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WO1995022765A1 - Procede de dosage de l'aglycane normal, trousse de dosage et procede d'evaluation des informations relatives aux articulations - Google Patents

Procede de dosage de l'aglycane normal, trousse de dosage et procede d'evaluation des informations relatives aux articulations Download PDF

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WO1995022765A1
WO1995022765A1 PCT/JP1995/000220 JP9500220W WO9522765A1 WO 1995022765 A1 WO1995022765 A1 WO 1995022765A1 JP 9500220 W JP9500220 W JP 9500220W WO 9522765 A1 WO9522765 A1 WO 9522765A1
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WO
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normal
aggrecan
joint
hyaluronic acid
sample
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PCT/JP1995/000220
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English (en)
French (fr)
Inventor
Satosi Miyauti
Katuyuki Horie
Original Assignee
Seikagaku Kogyo Kabushiki Kaisha
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Publication date
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Priority to AU17177/95A priority patent/AU705059B2/en
Priority to DE69534619T priority patent/DE69534619T2/de
Priority to CA2183589A priority patent/CA2183589C/en
Priority to US08/687,406 priority patent/US5948692A/en
Priority to JP52171495A priority patent/JP3694894B2/ja
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    • G01N2800/102Arthritis; Rheumatoid arthritis, i.e. inflammation of peripheral joints

Definitions

  • Measurement method for normal aggrecan measurement kit and method for determining joint information
  • the present invention relates to a technique for effectively utilizing the quantity and quality of a cartilage matrix component that has migrated into synovial fluid as a valuable information source on matrix metabolism.
  • the present invention relates to the biochemical diagnosis of joint diseases in the field of orthopedic surgery. Specifically, the present invention relates to a method for measuring normal aggrecan, a kit for measurement, and a method for determining joint information.
  • the present invention provides a method for measuring normal agglutinin that detects only normal agglutinin present in a sample, a measurement kit used for the measurement method, and a normal agglutinin in a detected sample.
  • Pathological joint information based on information on the amount of protein and the amount of total proteoglycin compared to information on their amounts in synovial fluid from normal joints
  • the present invention relates to a method for determining whether joint information is normal joint information or joint information for determining the type of a diseased joint.
  • the “normal aggrecan” means an aggrecan capable of binding to hyaluronic acid.
  • cartilage matrix synthesis and degradation are in harmony, but cartilage in diseased joints is known to have enhanced cartilage matrix degradation regardless of the type of disease. I have.
  • the decomposed cartilage matrix first migrates into the synovial fluid, then migrates into the blood and is metabolized. Therefore, the quantity and quality of the cartilage matrix component that has migrated into the It is an important source of information.
  • Proteoglycan is a major component of the cartilage matrix, and the characteristic of cartilage proteoglycan is its ability to associate with hyaluronic acid. This ability has led to the formation of a large matrix structure in the cartilage matrix together with type I collagen.
  • the quantity and quality of aglitin, the major proteoglycin of cartilage matrix, and glycosaminoglycone, its sugar chain, provide clues as to whether cartilage matrix degradation is enhanced.
  • an improved method for quantifying normal agglutinin that is, a quantification method that requires a short processing time and a small sample amount, is required.
  • quantitatively detecting the correlation between changes in normal agglutinin and diseased joints it can be used for diagnosing arthritis and judging treatment strategies. It is desired to determine the type of the diseased joint.
  • proteoglitin in synovial fluid is useful as a marker for arthritis.
  • concentration of proteoglitin may be lower than in normal joints.
  • elevated levels of proteoglycin do not necessarily reflect the presence of diseased joints. Disclosure of the invention
  • the present invention relates to a method and a kit for simply and highly sensitively measuring normal agglutinin in a sample, particularly in a body fluid, and a method for determining joint information using these methods and the kit. For the purpose of providing.
  • the present invention provides a method for measuring normal aggrecan, which detects only normal aggrecan present in a sample, a kit for measurement used in the measurement method, and an amount of normal aggrecan in the sample. And information on the amount of total proteoglycin, and compares it with information on their amounts in synovial fluid from normal joints, depending on whether or not there is a significant difference.
  • the purpose of the present invention is to provide a method for determining joint information for determining whether there is any information.
  • Another object of the present invention is to provide a method for determining joint information capable of diagnosing the types of various diseased joints.
  • a component that is specific to cartilage and sharply reflects the metabolism of matrix is useful for molecules of pathological joints. It is useful as a molecule.
  • aglycan the major proteoglycin of cartilage matrix, and glycosaminoglycol, its sugar chain, are useful.
  • Glycosam ino-glycans (hereinafter sometimes abbreviated as "GAGs") can be mentioned as a cartilage matrix component having the qualities required as a single molecule.
  • Proteoglycan is a collective term for substances in which glycosaminoglycan is covalently bonded to a protein called core protein. It exists in connective tissues and cell membranes, and each has its own function.
  • the major proteoglycan in cartilage is called aggrecan, which has chondroitin sulfate and keratin sulfate as glycosaminoglycans.
  • the molecular weight of the core protein of normal aggrecan is 200,000 to 300,000, with two globulins at the amino terminal (G1, G2 domains from the terminal side) and one globulin at the carboxy terminal (G3 domain). There is a domain.
  • normal aggrecan binds to hyaluronic acid at the G1 domain, forming a large aggregate.
  • This aggregate is stabilized by a glycoprotein, a linker protein (molecular weight 40,000-50,000) that binds to both normal aggrecan and hyaluronic acid.
  • a glycoprotein a linker protein (molecular weight 40,000-50,000) that binds to both normal aggrecan and hyaluronic acid.
  • Chondroitin sulfate is composed of disaccharide units of N-acetylgalactosamin and glucuronic acid, and several disaccharide structures are known depending on the position of the sulfate group.
  • N-acetyl galactosamine has a sulfate group at the 6-position (C 6 S), accounting for about 90% of the total, and hereinafter, those having a sulfate group at the 4-position (C 4 S), sulfate groups (COS) in order.
  • C 6 S 6-position
  • COS sulfate groups
  • Keratan sulfate is composed of disaccharide units of N-acetyldarcosamine and galactose, and has a monosulfate structure having a sulfate group at the 6-position of N-acetyldarcosamine and N-acetylglucosamine. Disulfuric acid structures with a sulfate group at the 6-position of both galactose and galactose are known.
  • chondroitin sulfate has a carboxyl group and a sulfate group in the molecule, and keratan sulfate has a sulfate group. Therefore, aggrecan can hold a large amount of water. Also, due to the repulsion of these negative charges, the glycosamino-glycan chains tend to take an extended coil-like form. Aggrecan alone occupies a large volume due to the nature of its glycosaminoglycan chains. Although it is a hydrated molecule, it is associated with hyaluronic acid together with the link protein in the cartilage matrix to form a huge hydrated gel. Since the aggregate fills the space between the ⁇ -type collagen skeletons, the cartilage can function as a characteristic elastic body.
  • Hyal humic acid is one of glycosaminoglycans composed of disaccharide units of N-acetyl dalcosamine and dalc humic acid.
  • Proteoglycan has a low content in cartilage matrix as described above. It plays an important role in the formation of aggregates.
  • synovial fluid it is one of the main components contained at a concentration of 2-3 mg / m 1 and is produced by synovial cells.
  • the molecular weight of hyaluronic acid in the joint fluid is as large as several millions, occupies a large space compared to other components, and holds a large amount of water inside.
  • the molecules of hyaluronic acid overlap each other, resulting in the necessary viscosity of the synovial fluid.
  • the molecular weight and concentration of hyaluronic acid in synovial fluid are closely related to the viscosity characteristic of synovial fluid.
  • the concentration and total amount (the concentration multiplied by the amount of synovial fluid) of these marker molecules in the synovial fluid are determined by the degree of cartilage destruction, the amount of cartilage and the rate of disappearance of degradation products from the joint cavity, and the influx of plasma components Also fluctuate.
  • An extreme example is when there is little articular cartilage, such as end-stage rheumatoid arthritis. It is not surprising that the concentration of aglitin in the synovial fluid is lower than that in normal synovial fluid.
  • Normal agrin which has a hyaluronic acid binding site (G1 domain), also forms an association with hyaluronic acid in synovial fluid, and its association ability is a useful indicator of the degradation or denaturation of aglytin. This is because the ratio of normal (aggregated) aggrecan to total proteoglycin is less susceptible to factors other than aggrecan degradation.
  • the present inventors have found a method for simply and accurately measuring normal agglutinin capable of binding to hyaluronic acid.
  • the ratio of the normal agriglitin to the total proteogliin amount Focusing on the fact that it is less susceptible to factors other than degradation of aggrecan, and that normal aggrerin, which has a hyaluronic acid binding site, forms aggregates with hyaluronic acid even in synovial fluid. It is used as an indicator.
  • the present invention provides a method for measuring normal agglutinin capable of binding to hyaluronic acid.
  • the measurement method of the present invention comprises the steps of: separating normal aggrecan having a binding ability to hyaluronic acid present in a sample from proteoglitin having no binding ability to hyaluronic acid; The feature is to detect.
  • the above-mentioned separation of normal aggrelin capable of binding to hyaluronic acid from proteoglycin not capable of binding to hyaluronic acid includes the following steps A and B.
  • the reason why the hyaluronic acid in the sample is removed in advance is that normal aggrecan is bound to the hyaluronic acid in the sample, but the measurement method of the present invention requires that the normal aglycan reacts with the hyaluronic acid in the normal aglycan. This is necessary because it is based on binding capacity.
  • an enzyme or a protein denaturant that can specifically degrade hyaluronic acid.
  • Examples of enzymes that can degrade hyaluronic acid include hyaluronan nidase, which degrades hyaluronic acid, and chondroitinase ABC (“Glycotechnology”, pp. 282-315, 199). August 1, 2010, Industry Research Committee, Inc. Issue) .
  • hyaluronidase examples include enzymes derived from microorganisms belonging to the genus Streptomyces (eg, Streputomyces hyalurolyticus) (EC 4.2.2.1), enzymes derived from medicinal leech (EC 3.2.1.36), Enzymes (EC 3.2. 1.35) and enzymes derived from microorganisms belonging to the genus Streptococcus (for example, Streptococcus dysgalactie) can be mentioned, all of which are commercially available from Seikagaku Corporation.
  • Streptomyces eg, Streputomyces hyalurolyticus
  • Enzymes EC 3.2. 1.35
  • enzymes derived from microorganisms belonging to the genus Streptococcus for example, Streptococcus dysgalactie
  • chondroitinase ABC examples include enzymes derived from microorganisms belonging to the genus Proteus (eg, Proteus vulgaris) (available from Seikagaku Corporation).
