対し米国のオルガノ ン テク二力社製抗ヒ ト I g G F c ャギ抗体を 1 μ g Zm l 、 3 力 i g I g _ P T N、 1 μ g / m 1 に対し米国のオルガノ ンテク ニ力社製抗ヒ ト I g G F c ャギ抗体を 1 O ju g /m 1 , 4 力; L E R K — 2 I g — P T N 、 1 O O n g / m l に対し米 国のオルガノ ンテク 二力社製抗ヒ ト I g G F c ャギ抗体を 1 μ g / m 1 , 5 が L E R K - 2 I g — P T N、 1 μ g / m \ に対し米国のオルガノ ンテク二力社製抗ヒ ト I g G F c ャギ 1 4 1
抗体を I 0 ju g /m l 、 各々加えて、 実施例 1 6 に示 した反 応液で反応させて行ったものである。 図 1 0の Aは抗 リ ン酸 化チロ シンモ ノ ク ロ ーナル抗体 (米国、 U B I 社) で、 Bは 抗 F L A GM 2モ ノ ク ローナル抗体 (米国、 K o d a k社) で各々染色し、 参考例 8の条件で X線フ ィ ルムに焼き付けた。 また、 分子量からブロ ッ ト されている該チロ シ ンキナーゼを 矢印で示した。
この結果から明 らかなよ う に レー ン 4及び 5 の L E R K— 2は極めて弱いなが ら該チ口 シンキナーゼの リ ン酸化を引き 起こすが、 それはレーン 2及び 3の該リ ガン ドょ リ もはる力 に弱く また高澳度の条件下、 すなわち レーン 5の 1 μ g /m 1 においてもその作用が高ま らないこ と から量の問題ではな く その作用自身が極めて弱いこ と は明 らかである。
従って、 以上の結果から L E R K— 2 は本願の リ セブタ— 型チロ シンキナーゼ リ ガン ドが有する物理化学的性質を持た ないこ とから、 本願に示すよ う な生理作用はないと結論づけ られた。
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1 o I1RC-5 k TP ¾f ftfc UFU+10%FCS ATCC (CCl 171)
Λ A Raj i ヒ 卜 ノ ーキッ 卜 リ ンノ flS RPUI +10 FCS ATCC (CCL86)
1 x U937 ヒ 卜骨 fl£性白血病 RPU1+10%FCS ATCC(、CRL1593)
X u MKN-74 ヒ ト II疮(赛分ィヒ沏 状〉 RPUI + 10XFCS 免疫生物研究所
1 1 KN-28 ト胃癌(高分化型管状) RPU1+10%FCS 免疫生物研究所
R o UKN-1 ヒ ト宵^ (僞平上皮痛) Rpui - o%FCS 岩并ィヒ学
Ί Q A431 ヒ ト想表皮膽 Rpui + i
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2 2 HeLa-OHIO ヒ ト十 gffi部 ft KrM 1 + 1U ト tS 大 H不 ΪΪ楽
2 3 COLO - 205 ヒ ト大腸癌(アデ ルシ/-マ) RPMI+10 FCS ATCC(CCL222)
2 4 H - 1 ヒ ト胆管 « RPyi+10%FCS 免疫生物研究所
2 5 BT-20 ヒ ト乳 ft Pyi+10%FCS ATCC(HTB19)
2 6 PC-14 ヒ ト肺癌 RPIII + 10XFCS 理化学研究所(RCB0446)
2 7 PC- 9 ヒ 卜肺癌(分化型腺癌) RPMI+10%FCS 免疫生物研究所
2 8 KB ヒ ト鼻咽頭癌 RPU1+10%FCS ATCC(CCLH)
2 9 T-24 ヒ ト膀胱癌 RPMI+10 FCS ATCC(HTB4)
表 2
リガンド結合活性(RU
細胞名 刺敏 Exlg-PTN EXFLAG-PTN _浚縮倍率
5637 96 45 57
PMA 117 x43 SEKI 196 112 xll8
PMA 153 xl28 UT-7 67 xl33
PMA 67 xl30 567 97 xl38
PMA 161 100 xl38 THP-1 143 132 x63
PMA 142 x65 Daudi 64 x65
PMA 110 x56 Jurkat 108 xll3
PMA 93 xl88 CCRF-CEM 151 86 xlll
PMA 107 xlll KG-la 90 xll3
PMA 83 33 x94 HL-60 25 x89
PMA 32 x80 Hep3B 63 x59
PMA 48 x48 KATOm 158 116 x52
PMA 167 x55 MRC-5 26 x77
PMA 45 x59 TNF 62 x49 aji 32 x67
PMA 20 x94 U937 124 73 xl36
PMA 135 xl68 MKN-74 12 xl02
PMA 37 x83 TNF 90 x97
MKN-28 36 x64
PMA 80 x69 TNF 83 x73
(統く) 表 2 (統き)
リガンド結合活性(RU)
No. 細胞名 刺散 Exlg-PTN EXFLAG-PT 箱倍率
18 M -1 ' 61 x9l
PMA 80 xlOO TNF 63 xl03
19 A431 44 x50
PMA 74 x54 TNF 139 86 x65
20 C-1 160 60 x65
PMA 385 154 x89 TNF 227 87 x78
21 Hcla 94 x83
PMA 77 x81 TNF 117 x81
22 Hela-OHIO 81 xl24
PMA 100 xl43 23 COLO-205 180 75 x58
PMA 160 92 x60 TNF 192 x81
24 H-l 163 77 x92
PMA 194 111 x94 TNF 146 77 ス 100
25 BT-20 x78
PMA 15 x91 TNF 13 x83
26 PC- 14 86 x79
PMA 72 x70 TNF 89 x72
27 PC-9 35 x83
PMA 41 xlOO TNF 61 x91
28 KB 94 x73
PMA 225 328 x84
29 T24 76 x75
PMA 33 x89 TNF 88 x61 4 5
表 3
サンブル リガンド桔合活性 (RU) 精製前画分 134 カラム素通り画分 30
洗诤画分 4 溶出面分 (5分の 1希釈)
fraction No.