  • protein denaturants include 4 M guanidine hydrochloride, 7 M urea and the like.
  • the treatment conditions in step A are not limited, but when an enzyme is used, the treatment is performed under conditions that take into account its optimum temperature and optimum pH. Considering the subsequent processing, the use of hyaluronidase is preferred.
  • the protein denaturing agent is guanidine hydrochloride
  • the concentration is adjusted to 0.4 M or less
  • the urea is adjusted to 1.0 M or less
  • the normal aggrecan can be bound to the solid phase in step B. it can.
  • a solid phase capable of selectively binding or adsorbing normal aggrelin capable of binding to hyaluronic acid is used.
  • An example of such a solid phase is a solid phase on which hyaluronic acid is immobilized.
  • a common method for preparing immobilized enzymes such as a covalent binding method and a physical adsorption method [“Immobilized enzymes”, March 20, 1975, ( ⁇ )Kodansha, pp. 9-75 Reference] can be applied to immobilize hyaluronic acid on a solid phase.
  • a condensing agent for example, 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carboxy
  • a functional group for example, 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carboxy
  • a functional group solid group, hydroxyl group, carboxyl group, amino group, etc.
  • wsC water-soluble carbodiimide
  • DCC dicyclohexylcarbodiimide
  • the solid phase is preferably a carrier made of polystyrene, cellulose, glass, or the like having a functional group such as an amino group (microplate for immunoassay, carrier for chromatography, etc.). To obtain simplicity and high sensitivity, a microplate for immunoassay is more preferable.
  • the sample after the treatment in the step A is brought into contact with the above solid phase, the sample and the solid phase are separated (by tilting, filtration, centrifugation, etc.) and, if necessary, washed to obtain a normal agglomerate.
  • the proteoglycin other than liposomes is removed from the solid phase, and normal aggrecan bound to the solid phase is detected.
  • a reagent for stabilizing the binding or adsorption between normal aggrecan and hyaluronic acid is preferably co-present.
  • the reagent for stabilization include a link protein and the like, and it is preferable to coexist at a concentration of 100 ng / ml to: L 00 ig / ml.
  • Linker protein can be obtained by a known method, for example, in the course of Seismic Chemistry, Vol. 4, Glycoconjugate Research, ⁇ , 253-263, pp. 256-1263, January 16, 1998, Tokyo What is obtained by the cesium chloride sedimentation equilibrium centrifugation method described in "Chemical Doujin" may be used.
  • the above-described normal aggrecan capable of binding to hyaluronic acid is separated from proteoglycin not capable of binding to hyaluronic acid by the normal aggrecan binding to hyaluronic acid in the sample. It consists of the step of separating the aggregates of ren by the difference in molecular weight from proteodaricans that do not have the ability to bind to hyaluronic acid.
  • a filtration device equipped with a filtration membrane capable of filtering out an aggregate of normal aglitin bound to hyaluronic acid or a device for performing gel filtration can be used. .
  • This filtration membrane is mounted on a suitable filtration device, and the sample is filtered by a suitable pressure or centrifugal force.
  • a specimen other than synovial fluid is used as the body fluid, it is necessary to form an aggregate of normal aggrecan bound to hyaluronic acid (hereinafter also referred to as a hyaluronic acid-aggregin complex).
  • hyaluronic acid-aggregin complex When a specimen other than synovial fluid is used as the body fluid, it is necessary to form an aggregate of normal aggrecan bound to hyaluronic acid (hereinafter also referred to as a hyaluronic acid-aggregin complex).
  • hyaluronic acid-aggregin complex hyaluronic acid having a molecular weight of hundreds of thousands or more to the sample.
  • the separated normal aggrecan is detected using a means for detecting proteoglycin.
  • a means for detecting proteodarican a specific detection means for keratan sulfate or chondroitin sulfate bound to the normal aggrecan or the core protein of normal aggrecan is employed. That is, the present invention provides a method for measuring normal aggrecan (hereinafter, referred to as “method 1”) comprising the following steps A, B, and C.
  • A a step of decomposing or removing hyaluronic acid and free hyaluronic acid bound to normal agglutinin in the sample;
  • a reagent for stabilizing the adsorption with the normal agglutinin when the sample is brought into contact with the solid phase in the step B, it is preferable to coexist a reagent for stabilizing the adsorption with the normal agglutinin.
  • Normal agglutinin binds to hyaluronic acid on the solid phase at the hyaluronic acid binding site (G1 domain).
  • the bound or adsorbed normal aggrecan is detected by using various methods for detecting osteogliin. For example, it is detected by staining sulfated glycosaminoglycan bound to normal aggrecan with a dye such as 1,9-dimethylmethylene blue.
  • the sulfated glycosaminodalican is detected by immunoassay using a specific antibody (immunoassay) or immunostaining, or by high performance liquid chromatography.
  • antibodies against the core protein of normal aggrecan can be used.
  • the present invention aims at least to measure the normal aglitin which retains the hyaluronic acid binding site (G1 domain), G2 domain, and glycosaminodolinin, and therefore, it is necessary to measure hyaluronic acid.
  • a method for detecting normal agglutinin bound or adsorbed to a solid phase at a binding site a method for detecting glycosaminoglinone such as keratan sulfate or chondroitin sulfate is used. preferable. In order to obtain simplicity and sufficient sensitivity, it is preferable to use a chondroitin sulfate or keratan sulfate antibody.
  • An antibody against chondroitin sulfate or keratan sulfate may be any antibody that has specificity for these sulfated glycosaminoglycans bound to normal aggrelin.
  • # 0-225 (“anti-chondroitin sulfate (type-D)") is commercially available from Seikagaku Corporation (see Japanese Patent Application Laid-Open No. 63-137695).
  • Monoclonal antibodies are known as antibodies against keratan sulfate and are generally available (Shinsei Kagaku Kenkyusho, Vol. 3, Carbohydrates III, pp. 91-39, 1991, 4) May 15th, @ Tokyo Chemical Dojin; antibody name, 1/20/5 D4 or 5D4).
  • 5D4 is commercially available from Seikagaku Corporation as "Anti-Keratan Sulfate, Human” (J. Biol. Chem., 255, 8848 (1989), JP-A-60-22406). No. 5).
  • the present invention provides a method for measuring normal agglutinin comprising the following steps A and B (hereinafter referred to as “measurement method 2”).
  • A a step of separating an aggregate of normal aggrerin bound to hyaluronic acid in a sample from a proteoglycan having no binding ability to hyaluronic acid due to a difference in molecular weight
  • the hyaluronic acid-aglycan association retained on the filtration membrane is detected using various techniques. For example, sulfated glycosaminoglycone is detected in the same manner as described above by using 1,9-dimethylmethyl chloride.
  • chondroitin sulfate / keratan sulfate which is a sulfated glycosaminoglycan
  • a specific antibody or high-performance liquid chromatography as described above.
  • antibodies against the core protein of normal aggrecan can also be used.
  • the present invention aims at least to measure the normal agglutinin retaining the hyaluronic acid binding site (G1 domain), the G2 domain, and glycosaminoglyconin, the solid phase at the hyaluronic acid binding site can be measured.
  • a method for detecting the normal agglutinin bound or adsorbed to the DNA a method for detecting glycosaminoglucin is preferable.
  • a chondroitin sulfate-keratan sulfate antibody is not limited, but is preferably a synovial fluid derived from a joint to be determined.
  • chondroitin sulfate-keratan sulfate antibody a method for detecting normal agglutinin bound or adsorbed to a solid phase at a hyaluronic acid binding site.
  • the normal aggrecan core protein has a hyaluronic acid binding domain that specifically and reversibly binds to hyaluronic acid.
  • Keratan sulfate is a glycosaminoglycan covalently linked to the core protein of normal aggrecan in multiple parts, and is bound in the keratan sulfate-rich region near the hyaluronic acid binding region.
  • step b contacting the product of step b with a keratan sulphate-reactive antibody; binding the antibody to keratan sulphate of normal aggredin that is bound to the bound hyaluronic acid on the solid phase;
  • An example of a method for detecting an anti-keratan sulfate antibody bound to a solid phase (microplate or the like) in c above is a second antibody reactive with the antibody, which is an enzyme, a radioisotope, a fluorescent substance,
  • the antibody labeled with a suitable labeling substance such as biotin, avidin or the like can be used for the detection of the antibody on the solid phase bound to keratan sulfate in the above step d.
  • a suitable labeling substance such as biotin, avidin or the like
  • an anti-mouse immunoglobulin antibody bound to a labeling substance can be used as the labeled second antibody.
  • imnoglobulin of various animals such as peroxidase, alkaline phosphatase, fluorescein isothiosineate (FITC), 7-amino-4-methylcoumarin-13-acetic acid.
  • FITC fluorescein isothiosineate
  • AMCA second antibody labeled with
  • biotin etc., is commercially available from Seikagaku Corporation, for example, and is easily available.
  • the detection of the binding of the first antibody and the second antibody bound to the solid phase is usually performed by a color reaction using peroxidase.
  • peroxidase bound to a solid phase using hydrogen peroxide, a substrate of peroxidase, and a coloring substance (0—phenylenediamine, 3, 3 ′, 5, 5′—tetramethylbenzidine).
  • the color is developed in proportion to the amount of chromogenic substance, and the absorbance at a wavelength suitable for the coloring substance used is measured.
  • the solid phase is a microplate, use a microplate reader (eg, SK 601 (Seikagaku Corporation), MR 600 (Dynatech), etc.). And measure the absorbance.
  • the detection method using the anti-keratan sulfate antibody described above can be applied to the case where an anti-chondroitin sulfate antibody is used.
  • the present invention provides a measurement kit used for a method for measuring normal aggrecan.
  • a measurement kit (hereinafter referred to as “measurement kit 1”) used in the above-mentioned measurement method 1 is a c- measurement kit 1 comprising the following constituent reagents A, B and C.
  • a Reagents for decomposing or removing hyaluronic acid bound to normal agglutinin and free hyaluronic acid in the sample B Solid phase for specifically binding or adsorbing normal aggrecan, and
  • a reagent for stabilizing the binding or adsorption of normal aggrecan and hyaluronic acid can be further added to measurement kit 1.
  • the above B is a solid phase in which the treated sample obtained by the treatment using the above A is brought into contact with a solid phase capable of binding or adsorbing normal aggrecan to bind or adsorb normal aggrecan in the sample to the solid phase.
  • micropre-to-chromatography with covalently or physically adsorbed hyaluronic acid to selectively bind or adsorb normal agglutinin that can bind to hyaluronic acid in the sample Can be used.
  • a microplate for immunoassay such as enzyme immunoassay (ELISA) is preferable.
  • the reagent for stabilization is, for example, a link protein.
  • the constituent reagent C is a reagent for specifically detecting keratan sulfate or chondroitin sulfate bound to the normal aggrelin or the core protein of the normal aggrecan.
  • the present invention provides, for example, a measurement kit (hereinafter, referred to as “measurement kit 2”) used in the above-mentioned measurement method 2, which comprises a component A and a reagent B shown below.
  • measurement kit 2 a measurement kit used in the above-mentioned measurement method 2, which comprises a component A and a reagent B shown below.
  • the constituent device A is a filter device provided with a filtration membrane capable of filtering out a complex of normal agglutinin bound to hyaluronic acid.
  • the constituent reagent B is a reagent for specifically detecting keratan sulfate or chondroitin sulfate bound to the normal aggrelin or the core protein of normal aggrecan.
  • the specimen is preferably synovial fluid derived from the joint to be determined.
  • the above A is a filtration membrane and a filtration device for collecting normal aggrecan (hyaluronic acid monoaglycan association) bound to hyaluronic acid in a sample by a filtration membrane.
  • Normal aggrecan in the sample binds to hyaluronic acid and forms a macromolecule with a molecular weight of several million or more. This is a force retained by a filtration membrane with an appropriate pore size (0.1-0.45 / m, preferably about 0.2 m).
  • Agri-force that cannot bind to hyaluronic acid passes through this filtration membrane .
  • filtration membranes can be used for this purpose, but filtration membranes with low non-specific adsorption, for example, those made of Teflon are preferred.
  • This filtration membrane is mounted on an appropriate filtration device, and the sample is filtered by an appropriate pressure or centrifugal force.
  • a specimen other than synovial fluid is targeted as a body fluid, it is necessary to add a hyaluronic acid having a molecular weight of several hundred thousand or more to the specimen in order to form a hyaluronic acid-aggregin complex.
  • the present invention provides a method for determining joint information using the above-described measurement method and measurement kit.
  • the joint fluid of the present invention as a specimen, information on the matrix metabolism of articular cartilage can be obtained.
  • Proteoglycans in normal synovial fluid have not undergone much degradation, and the percentage of normal aggrerin that can associate with the aforementioned hyaluronic acid is about 38%.
  • normal aglitin which has the ability to associate with proteogliin in synovial fluid, Is about 18%. This difference can be interpreted as directly reflecting the enhanced degradation of the cartilage matrix.
  • Absolute amounts and ratios of normal aglitin and other proteoglitin in synovial fluid were measured in normal, osteoarthritis, rheumatoid arthritis, and traumatic arthritis (TA).
  • the measured values are characteristically different, and it can be expected to be used as a biochemical diagnostic marker between these conditions.
  • concentration of normal aglitin and the ratio of normal aglitin to the total proteogliin it is possible to distinguish between normal and pathological joints and to determine the type of joint disease and prognosis. It can be used to grasp and further understand the effect of treatment.
  • This section describes arthritis, synovial fluid, and glycosaminoglycan and proteoglycan in serum.
  • proteoglycans and glycosaminoglycans that fluctuate with arthritis show that one marker molecule measured is keratan sulfate, chondroitin sulfate, and the total of these, sulfated glycosaminoglycan.
  • RIAs ELISA-radioimmunoassays
  • synovial fluid there is no problem interpreted as the sum of chondroitin sulfate and keratan sulfate concentrations. It is easily measured using a dye that can specifically measure S-GAG (1,9 dimethyl methylene blue: MB). Significant increases in synovial fluid have been noted with gout and reactive arthritis. There is no apparent increase in osteoarthritis or rheumatoid arthritis synovial fluid.
  • the method for determining joint information detects information on the amount of normal aggrerin in a sample, and uses the same type of information as described above in the joint fluid derived from a normal joint prepared in advance. Compared to the information on the amount of normal agglutinin, if there is a significant difference, it is determined that the information belongs to the diseased joint, and if there is no significant difference, it is determined that the information belongs to the normal joint. I do.
  • the concentration of normal aggrerin in the sample is measured by the above-mentioned measurement method 1 or 2, and the total proteoglycan concentration in the sample is also measured. Then, calculate the ratio of the normal agriculture force to the total proteogravity.
  • the above significant difference is calculated by calculating the ratio of normal aglitin to the total proteoglycin in the sample, and calculating the ratio of the ratio of normal aglitin to the total proteoglycan in the synovial fluid derived from a normal joint prepared in advance. It is significantly lower than the value indicating.
  • the information belongs to any pathological joint selected from the group consisting of osteoarthritis, rheumatoid arthritis, traumatic arthritis, and gout.
  • the detection of the information on the amount of normal aggrelin in the sample is performed by measuring the concentration of normal aggrerin in the sample by the above-mentioned measurement method 1 or 2, and measuring the total proteoglycan concentration in the sample. Measure the total The difference between the oaglin force concentration and the normal aglin force is calculated as the proteogliin concentration other than the normal aglin force.
  • the significant difference is that the normal aglican concentration in the sample is significantly lower than the normal aglitin concentration in the synovial fluid derived from a normal joint prepared in advance, and the proteoprotein other than the normal aglican in the sample is different. Glycan concentration is not significantly different from the concentration of proteoglycan other than normal aglitin in pre-prepared normal joint-derived synovial fluid. If there is a significant difference as described above, it is determined that the information belongs to arthritis in which the progression of cartilage destruction such as osteoarthritis or rheumatoid arthritis is slow, and if there is no significant difference, information that belongs to a normal joint Is determined.
  • An example of the case where there is a significant difference is that there is no difference between the normal aglipotin concentration in the specimen and the normal aglipotin concentration in the synovial fluid derived from a normal joint prepared in advance, and In some cases, the concentration of proteoglycin other than normal aglican may be significantly higher than the concentration of proteoglycan other than normal aglican in synovial fluid derived from a normal joint prepared in advance. If there is a significant difference described above, it is determined that the information belongs to arthritis in which cartilage destruction such as traumatic arthritis or gout rapidly progresses.If there is no significant difference, information that belongs to a normal joint is determined. It is determined that there is.
  • All of the above samples are preferably synovial fluid derived from the joint to be determined
  • Example 1 1 shows an example in which normal agglutinin in synovial fluid was measured using measurement method 1.
  • a step of decomposing or removing hyaluronic acid and free hyaluronic acid bound to normal aglican in a sample (1) A step of decomposing or removing hyaluronic acid and free hyaluronic acid bound to normal aglican in a sample.
  • linker protein is based on the cesium chloride sedimentation equilibrium described in the Seikagaku Kagaku Koza, Vol. 4, Glycoconjugate Research, ⁇ , pp. 253-263, Jan. 16, 1986, published by Tokyo Chemical Dojin. The one obtained by centrifugation was used.
  • Table 1 shows the concentrations of normal aggregin in human joint fluid, the concentrations of other proteodaricans (PG), and the ratio of normal aggregin to all proteodaricans measured using the above method.
  • Total proteoglycan concentrations were determined using a monoclonal antibody against keratan sulfate according to a previously reported method (Ratcliffe, A., et al .: Ann. Rheum. Pis., 47, 826 (1988)). The measurement was carried out using ⁇ ⁇ shear force as a standard. The concentrations of proteogliin other than normal agrigliin were calculated by subtracting the normal agligliin concentration from the total proteogliin concentration.