1 -8
2 -8
3 25
4 258
5 230
6 42
7 9
8 2
産業上の利用可能性
血液未分化細胞の分化及び増殖に関与する特定の リ セプタ 一型チロ シンキナーゼの細胞外部分に結合して、 その細胞内 部分のチロ シンキナーゼ酵素活性を賦活化し、 該チロ シンキ ナーゼの リ ン酸化を引き起こす本発明の リ ガン ド及び該 リ ガ ン ドを含む複合体は血液未分化細胞の分化及び増殖を促進す る作用を有する こ とから、 白血病や骨髄移植など、 増血幹細 胞を含む血液未分化細胞に関連する問題の研究や治療に有用 に用いる こ とができ る。
配列表
配列番号 1
配列の長さ : 5 2 2
配列の型 : アミ ノ酸
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : タンパク質
起源
生物名 : ヒ ト
配列
Leu Gl u Glu Th【 Leu Leu Asn Th r Lys Leu Glu Thr Ala As p Leu Lys
1 5 10 15
Trp Ya 1 Thi Phe Pro Gin Va 1 Asp Gly GID Tip Glu Glu Leu Ser G
20 25 30
Leu Asp Glu Glu Gin His Ser Va 1 Arg Thr Tyr Glu Va 1 Cys Asp Va 1
35 40 45
Gin Arg Ala Pro Gly Gin Ala His Trp Leu Arg Thr Gly Ttp Val Pro
50 55 60
Arg Arg Gけ Ala Val His Val Tyr Ala Thr Leu Arg Phe Thr Met Leu 65 70 75 80
Glu Cys Leu Ser Leu Pro Arg Ala Gl Arg Sei Cys Lys Glu Thr Phe
85 90 95
Th r Val Pbe Tyr Tyr Glu Ser Asp Ala Asp Thr Ala Thr Ala Leu Thr
100 105 110
Pro Ala Trp Met Glu Asn Pro Tyr l ie Lys Val Asp Thr Val Ala Ala
115 120 125
Glu His Leu Tht Arg Lys Arg Pro Gly Ala Glu Ala Thr Gly Lys Va 1
130 135 NO
Asn Va I Lys Thr Leu Arg Leu CI y Pro Leu Ser Lys Ala Gly Phe Ty r 145 150 155 160 Leu Ala Phe Gin Asp Gin Gl y Ala Cys Met Ala Leu Leu Se r Leu His
165 170 175
Leu Phe T" Lys Lys Cys Ala Glo Leu Thr Va 1 Asn Leu Thr Arg Phe
180 185 190
Pro Glu Thr Va 1 Pro Aig Glu Leu Va 1 Va 1 Pro Va 1 Ala Gけ Ser Cys
195 200 205
Va 1 Va I Asp Ala Va 1 Pro Ala Pro Gly P【o Ser Pro Ser Leu Ty【 Cys
210 215 220
Arg Glu Asp Gly Gin Trp Ala Glu Gin Pro Va 1 Thr Gly Cys Ser Cys 225 230 235 240
Ala Pro Gly Phe Glu Ala Ala Glu Gly Asn Thr Lys Cys Arg Ala Cys
245 250 255
Ala Glo Gly Thr Phe Lys Pro Leu Ser Gly Glu Gly Ser Cys Gin Pro
260 265 270
Cys Pro Ala Aso Ser His Ser Asn Thr l ie Gl Ser Ala Va 1 Cys Gin
275 280 285
Cys Arg Va 1 Gl Tyr Phe Arg Ala Arg Thr Asp Pro Arg Gl Ala Pro
290 295 300
Cys Tb【 Th【 Pro Pro Ser Ala Pro Arg Sei Va 1 Va 1 Ser Arg Leu Asn 305 310 315 320
Gl y Ser Ser Leu His Leu Glu Tip Ser Ala Pro Leu Glu Ser Gly Gly
325 330 335
Arg Glu Asp Leu Th r Tyr Ala Leu Arg Cys Ar Glu Cys Ar Pro Gly
340 345 350
Gl Ser Cys Ala Pro Cys Gly Gl Asp Leu Th r Phe Asp Pro Gly Pro
355 360 365
Ai g Asp Leu Va 1 Glu Pro Trp Va 1 Va 1 Va I Arg Gly Leu Arg Pro Asp
370 375 380
Phe Thr Tyr Thr Phe Glu Va 1 Thr Ala Leu Asn Gl Va I Ser Ser Leu 385 390 395 400
Ala Thr Gly Pro Va I Pro Phe Gl u Pro Va 1 Asn Va 1 Th r Tbr Asp Ar g
405 410 415
Gl u Va 1 Pro Pro Ala Va I Se r Asp I 1 e Arg Va 1 Tbr Ar g Se r Ser Pro
420 425 430
Ser S e r Leu Ser u Ala T r p Ala Va 1 Pro Arg A I a Pro Ser Gly Ala
435 440 445
Va 1 Leu Asp Tyr Gl u Va 1 Lys Tyr His Gl u Lys Gly Ala Gl u Gl Pro
450 455 460
Ser Ser Va 1 Arg Phe Leu Lys Thr Ser Glu Asn Arg Ala Glu Leu Arg 465 470 475 480
Gl Leu Lys Arg Gly Ala Ser Tyr Leu Va 1 Gin Va 1 Arg Ala Arg Ser
485 490 495
Glu Ala Gly Tyr Gl Pro Phe Gly Gin Glu His His Ser Gin Thi Gin
500 505 510
Leu Asp Glu Ser Glu Gly Tr p Arg Glu Gin
515 520 配列番号 2
配列の長さ : 9 7 2
配列の型 : アミ ノ酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : ア ミ ノ酸
起源
生物名 : ヒ ト
配列
Leu Glu Glu Thr Leu Leu Asn Tb i Lys Leu Glu Th r A 1 a As p Leu Lys Tr p Va 1 Thr Phe Pro Gin Va 1 Asp Gl y Gin Trp Glu Glu Leu Ser Gl y
20 25 30
Leu Asp Glu Glu Gin His Ser Va 1 Arg Thr Tyr Glu Va 1 Cys Asp Va I
35 40 45
Gin Arg Ala Pro Gけ Gin Ala His Trp Leu Arg Thr Gl Trp Va 1 Pro
50 55 60
Arg Arg Gly Ala Va 1 His Ya 1 T t Ala Thr Leu Arg Phe Thr Met Leu 65 70 75 80