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Description

明 細 書 正常ァグリカ ンの測定法、 測定用キッ トおよび関節情報の判定方法 技術分野
本発明は、 関節液中に遊出した軟骨基質成分の量および質を、 基質代 謝に関する貴重な情報源として有効に利用する技術に関する。 本発明は 、 整形外科領域における関節疾患の生化学的診断に関する。 具体的には 、 本発明は正常ァグリカ ンの測定法、 測定用キッ 卜および関節情報の判 定方法に関する。
さらに詳しくは、 本発明は検体中に存在する正常ァグリ力ンのみを検 出する正常ァグリ力ンの測定法、 その測定法に使用する測定用キッ ト、 ならびに、 検出した検体中の正常ァグリ力ンの量および全プロテオグリ 力ンの量に関する情報を基に、 正常関節由来の関節液中のそれらの量に 関する情報と対比し、 有意な差があるかないかによつて、 病態関節情報 であるか正常関節情報であるか、 さらには病態関節の種類を判定する関 節情報の判定方法に関するものである。
本発明では、 「正常ァグリカ ン」 とは、 ヒアルロン酸との結合能を有 するァグリカンを意味する。 背景技術
正常な関節軟骨では、 軟骨基質の合成と分解はバランスょく調和して いるが、 病態関節の軟骨では、 病態の種類にかかわらず、 軟骨基質の分 解が亢進していることが知られている。 分解された軟骨基質は、 まず、 関節液中に遊出し、 その後血中に移行して代謝される。 したがって、 関 節液中に遊出した軟骨基質成分の量ならびに質は、 基質代謝に関する貴 重な情報源である。 プロテオグリカ ンは軟骨基質の主要成分であり、 軟 骨プロテオグリカンの特徴は、 ヒアルロン酸と会合できることであり、 この能力により、 軟骨基質中では Π型コラーゲンとともに巨大な基質構 造が構築されている。 軟骨基質の主要なプロテオグリ力ンであるァグリ 力ン、 およびその糖鎖であるグリ コサミ ノグリ力ンの量ならびに質は、 軟骨基質の分解が亢進しているかどうかを知る手がかりとなる。
従来、 正常ァグリ力ンを定量する場合、 ヒアルロン酸—ァグリ力ン会 合体を超遠' 1>法 (He i negard, D. , et a l . , J. Bio l . Chem. , 2 4 9 , 4 2 5 0 ( 1974) ) 、 ゲルクロマ トグラフィー法 (岩田 久, 新生化学実験講座, 第 3卷, 糖質 Π , 4 5 2 〜 4 5 5頁, 1 9 9 1年 4月 1 5 日, ㈱東京化 学同人発行) により分離して、 その量を測定する方法が知られている。 しかし、 処理に多くの時間を要し、 また、 検体必要量も少なくない。 そのため正常ァグリ力ンを定量する改良方法、 すなわち処理時間が短 く、 また、 検体必要量の少ない定量方法が必要となる。 また正常ァグリ 力ンの変化と病態関節との相関関係を量的に検出して、 関節炎の診断や 治療方針の判断に利用できる、 病態関節であるか正常関節であるかの判 定、 さらには病態関節の種類の判定をすることが望まれている。
関節液中のプロテオグリ力ンが関節炎のマーカ一分子として有用であ ることは前述のとおりであるカ^ ある種の関節炎においてはプロテオグ リ力ンの濃度が正常関節と比較して低くなる場合もあり、 プロテオグリ 力ンの濃度の上昇は必ずしも病態関節であることを反映していない。 発明の開示
本発明は、 病態関節と正常関節を識別できる新たなマ —力—分子の測 定法を提供するこ とを目的とする。 また、 本発明は性質の異なる関節炎 の種類を判別できるマーカー分子の測定法を提供することを目的とする 詳しく は本発明は、 検体中の、 特に体液中の、 正常ァグリ力ンを簡便 かつ高感度に測定するための方法およびキッ 卜、 ならびにこれらの方法 およびキッ トを利用する関節情報の判定方法の提供を目的とする。
さらに詳しくは、 本発明は検体中に存在する正常ァグリ力ンのみを検 出する正常ァグリカ ンの測定法、 その測定法に使用する測定用キッ 卜、 ならびに、 検体中の正常ァグリ力ンの量および全プロテオグリ力ンの量 に関する情報を検出し、 正常関節由来の関節液中のそれらの量に関する 情報と対比し、 有意な差があるかないかによつて、 病態関節情報である か正常関節情報であるかを判定する関節情報の判定方法の提供を目的と する。
さらに、 本発明は各種病態関節の種類を診断することができる関節情 報の判定方法を提供することを目的とする。
軟骨に特異的で、 基質代謝を鋭敏に反映する成分が病態関節のマ—力 —分子として有用であるが、 軟骨基質の主要プロテオグリ力ンであるァ グリカン、 およびその糖鎖であるグリコサミ ノグリ力ン (gl ycosam ino- gl ycans; 以下、 「G A G s」 と省略することもある。 ) は、 マ一力一 分子として要求される資質を備えた軟骨基質成分として挙げることがで きる。
プロテオグリカンについて概略する。
プロテオグリカンはコアタンパクとよばれるタンパク質にグリ コサミ ノグリ力ンが共有結合している物質の総称で、 結合組織や細胞膜などに 存在し、 それぞれ、 独自の機能を有している。
軟骨中の主要なプロテオグリカ ンは、 ァグリカ ン (aggrecan) とよば れるもので、 グリコサミ ノグリカンとしてコン ドロイチン硫酸とケラ夕 ン硫酸を有している。 正常ァグリカンのコアタンパクの分子量は 2 0万一 3 0万で、 了ミ ノ 末端に 2個 (末端側から G 1、 G 2 ドメイ ン) 、 カルボキシ末端に 1個 ( G 3 ドメイ ン) の球状ドメイ ンがある。 軟骨基質においては、 正常ァ グリ カ ンは G 1 ドメイ ンでヒアルロ ン酸と結合し、 巨大な会合体 (aggregate) を形成している。 この会合体は正常ァグリカンとヒアルロ ン 酸の双方に結合するリ ンクタ ンパク (分子量 4万〜 5万) という糖タ ン パクにより、 安定化されている。 G 2と G 3 ドメインの間には G A G s 結合領域があり、 多数のコン ドロイチン硫酸鎖とケラタ ン硫酸鎖、 さら に N—または 0—結合型のォリゴ糖鎖が結合している。
コン ドロイチン硫酸は N -ァセチルガラク トサミ ンとグルク口 ン酸の 二糖単位から構成され、 硫酸基の位置により、 数種類の二糖構造が知ら れている。 ヒ トァグリカンでは、 N —ァセチルガラク 卜サミ ンの 6位に 硫酸基を持つもの (C 6 S ) が全体の約 9 0 %を占め、 以下、 4位に持 つもの (C 4 S ) 、 硫酸基を持たないもの (C O S ) の順である。 これ らの構造は別々の糖鎖として存在しているのではなく、 1本のコン ドロ ィチン硫酸鎖の中で、 異なる二糖構造として存在している。
ケラタ ン硫酸は N —ァセチルダルコサミ ンとガラク トースのニ糖単位 から構成され、 N—ァセチルダルコサミ ンの 6位に硫酸基をもつモノ硫 酸構造と、 N—ァセチルグルコサミ ンとガラク トース双方の 6位に硫酸 基を持つジ硫酸構造が知られており、 ァグリ力ンではジ硫酸構造が多く 含まれている。
上述のようにコン ドロイチン硫酸は分子内にカルボキシル基と硫酸基 を、 ケラタン硫酸は硫酸基を共有しているため、 ァグリカ ンは多量の水 を保持できる。 また、 これらの陰性荷電の反発により、 グリ コサミ ノグ リ力ン鎖は伸展したコィル状の形態をとる傾向がある。 ァグリカ ンは単 独でもそのグリコサミ ノグリカン鎖の性質により、 大きな体積を占有す る水和した分子であるが、 軟骨基質においては、 リ ンクタンバクととも にヒアルロン酸と会合し、 巨大な水和ゲルを形成している。 この会合体 が π型コラーゲンの骨格間を充填しているため、 軟骨は特徴的な弾性体 と して機能することができる。
関節炎に伴う軟骨破壊はァグリ力ンの分解から始まり、 関節炎の種類 にかかわらず、 ァグリカンの開裂は主に、 G 1 と G 2 ドメイン間に起こ ることが報告されている。 分解され、 G 1 ドメインを失ったァグリカン は、 基質中のヒアルロン酸との結合能力がないため、 粗造化した軟骨か ら関節液中へ容易に遊出される。 したがって、 関節液中のァグリカンお よびその分解物の量と質は、 軟骨破壊に関する貴重な情報源である。 次いで、 ヒアルロン酸について概略する。
ヒアル口ン酸は、 N—ァセチルダルコサミ ンとダルク 口 ン酸の二糖単 位から構成されるグリコサミ ノグリカンの一つで、 軟骨基質中では、 含 量は少ないものの、 上述のようにプロテオグリカン会合体の形成という 重要な機能を果たしている。 一方、 関節液では、 2— 3 m g / m 1 の濃 度で含有される主要成分の一つであり、 滑膜細胞で産生されている。 関 節液中のヒアルロン酸の分子量は数百万と大きく、 他の成分に比べて大 きな空間を占有すると共に内部に多量の水を保持している。 関節液中の 濃度では、 ヒアルロン酸の各分子は相互に重なりあっており、 結果とし て、 関節液に必要な粘性を付与することになる。 すなわち、 関節液中の ヒアルロン酸の分子量および濃度は、 関節液の特性である粘性と密接に 関連している。
上記の見地から、 関節液や血液などの体液中のァグリカンゃグリコサ ミ ノグリ力ン濃度と関節疾患との関連が研究されているが、 痛風や外傷 性関節炎 (T A ) のように、 軟骨破壊が急激に進行する関節炎では、 関 節液中の上記マ一力一分子の著しい増加が認められるものの、 変形性関 節症 (O A ) や慢性関節リウマチ (R A ) のように、 軟骨破壊の進行が 遅い関節炎では、 軟骨基質成分は徐々に遊出するため、 関節液や血液に おけるマーカ一分子の変動はあまり明確ではない。
この理由としては、 以下の事項が考えられる。
関節液におけるこれらマーカー分子の濃度および総量 (濃度に関節液 量をかけたもの) は、 軟骨破壊の程度以外に、 軟骨量や関節腔内からの 分解物の消失速度、 さらに血漿成分の流入量によっても変動を受ける。 極端な例として、 末期の慢性関節リウマチのように、 関節軟骨がほとん どない場合が挙げられる。 このような関節液中のァグリ力ンゃダリコサ ミ ノグリ力ンの濃度が正常関節液中の濃度に比べて低くても何ら不思議 ではない。
上記のような因子の影響を排除して、 できるだけ正確に関節炎の病態 を把握するためには、 関節液や血清中におけるマーカ—分子の分解また は変性程度を知る必要がある。 本発明者らは、 ァグリカ ンの分解または 変性の程度を検出するには、 ヒアルロン酸と会合体を形成し得る正常ァ グリ力ンとその他のプロテオグリ力ンとの関係を把握すれば正常関節と 病態関節の識別ができること、 さらに両者の濃度のパターンにより、 関 節炎の種類の判別が可能であることを見いだした。
ヒアルロン酸結合部位 ( G 1 ドメイン) をもつ正常ァグリ力ンは関節 液中においてもヒアルロン酸と会合体を形成するが、 この会合能力はァ グリ力ンの分解または変性の有用な指標と成り、 全プロテオグリ力ン量 に対する正常 (会合型) ァグリカ ンの割合は、 ァグリカ ンの分解以外の 因子の影響を受けにくいからである。 さらに、 本発明者らはヒアルロ ン 酸との結合能を有する正常ァグリ力ンを簡単かつ正確に測定する方法を 見いだした。
本発明は、 全プロテオグリ力ン量に対する正常ァグリ力ンの割合が、 ァグリカンの分解以外の因子の影響を受けにくいこと、 ならびに、 ヒア ルロン酸結合部位をもつ正常ァグリ力ンが関節液中においてもヒアルロ ン酸と会合体を形成することに着眼し、 この会合能力を指標として利用 するものである。
まず、 本発明はヒアルロ ン酸と結合できる正常ァグリ力ンの測定方法 を提供する。 本発明の測定方法は、 検体中に存在する、 ヒアルロ ン酸と の結合能を有する正常ァグリカンをヒアル口ン酸との結合能を有さない プロテオグリ力ンから分別し、 正常ァグリ力ンのみを検出することを特 徴とする。
上記ヒアルロン酸との結合能を有する正常ァグリ力ンの、 ヒアルロン 酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンからの分別は、 下記工程 A, Bからなる。
A 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アルロ ン酸を分解または除去する工程、 および
B 上記 Aで得られた処理検体を、 正常ァグリカ ンを結合または吸着 できる固相と接触させ、 検体中の正常ァグリ力ンのみを該固相に結合ま たは吸着させ、 その他のプロテオグリカンと分離する工程。
上記 A工程において、 検体中のヒアルロン酸をあらかじめ除去してお くのは、 正常ァグリカンは検体中のヒアルロ ン酸と結合しているが、 本 発明の測定方法が正常ァグリカ ンのヒアルロン酸との結合能力に基づい ているため、 その必要がある。 検体中のヒアルロ ン酸をあらかじめ除去 するために、 ヒアルロン酸を特異的に分解できる酵素や夕ンパク変性剤 を使用する。
ヒアルロン酸を分解できる酵素としては、 ヒアルロン酸を分解するヒ アル口ニダ一ゼのほか、 コン ドロイチナ一ゼ A B Cが挙げられる ( 「糖 鎖工学」 , 2 8 2〜 3 1 5頁, 1 9 9 2年 8月 1 日, (株) 産業調査会 発行) 。
ヒアルロニダ一ゼとしては、 ス ト レブト ミセス属に属する微生物 (例 えば、 Streputomyces hyalurolyticus) 由来の酵素 ( E C 4.2.2. 1 ) 、 薬用ヒル由来の酵素 (E C 3.2.1.36) 、 ゥシ睾丸由来の酵素 (E C 3.2. 1.3 5 ) 、 ス ト レプトコッカス属に属する微生物 (例え ば、 Streptococcus dysgalactie) 由来の酵素が挙げられ、 これらはい ずれも生化学工業㈱から市販されている。
また、 コン ドロイチナ一ゼ A B C ( E C 4.2.2.4 ) としてはプロ テウス属に属する微生物 (例えば、 Proteus vulgaris) 由来の酵素 (生 化学工業㈱販売) が挙げられる。 また、 タ ンパク変性剤としては 4 Mグ ァニジン塩酸、 7 M尿素等が挙げられる。
A工程の処理条件は限定されないが、 酵素を使用する場合はその至適 温度、 至適 p Hを考慮した条件で処理を行う。 以後の処理を考慮すると ヒアルロニダ一ゼの利用が好ましい。
またタンバク変性剤を使用した場合は、 さらに、 塩化セシウムゃグリ セロール等を用いる密度勾配超遠心分離法等 (続生化学実験講座, 第 4 巻, 複合糖質研究法, 糖脂質とプロテオグリカン, 1 986年 1月 1 6 曰, ㈱東京化学同人発行, 第 253〜263頁参照) を利用して、 正常 ァグリカンをヒアル口ン酸から分離する。 タンパク変性剤として尿素を 使用した場合は、 別の方法として、 陰イオン交換クロマ 卜グラフィ一を 利用することもできる (同上, 第 26 5〜 275頁参照) 。 そして分離 された正常ァグリ力ンについて希釈あるいは透析等を行い、 共存するタ ンパク変性剤の濃度を下げるか、 あるいはタンパク変性剤を除去する。 タンパク変性剤がグァニジン塩酸の場合 0. 4M以下にすることで、 ま た、 尿素の場合 1. 0 M以下にすることで、 該正常ァグリカ ンを、 Bェ 程における固相に結合させることができる。 上記 B工程において、 ヒアルロン酸との結合能を有する正常ァグリ力 ンを選択的に結合または吸着できる固相を使用する。 この様な固相とし てはヒアルロ ン酸を固定化した固相が挙げられる。 具体的には、 共有結 合法、 物理的吸着法など固定化酵素の調製法として一般的な方法 [ 「固 定化酵素」 、 1 975年 3月 20日、 ㈱講談社発行、 第 9〜 75頁参照 ] を応用してヒアルロン酸を固相に固定化することができる。
例えば、 ヒアルロ ン酸の官能基 (水酸基、 カルボキシル基) と固相の 官能基 (水酸基、 カルボキシル基、 アミ ノ基等) とを縮合剤 (例えば、 1—ェチルー 3— ( 3—ジメチルァミ ノプロピル) カルボジィ ミ ドのよ うな水溶性のカルボジイ ミ ド ( w s C ) 、 ジシク ロへキシルカルボジィ ミ ド (D C C ) 等) を用いて共有結合させることができる。 固相として はァミ ノ基等の官能基を有するポリ スチレン、 セルロース、 ガラス等か らなる担体 (免疫測定用のマイクロプレー ト、 クロマ トグラフィー用担 体等) が好ましい。 簡便性と高い感度を得るためには、 免疫測定用のマ イク口プレー トがより好ましい。
B工程の処理は、 先ず A工程処理後の検体を上記固相と接触させ、 検 体と固相を分離し (傾斜、 濾過、 遠心分離等により) 、 必要により洗浄 することによつて正常ァグリ力ン以外のプロテオグリ力ンを固相から除 去し、 固相に結合した正常ァグリカンを検出する。
また、 検体を上記固相と接触させる際に、 正常ァグリカ ンとヒアルロ ン酸との結合または吸着を安定化するための試薬を、 共存させることが 好ましい。 該安定化するための試薬としては、 リ ンクタンパク等を挙げ ることができ、 1 00ng/m l〜: L 00 i g/m lの濃度で共存させる ことが好ましい。
リ ンクタ ンパクは公知の方法、 例えば、 続生化学実験講座, 第 4巻, 複合糖質研究法, Π, 253— 263頁, 1 98 6年 1月 1 6日㈱東京 化学同人発行に記載の塩化セシゥム沈降平衡遠心法によつて得られるも のを使用すればよい。
または、 上記ヒアルロ ン酸との結合能を有する正常ァグリカ ンの、 ヒ アル口ン酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンからの分別は、 検体 中のヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンの会合体を、 分子量の 差によって、 ヒアルロン酸との結合能を有さないプロテオダリカンから 分離する工程からなる。 その分子量の差による分別手段は、 ヒアルロ ン 酸と結合している正常ァグリ力ンの会合体を濾取できる濾過膜を備えた 濾過器具または、 ゲル濾過を行うための器具を使用することができる。 検体が判定対象関節に由来する関節液の場合、 検体中の正常ァグリ力 ンはヒアルロ ン酸と結合し、 分子量数百万以上の巨大分子を形成する。 このものは適当な孔径 ( 0 . 1〜 0 . 4 5 m、 好ましくは 0 . 2 β ηι 程度) の濾過膜で保持されるが、 ヒアルロン酸と結合できないァグリカ ンはこの濾過膜を通過する。 この目的のために、 種々の濾過膜を使用で きるが、 非特異的吸着の少ない濾過膜、 例えば、 テフロン製のものが好 ましい。
この濾過膜を適当な濾過装置に装着させ、 検体を適当な圧力や遠心力 により濾過する。 体液として関節液以外の検体を対象とする場合は、 ヒ アルロ ン酸と結合している正常ァグリカ ンの会合体 (以下、 ヒアルロ ン 酸ーァグリ力ン会合体ということもある) を形成させるために、 検体中 に分子量数十万以上のヒアルロン酸を添加することが必要である。
本発明の測定方法において、 分別した正常ァグリカ ンは、 プロテオグ リ力ンを検出する手段を用いて検出する。 プロテオダリカンを検出する 手段は、 該正常ァグリ力ンに結合したケラタン硫酸またはコン ドロイチ ン硫酸あるいは正常ァグリカンのコア夕ンパクの特異的検出手段が採用 される。 すなわち、 本発明は以下の A, Bおよび C工程からなる正常ァグリカ ンの測定法 (以下、 「測定法 1」 という。 ) を提供する。
測定法 1
A 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アル口ン酸を分解または除去する工程、
B 上記 Aで得られた処理検体を、 正常ァグリカ ンを結合または吸着 できる固相と接触させ、 検体中の正常ァグリ力ンのみを該固相に結合ま たは吸着させ、 その他のプロテオダリカンと分離する工程、 および
C 固相に結合または吸着した正常ァグリ力ンを検出する工程。
また B工程において検体を該固相に接触させる際に、 正常ァグリ力ン との吸着を安定化するための試薬を共存させておく ことが好ましい。 正常ァグリ力ンは固相のヒアルロン酸とヒアルロン酸結合部位 ( G 1 ドメ イ ン) で結合する。 この結合または吸着した正常ァグリカ ンを、 プ 口テオグリ力ンを検出するための種々の手法を用いて検出する。 例えば 、 1 , 9 —ジメチルメチレンブル一等の色素により、 正常ァグリカンに 結合している硫酸化グリ コサミ ノグリカンを染色することによって検出 する。 あるいは、 硫酸化グリコサミ ノダリカンである、 コン ドロイチン 硫酸ゃケラタン硫酸を特異的な抗体を用いる免疫測定法 (ィムノアッセ ィ) もしくは免疫染色によって検出するか、 あるいは高速液体クロマ ト グラフィ一により検出する。 さらに、 正常ァグリカンのコアタンパクに 対する抗体も利用できる。
本発明は少なく とも、 ヒアルロン酸結合部位 ( G 1 ドメ イ ン) 、 G 2 ドメ イ ン、 グリ コサミ ノダリ力ンを保持している正常ァグリ力ンを測定 することを目的としているため、 ヒアルロン酸結合部位で固相に結合ま たは吸着した正常ァグリ力ンを検出する方法としては、 ケラタン硫酸ま たはコン ドロイチン硫酸などのグリコサミ ノグリ力ンを検出する方法が 好ましい。 簡便性と十分な感度を得るためには、 コン ドロイチン硫酸や ケラタン硫酸の抗体を利用することが好ましい。
コン ドロイチン硫酸またはケラタン硫酸に対する抗体としては、 正常 ァグリ力ンに結合したこれら硫酸化グリコサミ ノグリカ ンに対して特異 性を有するものであればよい。
コン ドロイチン硫酸に対する抗体として、 種々のモノクロナ一ル抗体 が知られており、 一般に入手可能である (新生化学実験講座, 第 3巻, 糖質 Π, 3 8 5〜 3 9 1頁, 1 9 9 1年 4月 1 5 日, ㈱東京化学同人発 行;抗体名、 C S— 5 6 , Μ 0— 2 2 5 , MC 2 1 C, S 54 C, 3 Β 3 ) 。