Glu Cys Leu Ser Leu Pro Arg Ala Gly Arg Ser Cys Lys Glu Thr Phe
85 90 95
Thr Va I Phe Tyr Tyr Glu Ser Asp Ala Asp Thr Ala Thr Ala Leu Thr
100 105 110
Pro Ala Trp Met Glu Asn Pro Tyr lie Lys Va 1 Asp Thr Va 1 Ala Ala
115 120 125
Glu His Leu Th【 A【g Lys Arg Pro Gl Ala Glu Ala Thr G Lys Va 1
130 135 140
Asn Va 1 Lys Th r Leu Arg Leu Gly Pro Leu Ser Lys Ala Gly Phe Tyr 145 150 155 160
Leu Ala Phe Gin Asp Gin Gly Ala Cys Met Ala Leu Leu Ser Leu His
165 170 175
Leu Phe Tyr L Lys Cys Ala Gin Leu Thr Va 1 Asn Leu Thr Arg Pbe
180 185 190
Pro Glu Thr Va 1 Pro Arg Glu Leu Va I Va 1 Pro Va 1 Ala Gly Ser Cys
195 200 205
Va I Va 1 Asp Ala Va 1 Pro Ala Pro Gly Pro Ser Pro Ser Leu Tyr Cys
210 215 220
Arg Glu Asp Gl Gin Trp Ala Glu Gin Pro Va 1 Thr Gly Cys Ser Cys 225 230 235 240
Ala Pro C I y Phe Glu Ala Ala Glu Gly Asn Thr Lys Cys Arg Ala Cys 08C S 0 S9^
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Tyi Va 1 His Ar g Asp Leu Al a Ala Arg Asn I 1 e Leu Va 1 Asn Se r Asn
725 730 735
Leu Va 1 Cys Lys Va 1 Ser Asp Phe Gl y Leu Se r Arg Phe Leu Glu Gl u
740 745 750
Asn Ser Ser As p Pro Thr Tyr Th r Ser Ser Leu Gl Gけ Lys l ie Pro
755 760 765
l i e Arg Trp Th r Ala Pro Glu Ala l ie Al a Phe Arg Lys Phe Thr Ser
770 775 780
Ala Ser Asp Ala Trp Ser T" G l ie Va 1 Met Trp Glu Va 1 Met Ser 785 790 795 800
Pbe Gl Glu Arg Pro Tyi Trp Asp Met Ser Asn Gin Asp Va I l ie Asn
805 810 815
Ala I 1 « Glu Gin Asp Tyr Arg Leu Pro Pro Pro Pro Asp Cys Pro Thr
820 825 830
Se I Leu His Gin Leu Met Leu Asp Cys Trp Gin Lys Asp Arg Asn Ala
835 840 845
Arg Pro Arg Phe Pro Gin Va 1 Va 1 Ser Ala Leu Asp Lys Met l ie Arg
850 855 860
Asn Pro Ala Ser Leu Lys l ie Va 1 Ala Arg Glu Asn Gl Gl y Ala Ser 865 870 875 880
Hi s Pro Leu Leu As Gin Arg Gin Pro Hi s T r Ser Ala Phe Gl y Ser
885 890 895
Va 1 CI y Glu Trp Leu Arg Ala I 1 e Lys Met Gl Arg Tyr Glu Glu Ser
900 905 910
Phe Al a Ala Ala Gけ Phe Gl Ser Phe Glu Leu Va 1 Ser Gin l ie Ser
915 920 925
Ala Glu Asp Leu Leu Arg l ie G 1 Va 1 Thr Leu Ala Gl y His Gin Lys 930 935 940 54
Lys l ie Leu Ala Se r Va 1 Gin His Met Lys Se r Gin Ala Lys Pi Gly
945 950 955 960
Thr Pro Gly G Thr Gけ G Pro Ala Pro Gin Tyr
965 970 配列番号 3
配列の長さ : 4 2 9 0及び 9 8 7
配列の型 : 核酸及びァ ミ ノ酸
鎖の数 : 二本鎖及び一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : c D NA to m R N A、 及びアミ ノ酸
起源
生物名 : ヒ 卜
ただし遗伝子配列の Xは遣伝子配列が未決定。
配列
GCGCTGGCG GGGAGGGAAC ACAGGTCAGT GTGGCGACAG GGGTCACGGT 49 GGACACGGGG GTGGGCTGTC TCAGGGGGGG ACACCGCGAG CGGCCGGCTC ACCCCCCGCC 109 ACCCGGGGCG GGACCCCGAG GCCCCGGAGG GACCCCAACT CCACCCACGT CTTGCTGCGC 169 GCCCGCCCGG CGCGGCCACT GCCAGCACGC TCCGGGCCCG CCGCCCGCGC GCGCGCACAG 229 ACGCGGGGCC ACACTTGGCG CCGCCGCCCG GTGCCCCGCA CGCTCGCATC GGCCCGCGCT 289 GAGCGCCCGA CGAGGAGTCC CGCGCGGAGT ATCGGCGTCC ACCCGCCCAG GGAGAGTCAG 349 ACCTXXXXXG GCGAGGCCCC CCCAAACTCA GTTCGGATCC TACCCGAGTG AGGCGGCGCC 409 ATG GAG CTC CGG GTG CTG CTC TGC TGG GCT TCG TTG GCC GCA GCT TTC 457 Met Gl u Leu Arg Va 1 Leu Leu Cys Trp Ala Ser Leu Ala Ala Ala Leu -15 -10 -5 -1 1
GAA GAG ACC CTG CTG AAC ACA AAA TTG GAA ACT GCT GAT CTG AAG TGC 505 Glu G I u Thr Leu Leu Asn Th r Lys Leu Glu Thr Ala Asp Leu Lys Tr
5 10 15
GTG ACA TTC CCT CAG GTG GAC GGG CAG TGG GAG GAA CTC AGC GGC CTG 553 . 56
TTC TAC AAA AAG TGC GCC CAG CTG ACT CTG AAC CTG ACT CGA TTC CCG 1033 Phe Tyr L ys Lys Cys Ala Gin Leu Tin Va 1 Asn Leu Thr Arg Phe Pro
180 185 190
GAG ACT GTG CCT CGG GAG CTG GTT GTG CCC CTG GCC CGT AGC TGC GTG 1081
Glu Thr Va 1 Pro Arg Glu Leu Val Val Pro Val Ala Gly Ser Cys Val
195 200 205