特に Μ0— 2 2 5 ( 「抗—コン ドロイチン硫酸 (タイプ— D) 」 ) は 生化学工業株式会社から市販されている (特開昭 6 3— 1 3 76 9 5号 公報参照) 。
ケラタン硫酸に対する抗体として、 モノクロナール抗体が知られてお り、 一般に入手可能である (新生化学実験講座, 第 3巻, 糖質 Π, 3 9 1〜 3 9 3頁, 1 9 9 1年 4月 1 5 日, ㈱東京化学同人発行;抗体名 、 1 /2 0/5 D 4または 5 D 4 ) 。 5 D 4は 「抗ーケラタン硫酸, ヒ 卜 」 として生化学工業株式会社から市販されている (J.Biol.Chem. , 2 5 8, 8 848 ( 1 9 8 3 ) , 特開昭 60 - 22406 5号公報参照) 。 または、 本発明は以下の Aおよび B工程からなる正常ァグリ力ンの測 定法 (以下、 「測定法 2」 という。 ) を提供する。
測定法 2
A 検体中のヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンの会合体を 、 分子量の差によって、 ヒアルロン酸との結合能を有さないプロテオグ リカンから分離する工程、 および
B 濾過膜上に回収されたヒアルロン酸ーァグリ力ン会合体を検出す る工程。
上記濾過膜上に保持されたヒアルロ ン酸ーァグリカン会合体を種々の 手法を用いて検出する。 例えば、 1 , 9ージメチルメチ レ ンブル一によ り、 前記と同様に硫酸化グリコサミ ノグリ力ンを検出する。
あるいは、 硫酸化グリコサミ ノグリカ ンである、 コ ン ドロイチン硫酸 ゃケラタン硫酸を前記と同様に特異的抗体や高速液体ク口マ トグラフィ —により検出する。 さらに、 正常ァグリカンのコアタンパクに対する抗 体も利用できる。
本発明は少なく とも、 ヒアルロン酸結合部位 (G 1 ドメイン) 、 G 2 ドメイン、 グリコサミ ノグリ力ンを保持している正常ァグリ力ンを測定 することを目的としているため、 ヒアルロン酸結合部位で固相に結合ま たは吸着した正常ァグリ力ンを検出する方法としては、 グリコサミ ノグ リ力ンを検出する方法が好ましい。 簡便性と十分な感度を得るためには 、 コン ドロイチン硫酸ゃケラタン硫酸の抗体を利用することが好ましい 検体は限定されないが、 好ましくは判定対象関節に由来する関節液で ある。
本発明において、 ヒアルロン酸結合部位で固相に結合または吸着した 正常ァグリ力ンを検出する方法として、 コン ドロイチン硫酸ゃケラタン 硫酸の抗体を利用する方法について説明する。
正常ァグリカンのコアタンパク質は特異的にそして可逆的にヒアルロ ン酸と結合するヒアルロン酸結合領域を有する。 ケラタン硫酸は複数の 部分で正常ァグリカンのコアタンパク質と共有結合しているグリ コサミ ノグリカンであり、 ヒアルロン酸結合領域付近のケラタン硫酸濃厚領域 で結合している。
生物試料中のコン ドロイチン硫酸およびケラタン硫酸の量を測定する ため前記の抗体を利用したいくつかのィム ノアツセィが知られている。 Thonar等の 「クアンティ フィケ一シヨ ン ォブ ケラタン スルフエ — 卜 イン ブラッ ド ァズ ァ マ一カー ォブ カーティ レ一ジ カタボリズム (Quantification of Keratan Sulfate in Blood as a marker of Cartilage Ctabol ism) , Arthritis and Rheumatism, 1 9 8 5年, 2 8巻, 1 3 6 7— 1 3 7 6頁」 には、 成人ヒ 卜血清中のケラタン 硫酸の量を測定するため、 ケラタン硫酸に特異的なモノクローナル抗体 を使用した酵素免疫測定法 (ELISA) が記載されている。
上記ケラタン硫酸の量を測定する方法を例示する。
a ヒアルロン酸を固相に結合させてヒアルロン酸固定化固相を形成 し、
b 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アル口ン酸を分解または除去する工程で得られた処理検体とリ ンクタン パクを、 aの固相と接触させ、 インキュベー ト し、 遊離の正常ァグリ力 ンを前記固相上の結合ヒアルロン酸に結合させ、
c 工程 bの生成物をケラタン硫酸反応性抗体と接触させ、 該抗体を 、 前記固相上の結合ヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンのケラ タン硫酸と結合させ、
d 前記ケラタン硫酸と結合した上記抗体を検出し、
e 前記ケラタン硫酸と結合した抗体の量を試料中の正常ァグリ力ン の量と相関づける。
上記 cにおいて固相 (マイクロプレー 卜等) に結合した抗ケラタン硫 酸抗体を検出する方法の一例として、 該抗体と反応性を有する第 2抗体 であって、 酵素、 放射性同位元素、 蛍光物質、 ピオチン、 アビジン等の 適当な標識物質によつて標識化された抗体を、 上記 d工程におけるケラ タン硫酸と結合した固相上の抗体の検出に使用することができる„ 例えば第 1抗体が抗ケラタ ン硫酸モノ ク ロナ一ルマウス抗体であると き、 標識化した第 2抗体としては、 標識物質を結合した抗マウスィムノ グロブリ ン抗体を使用することができる。 この様な各種動物のィムノグ ロブリ ンに対して特異性を有し、 ペルォキシダ一ゼ、 アルカ リ ホスフ ァ ターゼ、 フルォレセイ ンイ ソチオシァネ一 卜 (FITC) , 7—ァ ミ ノ一 4 ーメチルクマリ ン一 3—酢酸 (AMCA) , ピオチン等で標識化された第 2 抗体は、 例えば生化学工業株式会社からジャク ソ ン社の抗体が市販され ており、 容易に入手できる。
ペルォキシダ―ゼで標識化された第 2抗体を使用する場合、 固相に結 合した第 1抗体一第 2抗体結合の検出は、 通常ペルォキシダーゼによる 発色反応によつて行う。
すなわち、 ペルォキシダ—ゼの基質である過酸化水素と発色物質 (0 —フエ二レンジァ ミ ン、 3 , 3 ' , 5 , 5 ' —テ トラメチルベンジジン ) を用い、 固相に結合したペルォキシダ―ゼの量に比例して発色させ、 用いた発色物質に適した波長での吸光度を測定する。 固相がマイクロプ レー トである場合、 マイクロプレー ト リ ーダ一 〔例、 ゥエルリ 一ダ一 S K 6 0 1 (生化学工業株式会社) 、 M R 6 0 0 (ダイナテック社) など 〕 を使用して吸光度を測定する。
上記した抗ケラタン硫酸抗体を使用する検出方法は、 抗コン ドロイチ ン硫酸抗体を使用する場合にも応用できる。
本発明は、 正常ァグリカ ンの測定方法に使用する測定キッ トを提供す る。 例えば、 上記測定法 1に使用する測定用キッ 卜 (以下、 「測定キッ ト 1」 という。 ) であって、 下記構成試薬 A , Bおよび Cからなる c 測定キッ ト 1
A 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アルロ ン酸を分解または除去するための試薬、 B 正常ァグリカンを特異的に結合または吸着するための固相、 およ び
C 上記 Bの固相に結合または吸着した正常ァグリ力ンを検出するた めの試薬。
また、 測定キッ 卜 1にさらに、 正常ァグリカンとヒアルロン酸との結 合または吸着を安定化するための試薬を追加することが可能である。 上記 Bは、 上記 Aを用いる処理で得られた処理検体を、 正常ァグリカ ンを結合または吸着できる固相と接触させて、 検体中の正常ァグリカン を該固相に結合または吸着させる固相であって、 一例として検体中のヒ アル口ン酸と結合できる正常ァグリ力ンを選択的に結合または吸着させ るために、 ヒアルロン酸を共有結合または物理吸着させたマイクロプレ — トゃクロマ トグラフィ一用の担体を使用することができる。 簡便性と 高い感度を得るためには、 酵素免疫測定法 (ELISA) 等の免疫測定用の マイクロプレー 卜が好ましい。
上記、 該安定化するための試薬は、 例えばリ ンクタンパク等である。 上記構成試薬 Cは、 該正常ァグリ力ンに結合したケラタン硫酸または コン ドロイチン硫酸, あるいは正常ァグリカ ンのコアタ ンパクの特異的 検出試薬である。
本発明は、 例えば、 上記測定法 2に使用する測定用キッ 卜 (以下、 「 測定キッ ト 2」 という。 ) であって、 下記構成器具 A, 試薬 Bからなる 測定用キッ 卜を提供する。
測定キッ 卜 2
A ヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンの会合体をヒアルロ ン酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンから分別することができる 分子量分画能を有する分別器具、 および
B ヒアルロン酸一正常ァグリ力ン会合体として分別された正常ァグ リ力ンを検出する試薬。
上記構成器具 Aは、 ヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンの会 合体を濾取できる濾過膜を備えた濾過器具である。
上記構成試薬 Bは、 該正常ァグリ力ンに結合したケラタン硫酸または コン ドロイチン硫酸, あるいは正常ァグリ カ ンのコアタ ンパクの特異的 検出試薬である。
検体は好ましくは判定対象関節に由来する関節液である。
上記 Aは、 検体中のヒアルロ ン酸と結合している正常ァグリカ ン (ヒ アルロン酸一ァグリカ ン会合体) を濾過膜により、 回収する濾過膜およ び濾過装置である。 検体中の正常ァグリカンはヒアル口 ン酸と結合し、 分子量数百万以上の巨大分子を形成する。 このものは適当な孔径 (0 . 1 - 0 . 4 5 / m、 好ましくは 0 . 2 m程度) の濾過膜で保持される 力、 ヒアルロン酸と結合できないァグリ力ンはこの濾過膜を通過する。 この目的のために、 種々の濾過膜を使用できるが、 非特異的吸着の少な い濾過膜、 例えば、 テフロン製のものが好ましい。 この濾過膜を適当な 濾過装置に装着させ、 検体を適当な圧力や遠心力により濾過する。 体液 として関節液以外の検体を対象とする場合は、 ヒアルロン酸—ァグリ力 ン会合体を形成させるために、 検体中に分子量数十万以上のヒアルロ ン 酸を添加することが必要である。
本発明は上記測定方法および測定用キッ トを利用する関節情報の判定 方法を提供する。 本発明を関節液を検体とすることにより、 関節軟骨の 基質代謝に関する情報を得ることができる。
正常な関節液中に含まれるプロテオグリカンは、 あまり分解が進んで おらず、 前述のヒアルロン酸と会合できる正常ァグリ力ンの割合は約 3 8 %である。 一方、 変形性関節症, 慢性関節リ ウマチなどの病態では、 関節液中のプロテオグリ力ンのなかで会合能力を有する正常ァグリ力ン の割合は著しく低く、 約 1 8 %である。 この差は、 軟骨基質の分解亢進 をそのまま反映しているものと解釈できる。
正常、 変形性関節症, 慢性関節リウマチおよび外傷性関節炎 (TA) で 関節液中の正常ァグリ力ンとそれ以外のプロテオグリ力ンの絶対量およ び比を測定した結果、 各病態間でこれらの測定値は特徴的に異なってお り、 これらの病態間の生化学的な診断マーカ—としての利用が期待でき る。 具体的には、 正常ァグリ力ンの濃度や全プロテオグリ力ンに対する 正常ァグリ力ンの存在比率を知ることにより、 正常関節と病態関節の判 別、 関節疾患の種類や予後の判定などの病態の把握、 さらに治療効果の 把握に利用できる。
関節炎と関節液、 血清中のグリコサミ ノグリカ ン, プロテオグリカ ン について説明する。
前述のように、 関節炎に伴い軟骨が破壊されると、 軟骨基質からプロ テオグリカ ンの分解物が関節液中へ遊出され、 その後、 血液中へ移行す る。 関節炎に伴い変動するプロテオグリカ ン, グリ コサミ ノグリカ ンに ついて、 最近の報告を見ると、 測定されているマーカ一分子はケラタン 硫酸, コン ドロイチン硫酸、 およびこれらの合計である硫酸化グリ コサ ミ ノダリ カ ン (S-GAG) 、 さ らにプロテオグリ カ ンフラグメ ン トである
。 以下に各マーカー分子のケラタン硫酸, コン ドロイチン硫酸, S- GAG およびプロテオグリ カ ンフラグメ ン 卜の変動についてまとめる。
1 . ケラタン硫酸
特異的な乇ノクロナ一ル抗体が市販されているため、 ELISAゃラジォ ィムノアッセィ (RIA) を用いて広範な検討がなされている。 関節液で は、 痛風や反応性関節炎において、 著しい濃度の增加が認められる。 血 清中の濃度に関しては、 変形性関節症 (osteoarthri t i s: OA) や慢性関 節リウマチ (rheumatoi d arthr i t i s: RA) で增加するという幸艮告と変動 は少ないという報告がある。
2 . コ ン ドロイチン硫酸
コン ドロイチナーゼ A B C消化後に得られた不飽和二糖を高速液体ク 口マ トグラフィ一 (HPLC ) で測定した結果が報告されている。 コン ドロ ィチン硫酸異性体の中で C 6 S濃度は、 ケラタン硫酸濃度の場合と同様 に、 外傷性関節炎で著しく高く、 軟骨の急激な破壊を反映したものと思 われる。 一方、 C 4 Sは慢性闋節リゥマチ関節液で変形性関節症に比べ て高く、 C 6 S / C 4' Sの値は、 変形性関節症や外傷性関節炎に比べて 低かった。 C 4 Sは主に滑膜または血清由来と考えられ、 慢性関節リウ マチにおける滑膜炎を反映しているのかもしれない。
3 - 硫酸化グリコサミ ノグリカ ン (S- GAG)
関節液中においては、 コ ン ドロイチン硫酸とケラタン硫酸濃度の合計 と解釈して問題ない。 S-GAGを特異的に測定できる色素 ( 1, 9ージメ チルメチレンブル一 : MB) を用いて、 簡便に測定されている。 痛風や 反応性関節炎で著しい、 関節液中の増加が認められている。 変形性関節 症や慢性関節リゥマチの関節液においては、 明白な増加は認められてい ない。
4 . プロテオグリ カ ンフラグメ ン ト
ァグリカ ンの部位特異的な抗体を用いて、 主にァグリカ ンの代謝、 分 解、 遊出機構の解明を目的として測定されている。 グリコサミ ノグリ力 ン濃厚領域の関節液中における変動は S _ G A Gの変動パタ—ンと同様 と判断される。 ヒアルロ ン酸結合部位の濃度は、 慢性関節リウマチの初 期では低く、 病態の進行に伴い増加した。 この結果は、 ヒアルロ ン酸結 合部位が軟骨破壊の初期に、 関節基質中に保持されるためと解釈されて いる。
5 . まとめ 痛風や外傷性関節炎のように、 軟骨破壊が急激に進行する関節炎では 、 関節液中の上記マ —力—分子の著しい増加が認められる。 しかし、 変 形性関節症や慢性関節リウマチのように、 軟骨破壊の進行が遅い関節炎 では、 軟骨基質成分は徐々に遊出するため、 関節液や血清におけるマー 力—分子の変動はあまり明確ではない。
できるだけ正確に関節炎の病状を把握するためには、 関節液や血清中 におけるマーカー分子の分解又は変性程度を知る必要がある。
本発明の関節情報の判定方法は、 検体中の正常ァグリ力ンの量に関す る情報を検出し、 上記と同種類の情報であって、 あらかじめ作成してい る、 正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ンの量に関する情報と対比 し、 有意な差がある場合に病態関節に属する情報であると、 有意な差が ない場合に正常関節に属する情報であると判定することを特徴とする。 上記検体中の正常ァグリ力ンの量に関する情報の検出は、 上記測定方 法 1または測定方法 2によって検体中の正常ァグリ力ンの濃度を測定す るとともに、 その検体中の全プロテオグリカン濃度も測定し、 全プロテ ォグリ力ンに対する正常ァグリ力ンの割合を算出することである。 上記有意な差は、 検体中の全プロテオグリ力ンに対する正常ァグリ力 ンの割合を算出し、 その値が、 あらかじめ作成した正常関節由来の関節 液中の全プロテオグリカ ンに対する正常ァグリ力ンの割合を示す値と比 ベて、 有意に低いことである。
上記の有意な差がある場合、 変形性関節症、 慢性関節リウマチ、 外傷 性関節炎および痛風からなる群から選ばれたいずれかの病態関節に属す る情報であると判定する。
上記検体中の正常ァグリ力ンの量に関する情報の検出は、 上記測定方 法 1または測定方法 2によって検体中の正常ァグリ力ンの濃度を測定す るとともに、 その検体中の全プロテオグリカ ン濃度を測定し、 全プロテ ォグリ力ン濃度と正常ァグリ力ンとの差を正常ァグリ力ン以外のプロテ ォグリ力ン濃度として算出することである。
上記有意な差は、 検体中の正常ァグリ力ン濃度があらかじめ作成した 正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン濃度と比べて有意に低いこと 、 かつ、 検体中の正常ァグリカ ン以外のプロテオグリカ ン濃度が、 あら かじめ作成した正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン以外のプロテ ォグリカン濃度と比べて、 有意な差がないことである。 上記の有意な差 がある場合、 変形性関節症または慢性関節リゥマチ等の軟骨破壊の進行 が遅い関節炎に属する情報であると判定され、 上記の有意な差がない場 合、 正常関節に属する情報であると判定する。
上記有意な差には種々の態様がある。 上記有意な差がある場合に該当 する例として、 検体中の正常ァグリ力ン濃度があらかじめ作成した正常 関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン濃度と比べて差がないこと、 かつ 、 検体中の正常ァグリ力ン以外のプロテオグリ力ン濃度が、 あらかじめ 作成した正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン以外のプロテオグリ カ ン濃度と比べて、 有意に高い場合がある。 上記の有意な差がある場合 に、 外傷性関節炎または痛風等の軟骨破壊が急激に進行する関節炎に属 する情報であると判定し、 有意な差がない場合に、 正常関節に属する情 報であると判定する。
上記検体はいずれも好ましくは判定対象関節に由来する関節液である
発明を実施するための最良の形態
以下、 実施例により本発明をさらに詳細に説明する。 本発明はこれら の実施例によつてなんら限定されない。
実施例 1 測定方法 1を用いて関節液中の正常ァグリ力ンを測定した例を示す。
( 1 ) 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アル口ン酸を分解または除去する工程。
正常、 変形性関節症、 慢性関節リウマチ、 外傷性関節炎の関節液の約 1 0 m gを正確に取り、 蒸留水で 1 0倍に希釈する。 その 80 1 に 5 TR U (Turbidity Reducing Unit:濁度減少単位) Z5 0 ^ 1 のス ト レブト ミセス属微生物由来のヒアルロニダ一ゼ (生化学工業㈱) と 80 〃 1 の 1 0 0 mM齚酸ナ 卜 リゥム緩衝液 (p H 6. 0 ) 、 さらに 80 1 のプロテア一ゼ阻害剤液 ( l O O mMの 6—ァミ ノ力プロン酸、 1 0 mMのエチレンジア ミ ン 4酢酸ナ ト リ ウム、 1 0 mMの N—ェチルマレ ィ ミ ド、 1 0 mMのフヱニルメ タ ンスルフォニルフルオラィ ド) を加え 、 40 °Cで 2時間消化した。 この操作により、 検体中のヒアルロ ン酸は 四糖または六糖に分解され、 正常ァグリ力ンとの結合能力を喪失した。
(2 ) 上記で得られた処理検体を、 正常ァグリカ ンを結合または吸着で きる固相と接触させて、 検体中の該固相に結合または吸着させる工程。 処理検体にヒアルロニダ—ゼの阻害剤 (塩化第 2水銀ゃフ リ シァン カ リウムなど) を適当量加えたのち、 検体の一部をヒアルロン酸を共有 結合させた 9 6穴のゥエルプレ一 卜 (マイクロプレー 卜) に加えた。 本 実施例では、 住友べ一クラィ 卜社製のァミ ノプレー 卜に、 1ーェチル— 3 - ( 3—ジメチルァミ ノプロピル) カルボジィ ミ ドを用いてヒアル口 ン酸を共有結合させたものを使用した。 1 5 °Cで 4時間インキュべ一シ ヨ ンした後、 ゥエルプレー 卜洗浄装置を用いて +分洗浄した。
( 3 ) 固相に結合または吸着した正常ァグリカ ンを検出する工程。
ケラタ ン硫酸に対するモノ ク ローナル抗体 (ク ローン名, 5 D 4 , サ ブクラス I g G ! , 生化学工業㈱製) 溶液をゥエルに加え、 4。Cで 2時 間放置した。 ゥエルプレー 卜を洗浄後、 ペルォキシダーゼで標識した抗 マウス I g G抗体 (生化学工業㈱製) を加え、 さらに 4 Cで 2時間放置 した。 洗浄後、 常法に従い、 0 _フヱニレンジアミ ンで発色させ、 ゥェ ノレリーダー (S K 60 ) (生化学工業㈱) で吸光度を測定した。 ゥシァ グリカ ン (生化学工業㈱製) を用いて別に作成した検量線から、 関節液 中の正常ァグリ力ン濃度を算出した。
また、 同様の方法で、 検体と上記の固相とを接触させる際に、 別に調 製したリ ンクタンパク 1 n gを加えても下記と同様の結果が得られた。 なおリ ンクタ ンパクは、 続生化学実験講座, 第 4巻, 複合糖質研究法, Π, 253— 263頁, 1 986年 1月 1 6日㈱東京化学同人発行に記 載の塩化セシウム沈降平衡遠心法によって得たものを使用した。
(4 ) 結果
表 1に上記方法を用いて測定されたヒ 卜関節液中の正常ァグリ力ン濃 度、 それ以外のプロテオダリカ ン (PG) 濃度および全プロテオダリカ ン に対する正常ァグリ 力 ンの割合を示す。