GTG GAT GCC GTC CCC GCC CCT GGC CCC AGC CCC AGC CTC TAC TGC CGT 1129 Va 1 Asp Ala Va 1 Pro Ala Pro Gly Pro Ser Pio Ser Leu Tyr Cys Arg 210 215 220 225
GAG GAT GGC CAG TGC GCC GAA CAG CCG GTC ACG GGC TGC ACC TGT GCT 1177
Glu Asp Gけ Gin Trp Ala Glu Gin Pio Val Th【 G Cys Ser Cys Ala
230 235 240
CCG GGG TTC GAG GCA CCT GAG GGG AAC ACC AAG TGC CGA GCC TGT GCC 1225 Pro Gl Phe Glu Ala Ala Glu C 1 Asn Thr Lys Cys Arg Ala Crs Ala
245 250 255
CAG GGC ACC TTC AAG CCC CTG TCA GGA GAA GGG TCC TGC CAG CCA TGC 1273 Gin Gly Thr Phe Lys Pro Leu Ser Gly Glu Gly Ser Cys Gin Pro Cys
260 265 270
CCA CCC AAT AGC CAC TCT AAC ACC ATT GGA TCA GCC GTC TGC CAC TCC 1321 Pro Ala Aso Ser His Ser As Q Thr l ie Gly Ser Ala Val Cys C i D Cys
275 280 285
CGC GTC GGG TAC TTC CGG GCA CGC ACA GAC CCC CGG GGT CCA CCC TGC 1369 A【 g Va 1 Gly Tyr Phe Arg A 1 a Ac g Thr Asp Pro Ai g Gl Ma Pro Cys 290 295 300 305
ACA ACC CCT CCT TCG GCT CCG CGG AGC GTG GTT TCG CGC CTG AAC GGC
Thr Thr Pro Pro Se I Ala Pro Arg Ser Val Val Ser Arg Leu Aso Gly
310 315 320
TCC TCC CTC CAC CTC GAA TGG ACT GCC CCC CTG GAG TCT GCT GGC CGA 1465
Se r Se【 Leu H i s Leu Glu Trp Ser Ala Pro Leu Glu Ser Gly Gly Arg SKI OVO 丄:)丄 33;) 030 003 V10 9V3 010 91D :) VI 33V DDO VOO OOD OVV 013 o S 0
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Z0/S6dT/XDd Leu Lys Arg Gly Ala Ser Tyr Leu Val Gin Val Arg At a Arg Se Glu 485 490 495
GCC CGC TAC GGG CCC TTC GGC CAG GAA CAT CAC AGC CAG ACC CAA CTG 1993
Ala Gl Tyr Gly Pro Phe Gly Gin Glu His His Ser Gin Thr Gin Leu
500 505 510
GAT GAG AGC GAG GCC TGG CGG GAG CAC CTG GCC CTG ATT GCG GGC ACG 2041
As p G 1 u S e r Glu Gl Trp Arg Glu Gin Leu A 1 a Leu l ie Ala Gl Thr
515 520 525
GCA GTC GTG CGT GTG GTC CTG GTC CTG GTG GTC ATT GTG GTC GCA GTT 2089 Ala Va 1 Va 1 Gly Va 1 Val Leu Val Leu Val Va 1 l ie Val Val Ala Va 1 530 535 540 545
CTC TGC CTC AGG AAG CAG AGC AAT GGG AGA GAA GCA GAA TAT TCG GAC 2137
Leu C y s Leu Ar Lys Gin Ser As n Gly Arg Glu Ala Glu Tyr Ser Asp
550 555 560
AAA CAC GGA CAG TAT CTC ATC GGA CAT GGT ACT AAG GTC TAC ATC GAC 2185 Lys His Gl Gin T t Leu lie Gly His Gl Thi Lys Val Tyr l ie Asp
565 570 575
CCC TTC ACT TAT GAA GAC CCT AAT GAG GCT GTG AGG GAA TTT GCA AAA 2233 Pro Phe Thr T" Glu A p Pro A a Glu Ala Val Arg Glu Phe Ala Lys
580 585 590
GAG ATC GAT GTC TCC TAC GTC AAG ATT GAA GAG GTG ATT GGT GCA GCT 2281 Gl u l ie Asp Va 1 Ser Tyr Val Lys l ie Glu Glu Val l ie Gl Ala Gl
595 600 605
GAG TTT GGC GAG GTC TGT CGG GGG CGG CTC AAG GCC CCA GGG AAG AAG 2329 Gl u Phe Gly Glu Val Cys Arg Gly Arg Leu Lys A I a Pro Gly Lys Lys 610 615 620 625
GAG AGC TGT GTG GCA ATC AAG ACC CTG AAG GCT GGC TAC ACG GAG CGC 2377 Gl u Se r Cys Va 1 Ala l ie Lys Thr Leu Lys Gl Gl Tyr Thr Glu Arg
630 635 640 】3S 1Ή iio i i »n \n 3i ] ^10 JU 19S d】丄 eiv dsy 135
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6 9 1
Z0/S6df/XDiI ζτειτ/96θΛλ 790 795 800
GGG GAG AGG CCG TAC TGG GAC ATG AGC AAT CAC GAC GTG ATC AAT CCC 2905 GI Glu Aig Pro Tyi Trp Asp Met Se r ASD Gin Asp Va 1 lie Asn Ala
805 810 815
ATT GAA CAG GAC TAC CGG CTG CCC CCG CCC CCA GAC TGT CCC ACC TCC 2953 I 1 e Glu Gin Asp Tyi K:g Leu Pro P o Pro Pro Asp Cys P [ o Tbi Set
820 825 830
CTC CAC CAG CTC ATG CTG GAC TGT TGG CAG AAA GAC CGG AAT GCC CGG 3001 Leu His Gin Leu Met Leu Asp Cys Trp Gin Lys Asp Arg Asn Ala Arg
835 840 845
CCC CCC TTC CCC CAG GTG GTC AGC GCC CTG GAC AAG ATG ATC CGG AAC 3049 Pro Arg Phe Pro Gin Val Va 1 Ser Ala Leu Asp Lys Met l ie Arg Asn 850 855 860 865
CCC GCC AGC CTC AAA ATC GTG GCC CGG GAG AAT GCC GGG GCC TCA CAC 3097 Pro Ala S e i Leu Lys l ie Val Ala Arg Glu Asn Gly Gl y Ala Ser His
870 875 880
CCT CTC CTG GAC CAG CGG CAG CCT CAC TAC TCA CCT TTT GGC TCT GTG 3145 Pro Leu Leu Asp Gin Arg Gin Pro His Tyr Ser Ala Phe G I y Ser Val
885 890 895
GGC CAC TGG CTT CGG GCC ATC AAA ATC GGA AGA TAC GAA GAA ACT TTC 3193 Gl Glu Trp Leu Arg Ala l ie Lys Me t Gly Arg Tyr Glu Glu Se Phe
900 905 910
GCA GCC GCT GGC TTT GGC TCC TTC GAG CTG GTC AGC CAG ATC TCT GCT 3241 A 1 a Ala Ala Gly Phe Gly Ser Phe Glu Leu Va 1 Ser Gin l ie Ser Ala
915 920 925
GAG GAC CTG CTC CGA ATC GGA GTC ACT CTG GCG GGA CAC CAG AAG AAA 3289 Glu Asp Leu Leu Arg l ie Gly Val Thr Leu Ala Gly His Gin Lys Lys 930 935 940 945
ATC TTG GCC ACT GTC CAG CAC ATG AAC TCC CAG GCC AAC CCG GGA ACC 3337 1 6 1
I 1 e Leu Ala Se r Va 1 Gin His Met Lys Se r Gin Ala Lys Pro Gly Th r
950 955 960
CCG GGT GGG ACA GGA GGA CCC CCC CCG CAG TAC 3370 Pro Gly G 1 y Th r Gly Gly Pro Ala Pro Gin Ty r
965 970
TGACCTGCAG CAACTCCCCA CCCCAGCCAC ACCGCCTCCC CATTTTCCGG GGCAGAGTGG 3430
GGACTCACAG AGGCCCCCAG CCCTGTGCCC CGCTGCATTG CACTTTGAGC CCGTGGGGTG 3490
AGGAGTTGGC AATTTGGAGA GACAGGATTT GGGGGGTTCT CCCATAATAG GAGGGGAAAA 3550
TCACCCCCCC AGCCACCTCG GGGAACTCCA GACCAAGGCT GAGGGCGCCT TTCCCTCAGG 3610
ACTGGGTGTG ACCAGAGGAA AAGGAAGTGC CCAACATCTC CCAGCCTCCC CCAGGTGCCC 3670
CCCCTCACCT TGATGCGTGC GTTCCCGCAG ACCAAAGAGA CTGTGACTCC CTTGCCAGCT 3730
CCAGAGTGGG GGGGCTGTCC CAGGGCGCAA GAAGGGGTGT CAGGGCCCAG TGACAAAATC 3790
ATTGGGGTTT GTAGTCCCAA CTTGCTGCTG TCACCACCAA ACTCAATCAT TTTTTTCCCT 3850
TGTAAATCCC CCTCCCCCAG CTCCTGCCTT CATATTGAAG GTTTTTGAGT TTTGTTTTTG 3910
GTCTTAATTT TTCTCCCCGT TCCCTTTTTG TTTCTTCGTT TTGTTTTTCT ACCGTCCTTG 3970
TCATAACTTT GTCTTGGAGG GAACCTGTTT CACTATGGCC TCCTTTGCCC AAGTTGAAAC 4030
AGGGGCCCAT CATCATGTCT GTTTCCAGAA CAGTGCCTTG GTCATCCCAC ATCCCCGGAC 4090
CCCGCCTGGG ACCCCCAAGC TGTGTCCTAT GAAGGGGTGT GGGGTGAGGT AGTGAAAAGG 4150
GCGGTAGTTG GTGGTGGAAC CCAGAAACGG ACCCCGGTGC TTGGAGGGGT TCTTAAATTA 4210
TATTTAAAAA AGTAACTTTT TGTATAAATA AAAGAAAATG GGACGTGTCC CAGCTCCAGG 4270
GGTGAAAAAA AAAAAAAAAA 4290 配列番号 4
配列の長さ : 8
配列の型 : ア ミ ノ酸
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : タンパク質
起源
生物名 : ヒ 卜 配列 : Lys Ser l ie Va 1 Leu Glu Pro l ie
配列番号 5
配列の長さ : 1 9 5
配列の型 : アミ ノ酸
鎖の数 : 一本鑛
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : ア ミ ノ酸
起源
生物名 : ヒ ト
配列
Lys Ser l ie Va 1 Leu Glu Pro l ie Tyt Trp Asn Ser Ser Asn Ser Lys
1 5 10 15
Pbe Leu Pro Gl Gin Gly Leu Va 1 Leu Tyr Pro Gin l ie CI y Asp Lys
20 25 30
Lea Asp l ie l ie Cys Pro Lys Va 1 Asp Ser l y % Thr Va 1 Gly Gin Tyr
35 40 45
Glu Tyr Tyr Lys Va I Tyr Met Va 1 Asp Lys Asp Gin Ala Asp Arg Cys
50 55 60
Thr l ie Lys Lys Glu Asn Th t Pro Leu Leu Asn Cys Ala Lys Pro As 65 70 75 80
Gin Asp l ie Lys Pbe Thr I 1 e Lys Phe Gin Glu Phe Ser Pro Asn Leu
85 90 95
Trp Gly Leu Glu Pbe Gin Lys Asn Lys Asp T" Tyr l ie l ie Ser Thr
100 105 110
Ser Asn Gly Ser Leu Glu Gly Leu Asp Asn Gin Glu Gly Gl y Va 1 Cys
115 120 125
Gin Thr ^ ^ l Ala Met Lys l ie Leu Met Lys Va 1 Gly Gin Asp Ala Ser 130 135 140 1
Ser Ala Gly Sei Th r Arg Asn Lys Asp Pro Thi Ai g Ar g Pro G I u Leu 145 150 155 160
Gl u Ala Gly Thr Asn Gly Arg Ser Ser Thr Thr Ser Pro Phe Val Lys
165 170 175
Pro Asn Pro Gly Ser Ser Tbr Asp G 1 Asn Ser Ala Gl His Ser Gly
180 185 190
Asn Asn I 1 e
195 配列番号 6
配列の長さ : 3 0 8
配列の型 : アミ ノ酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : アミ ノ酸
起源
生物名 : ヒ ト
配列