全プロテオグリカ ン濃度は、 既に報告されている方法 (Ratcliffe,A. ,et al. : Ann. Rheum. Pis., 47, 826 (1988) ) に従い、 ケラタ ン硫 酸に対するモノクロナール抗体を用いて、 ゥシァグリ力ンを標準として 測定した。 正常ァグリ力ン以外のプロテオグリ力ン濃度は全プロテオグ リ力ン濃度から正常ァグリ力ン濃度を差し引いて算出した。
表 1
試料の由来 正常 OA R A T A
4 9 10 10 正常ァグリ力ン濃度 33.2+8.26 17.4+7.42** 3.84±1.19** 23.4+16.2
Figure imgf000026_0001
それ以外の P G濃度 72.8+14.1 94.8+32.6 51.6+52.6 172+107
Figure imgf000026_0002
正常ァグリカンの割合 37.5±15.1 17.5+6.68** 12.9+8.77** 12.9+5.26^
(%) 値は平均値土標準偏差、 有意差検定は正常に対して行った。
氺 : P < 0. 05
*氺 : P < 0. 01
4〜 1 0例の分析結果にもかかわらず、 いずれの病態関節液において も正常ァグリ力ンの割合は有意に低く、 これら病態関節におけるァグリ カ ンの分解が示唆された。 一方、 正常ァグリカ ンの濃度は変形性関節症 (O A) や慢性関節リゥマチ (R A) で有意に低く、 外傷性関節炎 (T A) では正常と差がなかった。 しかし、 正常ァグリカン以外のプロテオ ダリカ ン濃度は外傷性関節炎 (TA) で特徴的に高かった。 以上のよう に、 正常ァグリ力ンの濃度およびその存在比率を測定することにより、 関節疾患の判別や軟骨破壊に関する情報を得ることができる。
一方、 従来マーカ一分子とされていた C 6 Sを測定したところ、 C 6 S濃度は外傷性関節炎で正常に比べて有意に高いものの、 変形性関節症 では差がなく、 慢性関節リウマチではむしろ低かつた。 なお、 測定方法 2を用いて同一検体を測定した場合も同様の結果が得 られる。 産業上の利用可能性
整形外科領域における関節疾患の生化学的診断に利用できる。 正常ァ グリ力ンの濃度や全プロテオグリ力ンに対する正常ァグリ力ンの存在比 率を知ることにより、 正常関節と病態関節の判別、 関節疾患の種類ゃ予 後の判定などの病態の把握、 さらに治療効果の把握に利用できる。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . 検体中に存在する、 ヒアルロ ン酸との結合能を有する正常ァグリカ ンをヒアルロン酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンから分別し、 正常ァグリカ ンのみを検出することを特徴とする正常ァグリ力ンの測定 法。
2 - 上記ヒアルロ ン酸との結合能を有する正常ァグリカ ンの、 ヒアルロ ン酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンからの分別が、 下記工程 A , Bからなる請求項 1記載の正常ァグリ 力 ンの測定方法。
A 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アルロン酸を分解または除去する工程、 および
B 上記 Aで得られた処理検体を、 正常ァグリカ ンを結合または吸着 できる固相と接触させ、 検体中の正常ァグリ力ンのみを該固相に結合ま たは吸着させ、 その他のプロテオグリ力ンと分離する工程。
3 . 上記ヒアルロ ン酸との結合能を有する正常ァグリカ ンの、 ヒアルロ ン酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンからの分別が、 下記工程 A からなる請求項 1記載の正常ァグリ力ンの測定方法。
A 検体中のヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンの会合体を 、 分子量の差によって、 ヒアルロ ン酸との結合能を有さないプロテオグ リ力ンから分離する工程。
4 . 分子量の差による分別手段が、 ヒアルロ ン酸と結合している正常ァ グリ力ンの会合体を濾取できる濾過膜を備えた濾過器具を使用するもの である請求項 3記載の正常ァグリカ ンの測定方法。
5 - 上記正常ァグリカ ンのみの検出が、 分別した正常ァグリカ ンを、 プ 口テオグリ力ンを検出する手段を用いて検出する工程からなる請求項 1 、 請求項 2、 請求項 3または請求項 4記載の正常ァグリカ ンの測定方法
6 . プロテオグリカ ンを検出する手段が、 該プロテオグリカ ンに結合し たケラタン硫酸またはコン ドロイチン硫酸, あるいはプロテオグリカン のコアタンパクの特異的検出手段である請求項 5記載の正常ァグリ力 ン の測定方法。
7 . 検体が判定対象関節に由来する関節液である請求項 1、 請求項 2、 請求項 3、 請求項 4、 請求項 5または請求項 6記載の正常ァグリ カ ンの 測定方法。
8 . 請求項 2の正常ァグリカ ンの測定法に使用する測定用キッ トであつ て、 下記構成試薬 A , B , Cからなる正常ァグリカン測定用キッ ト。
A 検体中の正常ァグリ力ンと結合したヒアルロン酸および遊離のヒ アル口ン酸を分解または除去するための試薬、
B 正常ァグリカ ンを特異的に結合または吸着するための固相、 およ び
C 上記 Bの固相に結合または吸着した正常ァグリ力ンを検出するた めの試薬。
9 . 上記構成試薬じが、 該正常ァグリカ ンに結合したケラタ ン硫酸また はコン ドロイチン硫酸, あるいは正常ァグリ カ ンのコアタ ンパクの特異 的検出試薬である請求項 8記載の正常ァグリ力ン測定用キッ ト。
1 0 . 請求項 3の正常ァグリカンの測定法に使用する測定用キッ 卜であ つて、 下記構成器具 A , 試薬 Bからなる正常ァグリカ ン測定用キッ ト。
A 検体中のヒアルロン酸と結合している正常ァグリ力ンの会合体を ヒアルロン酸との結合能を有さないプロテオグリ力ンから分別すること ができる分子量分画能を有する分別器具、 および
B ヒアルロ ン酸と結合している正常ァグリ力 ンの会合体として分別 された正常ァグリ力ンを検出する試薬。
1 1 . 上記構成器具 Aが、 ヒアルロン酸と結合している正常ァグリカ ン の会合体を濾取できる濾過膜を備えた濾過器具である請求項 1 0記載の 正常ァグリ力ン測定用キッ 卜。
1 2 . 上記構成試薬 Bが、 該正常ァグリ力ンに結合したケラタン硫酸ま たはコン ドロイチン硫酸, あるいは正常ァグリ カ ンのコアタ ンパクの特 異的検出試薬である請求項 1 0または請求項 1 1記載の正常ァグリ力ン 測定用キッ 卜。
1 3 . 検体が判定対象関節に由来する関節液である請求項 8、 請求項 9 、 請求項 1 0、 請求項 1 1または請求項 1 2記載の正常ァグリ力ンの測 疋用キッ ト。
1 4 . 検体中の正常ァグリ力ンの量および全プロテオグリ力ンの量に関 する情報を検出し、 上記と同種類の情報であって、 あらかじめ作成して いる、 正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ンの量および全プロテオ グリ力ンの量に関する情報と対比し、 有意な差がある場合に病態関節に 属する情報であると判定し、 有意な差がない場合に正常関節に属する情 報であると判定することを特徴とする関節情報の判定方法。
1 5 . 上記検体中の正常ァグリ力ンの量および全プロテオグリ力ンの量 に関する情報の検出が、 請求項 1記載の正常ァグリ力ンの測定法によつ て検体中の正常ァグリ力ンの濃度を測定するとともに、 その検体中の全 プロテオグリ力ン濃度も測定し、 全プロテオグリ力ンに対する正常ァグ リ力ンの割合を算出することである請求項 1 4記載の関節情報の判定方 法。
1 6 . 上記有意な差は、 検体中の全プロテオグリカ ンに対する正常ァグ リカ ンの割合を算出し、 その値が、 あらかじめ作成した正常関節由来の 関節液中の全プロテオグリ力ンに対する正常ァグリ力ンの割合を示す値 と比べて、 有意に低いことである請求項 1 4または請求項 1 5記載の関 節情報の判定方法。
1 7 . 上記割合が有意に低い場合、 変形性関節症、 慢性関節リウマチ、 外傷性関節炎および痛風からなる群から選ばれたいずれかの病態関節に 属する情報であると判定する請求項 1 6記載の関節情報の判定方法。
1 8 . 上記検体中の正常ァグリカ ンの量に関する情報の検出が、 請求項 1記載の正常ァグリ力ンの測定法によって検体中の正常ァグリ力ンの濃 度を測定するとともに、 その検体中の全プロテオグリ力ン濃度を測定し 、 全プロテオグリ力ン濃度と正常ァグリ力ン濃度との差を正常ァグリ力 ン以外のプロテオグリ力ン濃度として算出することである請求項 1 4記 載の関節情報の判定方法。
1 9 . 上記有意な差は、 検体中の正常ァグリカ ン濃度があらかじめ作成 した正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン濃度と比べて有意に低い こと、 かつ、 検体中の正常ァグリ力ン以外のプロテオグリ力ン濃度が、 あらかじめ作成した正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン以外のプ 口テオグリ力ン濃度と比べて、 有意な差がないことである請求項 1 4ま たは請求項 1 8記載の関節情報の判定方法。
2 0 . 正常ァグリ力ン濃度に有意な差がある場合に軟骨破壊の進行が遅 い関節炎に属する情報であると判定する請求項 1 9記載の関節情報の判 定方法。
2 1 . 上記有意な差は、 検体中の正常ァグリカ ン濃度があらかじめ作成 した正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン濃度と比べて差がないこ と、 かつ、 検体中の正常ァグリカ ン以外のプロテオグリカ ン濃度が、 あ らかじめ作成した正常関節由来の関節液中の正常ァグリ力ン以外のプロ テオグリ力ン濃度と比べて、 有意に高いことである請求項 1 4または請 求項 1 8記載の関節情報の判定方法。
2 2 . 正常ァグリ力ン以外のプロテオグリ力ンの濃度に有意な差がある 場合に軟骨破壊の進行が速い関節炎に属する情報であると判定する、 有 意な差がない場合に正常関節に属する情報であると判定する請求項 2 1 記載の関節情報の判定方法。
2 3 . 検体が判定対象関節に由来する関節液である請求項 1 4、 請求項 1 5、 請求項 1 6、 請求項 1 7、 請求項 1 8、 請求項 1 9、 請求項 2 0 、 請求項 2 1または請求項 2 2記載の関節情報の判定方法。
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