Lys Ser lie Val Leu C 1 u Pro lie Ty r Tr p Asn Ser Ser Asn Ser Lys
1 5 10 15
Phe Leu Pro G Gin Gl Leu Val Leu Tyr Pro Gin lie CI Asp Lys
20 25 30
Leu Asp l ie i 1 e Cys Pro Lys Val Asp Ser Lys Thr Val Gly Gin Tyr
35 40 45
Gl u Tyr Tyr Lys Val Tyr Met Val Asp Lys Asp Gin Ala Asp Arg Cys
50 55 60
Th r l ie Lys Lys G I u Asn Th r Pro Leu Leu Asn Cys A I a Lys Pro Asp 65 70 75 80
Gin Asp l ie Lys Phe Thr lie Lys Phe Gin Glu Phe Ser Pro Asn Leu soc
! s i Hi 丄
OOC S6Z 062 a ! I usy I v o jj J 3S |o n J |9 A 91 I I oJd
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1 m J »S 1 I a I I 丄 dsv s nsy si 010 »m njo nai λ 10 "丄
S6 06 98
69020/S6dT/X3d ΓΙΙΪΙ/96 ΟΛΑ 1 6 5 配列番号 7
配列の長さ : 1 0 5 1及び 3 3 3
配列の型 : 核酸及びァミ ノ酸
鎖の数 : 二本鎖及び一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : c D NA to m R NA、 及びアミ ノ酸
起源
生物名 : ヒ 卜
配列
GGAGTGCGCG GAGCTGGGAG TGGCTTCGCC 30
ATG GCT GTG AGA AGG GAC TCC GTG TGG AAG TAC TGC TGG GGT GTT TTG 78
Met Ala Va 1 Arg Arg Asp Set Val Trp Lys Ty【 C" Trp G Va 1 Leu
-25 -20 -15 -10
ATG GTT TTA TGC AGA ACT GCG ATT TCC AAA TCG ATA GTT TTA GAG CCT 126
Met Val Leu Cys Arg Thr Ala l ie Se r Lys Ser l ie Val Leu Glu Pro
- 5 -1 1 5
ATC TAT TGG AAT TCC TCG AAC TCC AAA TTT CTA CCT GGA CAA GGA CTG 174 lie T" Trp Asn Ser Ser Asn Se【 L" Phe Leu Pro Gl Gin G 1 y Leu
10 15 20
GTA CTA TAC CCA CAG ATA GGA GAC AAA TTG GAT ATT ATT TGC CCC AAA 222
Val Leu Tyr Pro Gin l ie Gl y Asp Lys Leu Asp l ie l ie Cys Pro Lys
25 30 35
GTG GAC TCT AAA ACT GTT GGC CAG TAT GAA TAT TAT AAA GTT TAT ATC 270
Va 1 Asp Ser Lys Thr Val Gl y Gin Tyr Glu Tyr Tyr Lys Val Tyr Met
40 45 50 55
GTT GAT AAA GAC CAA GCA GAC AGA TGC ACT ATT AAG AAC CAA AAT ACC 318
Val Asp Lys As Gin A 1 a Asp Arg Cys Thr l ie Lys Lys Glu Asn Thr 1 6 6
60 65 70
CCT CTC CTC AAC TCT GCC AAA CCA GAC CAA GAT ATC AAA TTC ACC ATC 366 Pro Leu Leu Asn Cys Ala Lys Pro Asp Gin Asp l ie Lys Phe Thr l ie
75 80 85
AAG TTT CAA GAA TTC AGC CCT AAC CTC TGG GGT CTA GAA TTT CAG AAG 414 Lys Phe Gin Gl u Phe Ser Pro As。 Leu Tip G Leu Gl u Phe Gin Lys
90 95 100
AAC AAA GAT TAT TAC ATT ATA TCT ACA TCA AAT GGG TCT TTG GAG GGC 462 Asn Lys Asp Tyr Tyr l ie l ie Ser Tbr Set Asn Gly Ser Leu Glu Gl
105 110 115
CTG GAT AAC CAG GAG GCA GGG CTG TGC CAG ACA AGA GCC ATG AAG ATC 510 Leu As p Asn Gin Glu Gl Gけ Va 1 Cys Gin Tin Arg Ala Met Lys l ie 120 125 130 135
CTC ATG AAA GTT GGA CAA GAT GCA ACT TCT GCT GGA TCA ACC AGG AAT 558 Leu Met Lys Va 1 Gl GID Asp Ala Ser Se【 Ala G I Ser Tin Arg ASD
140 145 150
AAA GAT CCA ACA AGA CGT CCA GAA CTA GAA GCT GGT ACA AAT GGA AGA 606 Lys Asp Pro Thr Arg A Pro Glu Leu Glu Ala Gly Tbr Asn Gl Arg
155 160 165
ACT TCG ACA ACA ACT CCC TTT GTA AAA CCA AAT CCA GGT TCT AGC ACA 654 Ser Ser Thr Thr Ser Pro Phe Va 1 Lys Pro Asn Pro Gl y Ser Ser Thr
170 175 180
GAC GGC AAC ACC GCC GGA CAT TCG GGG AAC AAC ATC CTC GGT TCC GAA 702 Asp Gly Asn Ser Ala Gly His Ser G I y Asn Asn l ie Leu Gl Ser Glu
185 190 195
GTG GCC TTA TTT GCA GGG ATT GCT TCA GGA TGC ATC ATC TTC ATC GTC 750 Va 1 Ala Leu Phe Ala Gly l ie Ala Ser Gly Cys l ie l ie Phe l ie Va 1 200 205 210 215
ATC ATC ATC ACG CTG GTG GTC CTC TTG CTG AAG TAC CGG AGC AGA CAC 798 1 6 7
lie l ie l ie Th r Leu Va 1 Va 1 Leu Leu Leu Lys Ty r Ar g Ar g A【g His
220 225 230
AGG AAG CAC TCG CCG CAG CAC ACG ACC ACG CTG TCC CTC AGC ACA CTG 846 Ar g Lys His Ser Pro Gin His Th【 Tin Th r Leu Se r Leu Se r Thr Leu
235 240 245
GCC ACA CCC AAG CGC AGC GGC AAC AAC AAC GGC TCA GAG CCC ACT GAC 894 Ala Thr Pro Lys Arg Ser Gl y Asn Aso Asn G I y Ser Glu Pro Ser As p
250 255 260
ATT ATC ATC CCC CTA AGG ACT GCG GAC AGC GTC TTC TGC CCT CAC TAC 942 lie l ie lie Pro Leu Arg Thi Ala Asp Ser Va I Phe Cys Pro His T"
265 270 275
GAG AAG GTC AGC GGG GAC TAC GGG CAC CCG GTG TAC ATC GTC CAG GAG 990 Glu Lys Val Set Gl y Asp Tyi Gl His Pro Va 1 Tyr l ie Va I C I D Glu 280 285 290 295
ATG CCC CCG CAG AGC CCG GCG AAC ATT TAC TAC AAC CTC 1029 Met Pro Pro Gin Ser Pro Ala Asn l ie Ty r Tyr Lys Val
300 305
TGAGAGGGAC CCTCGTGGTA CC 1051 配列番号 8
配列の長さ : 2 7
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
卜ポロジ一 : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5' -TTGTCGACAC (AC) G (AG) GA (CT) (CT) T (CC) GC (ACGT) GC (ACGT) (AC)G - 3' 配列番号 9 6 8
配列の長さ : 2 4
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鑛
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5'- TGGAATTCCA(AT) A(AG) (CG) (AT) CCA (CG) AC (AG) TC-3 ' 配列番号 1 0
配列の長さ : 2 6
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直缀状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配歹 IJ : 5'-AACTCGAGATCTCTGCTGAGGACCTG-3' 配列番号 1 1
配列の長さ : 2 8
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎮
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配歹 IJ : 5' -AAGAATTCTCAGTACTCCCGGGCCCGTC-3' 配列番号 1 2
SS列の長さ : 5
配列の型 : 核酸 1 6 9
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配歹 IJ : 5' -GGGAATTCATTTATCATCATCATCTTTATAATCGTACTGCGGGGCCGGTCCTCCTGT-3'
配列番号 1 3
配列の長さ : 2 7及び 8
配列の型 : 核酸及びァ ミ ノ酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A及びァミ ノ酸
起源 : 化学合成法による
配列 : 5' -GAT TAT AAA GAT GAT GAT GAT AAA TGA-3'
Asp Ty r Lys Asp Asp Asp Asp Lys 配列番号 1 4
配列の長さ : 3 0
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配歹リ : 5' -CGGAATTCGTGCGCTTCCTGAAGACGTCAG-3' 配列番号 1 5
配列の長さ : 5 8
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖 トポロジー 直鎮状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配歹 IJ : 5'-GCGAATTCATTTATCATCATCATCTTTATAATCCTGCTCCCGCCAGCCCTCGCTCTCA-3' 配列番号 1 6
配列の長さ : 3 2
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
BH列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5'-AAGGATCCTGCTCCCGCCAGCCCTCGCTCTCA-3' 配列番号 1 7
配列の長さ : 3 7
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配歹リ : 5' -AACCATCCCCGAGGGTCTCTGCTGGAAGCCAGGCTCA-3' 配列番号 1 8
配列の長さ : 3 3
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A 起源 : 化学合成法による
配列 : 5'-CCTCTAGAGTCCCGGCCGTCGCACTCATTTACC-3' 配列番号 1 9
配列の長さ :
配列の型 : アミ ノ酸
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : タンパク質
起源
生物名 : ヒ ト
ただし XXXは配列が決定できなかった残基を示す。
配列
Lys Se r l ie Va I Leu Glu Pro l ie Tyr Trp Asn Ser Ser ASD Set Lys
1 5 10 15
Phe Leu Pro CI Gin Gl Leu Va 1 Leu Tyr Pro Gin l ie CI Asp Lys
20 25 30
Leu Asp l ie l ie XXX Pro Lys Va 1 Asp XXX Lys Thi Va 1 Gl y XXX Tyr
35 40 45 配列番号 2 0
配列の長さ : 2 0
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎮状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5' -(TOT(ACGT)GA(AG) CC (ACGT) AT (TCA) TA (TO TGGAA-3 ' 配列番号 2 1 72
配列の長さ : 2 0
配列の型 : 核酸
鑛の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5'-AC(TC)TT(ACCT)GG(AG)CA(ACT)AT(AGT)AT(AG)TC-3' 配列番号 2 2
配列の長さ : 1 0 7及び 3 5
配列の型 : 核酸及びァ ミ ノ酸
銕の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D NA及びアミ ノ酸
起源 : 化学合成法及びヒ ト
配列
CTT GAG CCG ATC TAT TGG AAT TCC TCG AAC TCC AAA TTT CTA CCT GGA 48 Leu Gl u Pro lie Tyr Trp Asn Ser Ser Asn Ser Lys Pbe Leu Pro Gl y
1 5 10 15
CAA GGA CTG GTA CTA TAC CCA CAG ATA GGA GAC AAA TTG GAT ATA ATT 96 Gin G 1 Leu Vat Leu Tyr Pro Gin lie Gl Asp Lys Leu Asp 1 le I 1 e
20 25 30
TGC CCG AAA GT 107 Cys Pro Lys
35 配列番号 2 3
配列の長さ : 2 0
配列の型 : 核酸 鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5'- ATCCCGAAGTGCAGTCTGCC-3' 配列番号 2 4
配列の長さ : 2 3
配列の型 : 核酸
鎖の数 : 一本鎖
トポロジー : 直鎖状
配列の種類 : D N A
起源 : 化学合成法による
配列 : 5'- TCAGACCTTGTAGTAGATGTTCG - 3'

Claims

請求の範囲
1 . リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼ活性を有し、 且つ、 配列 表の配列番号 1 及び 2 からなる群よ リ選ばれるア ミ ノ 酸配列 を含有する単離されたポ リ ペプチ ドと、 該ポ リ ペプチ ドの、 リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼ活性を有する相同変異体とへ の結合能を有し、 ポ リ ア ク リ ルア ミ ドゲル電気泳動で測定し た分子量が少な く と も 4 1 5 0 0 ± 7 5 0 0 ダル ト ンであ り クマシ一プリ リ アン トブルー染色反応を受け得る こ と を特徴 とする単離された化合物。
2 . リ セプタ一型チロ シ ンキナーゼ活性を有 し、 且つ、 配列 表の配列番号 2 のァ ミ ノ酸配列を含有する単離されたポ リ べ プチ ド、 又は該ポ リ ペプチ ドの、 リ セプター型チロ シ ンキ十 —ゼ活性を有する相同変異体を発現した細胞に反応させる と 該ポリ べプチ ドの少な く と も 1 個のチロ シ ン残基を リ ン酸化 させる特性を有する請求項 1 に記載の化合物。
3 . 配列表の配列番号 4 に記載のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ぺプチ ドを包含する請求項 1 に記載の化合物。
4 . 配列表の配列番号 4 に記載のァ ミ ノ 酸配列が該ポ リ ぺブ チ ドのア ミ ノ末端に位置する請求項 3 に記載の化合物。
5 . ク マ シ一プ リ リ アン ト ブル一染色反応と P A S染色反応 の両方を受け得る請求項 1 に記載の化合物。
6 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ぺプ チ ドの少なく と も一部を含有してなる請求項 1 に記載の化合 物
7 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少な く と も一部である請 求項 6 に記載の化合物。
8 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ぺプ チ ドの少なく と も一部を含有してなる単離された化合物。
9 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少な く と も一部である請 求項 8 に記載の化合物。
1 0 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの少な く と も一部を含有する化合物と 、
配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一部を含有する化合物の少なく と も 1 種と 、 上記の配列表の配列番号 6 のァ ミ ノ 酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの少な く と も一部を含有する化合物以外の化合物から なる群から選ばれる少な く と も 1 種、 とからなる複合体。
1 1 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ 酸配列を含有する ポリ ペプチ ドの少な く と も一部が、 配列表の配列番号 5 のァ ミ ノ酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少な く と も一部である 請求項 1 0 に記載の複合体。
1 2 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの少なく と も一部をコー ドする単離された D N A。
1 3 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有する ポリ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5 のァ ミ ノ 酸配列を含有するポ リ べプチ ドの少なく と も一部である 請求項 1 2 に記載の化合物 D N A。
1 4 . 配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有するポ リ べ プチ ドの少なく と も一部を含有してなる単離された化合物の 製造方法に して :
( a ) 該ポリ ペプチ ドの少な く と も一部をコー ドする D N Aを複製可能な発現べク タ一に連結して、 該 D N Aが、 該 複製可能な発現ベク ターに発現可能に組み入れられてなる複 製可能な組換え D N Aを得て、
( b ) 真核細胞又は原核細胞を該複製可能な組換え D N Aで形質転換して、 形質転換体を形成 し、
( c ) 該形質転換体を親細胞と しての該真核細胞又は原 核細胞から選別 し、
( d ) 該形質転換体をイ ンキュベー トする こ と に よ リ 、 形質転換体に該 D N Aを発現させて、 該ポ リ ペプチ ドの少な く と も一部を含有してなる化合物を生産させ、 そ して
( e ) イ ンキュベー ト された形質転換体から該化合物を 単離する、
こ と を特徴とする方法。
1 5 . 上記の配列表の配列番号 6 のア ミ ノ酸配列を含有する ポリ ペプチ ドの少なく と も一部が、 配列表の配列番号 5のァ ミ ノ酸配列を含有するポリ べプチ ドの少なく と も一部である 請求項 1 4 に記載の方法。
1 6 . 請求項 1 に記載の化合物、 又は配列表の配列番号 5の ア ミ ノ酸配列を含有するポ リ ペプチ ドの少なく と も一部を含 有する化合物を特異的に認識する抗体。
1 7 . 配列表の配列番号 7の塩基配列の少なく と も 1 2個の 連続した塩基配列を含有するセ ンス D N A、 該セ ンス D N A に相補的なア ンチセ ンス D N Aからなる群よ リ 選ばれる単離 された D N A断片、 及び該センス D N A及び該アンチセ ンス D N Aを、 それぞれ、 メ チル化、 メ チルフ ォ スフェー ト化、 チォフ ォ スフュー ト化又は脱ア ミ ノ化する こ と によ リ 得られ る . 該セ ンス D N A及び該ア ンチセンス D N Aの誘導体から なる群よ リ選ばれる単離された D N A断片。
1 8 . 配列表の配列番号 7の塩基配列に相補的な少な く と も 1 2個の連続 した塩基配列を含有するアンチセンス R N A、 該ア ンチセ ンス R N Aに相補的なセンス R N Aからなる群よ リ選ばれる単離された R N A断片、 及び該ア ンチセ ンス R N A及び該センス R N Aを、 それぞれ、 メ チル化、 メ チルフォ ス フ ェー ト化、 チォフォ ス フ ェー ト化又は脱ァ ミ ノ化する こ と にょ リ得られる、 該ア ンチセンス R N A及び該セ ンス R N Aの誘導体からなる群よ リ選ばれる単離された R N A断片。
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