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WO1993020525A1 - Method of searching the structure of stable biopolymer-ligand molecule composite - Google Patents

Method of searching the structure of stable biopolymer-ligand molecule composite Download PDF

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WO1993020525A1
WO1993020525A1 PCT/JP1993/000365 JP9300365W WO9320525A1 WO 1993020525 A1 WO1993020525 A1 WO 1993020525A1 JP 9300365 W JP9300365 W JP 9300365W WO 9320525 A1 WO9320525 A1 WO 9320525A1
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WO
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hydrogen
ligand molecule
biopolymer
molecule
ligand
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Application number
PCT/JP1993/000365
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Inventor
Akiko Itai
Miho Yamada
Original Assignee
Akiko Itai
Miho Yamada
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    • GPHYSICS
    • G16INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
    • G16BBIOINFORMATICS, i.e. INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR GENETIC OR PROTEIN-RELATED DATA PROCESSING IN COMPUTATIONAL MOLECULAR BIOLOGY
    • G16B15/00ICT specially adapted for analysing two-dimensional or three-dimensional molecular structures, e.g. structural or functional relations or structure alignment
    • GPHYSICS
    • G16INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
    • G16BBIOINFORMATICS, i.e. INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR GENETIC OR PROTEIN-RELATED DATA PROCESSING IN COMPUTATIONAL MOLECULAR BIOLOGY
    • G16B15/00ICT specially adapted for analysing two-dimensional or three-dimensional molecular structures, e.g. structural or functional relations or structure alignment
    • G16B15/30Drug targeting using structural data; Docking or binding prediction

Definitions

  • the present invention relates to a method for searching for a stable complex structure of a biopolymer-ligand molecule that can be used for the structural design of a pharmaceutical, a pesticide, or another bioactive compound.
  • a drug or biologically active substance In order for a drug or biologically active substance to exert its physiological activity, it must be a target biopolymer (not only pharmacological receptors involved in intercellular signal transduction, but also enzymes, cytokines, proteins, and other proteins). (Including complex containing nucleic acid). Since 1960, the three-dimensional structures of many biological macromolecules have been elucidated at the atomic level by X-ray crystallography, and the results have been published in the Proteinde Itaya Bank.
  • the ligand molecules also includes a drug molecule candidate, for example, a drug molecule to be synthesized.
  • the key to achieving a stable bond between a biopolymer and a ligand molecule is the shape of the groove or dent (called the ligand binding site) that binds the ligand in the three-dimensional structure of the biopolymer and the shape of the surface of the ligand molecule. It must be complementary, like a key, and the interaction between the two molecules must produce a special affinity. It is known from the crystal analysis of a complex of a biopolymer and a ligand molecule that hydrogen bonding, electrostatic interaction, hydrophobic interaction, and the like are particularly important among these intermolecular interactions.
  • any given compound molecule can form a stable complex with the target biopolymer, and if so, what kind of binding mode (which functional group of the ligand binding site of the biopolymer corresponds to which It is extremely important in drug design and structure-activity relationship to know the complex of what kind of interaction with a functional group) and how stable it is. Exploring a stable binding mode requires a degree of freedom in conformational change For certain ligand molecules, this means that the molecular conformation (active conformation) when bound to the target biopolymer is determined at the same time, which is also important for drug design.
  • the structure of the ligand molecule is determined by the crystal structure of the ligand molecule alone, the structure in a solution, and the most stable energies obtained by various energies. (Minimal) It is known that the structure is often different.
  • a study or work that simulates a p-stable binding mode of a ligand molecule of arbitrary structure for a biological macromolecule is called a docking study.
  • docking studies have been performed using molecular models.However, the time and effort required to assemble the molecular model, the accuracy of the model, the reproducibility of the results, and the lack of quantitativeness are low. there were.
  • Recently, a simulation method using a computer and computer graphics has been used for solving these problems.
  • an object of the present invention is to provide a method for searching for a stable complex structure of a biopolymer-ligand molecule which has solved the above-mentioned problems.
  • Another object of the present invention is to provide a method capable of simultaneously searching for a binding mode of a ligand molecule to a biopolymer and an active conformation of the ligand molecule. Disclosure of the invention
  • the present inventors have made intensive efforts to determine the binding mode of the stable complex in consideration of the 7i element bond, electrostatic interaction, and van der Waals force as the interaction between the biopolymer and the ligand molecule.
  • a method for automatically docking an arbitrary ligand molecule to a ligand binding region of a biopolymer by developing an active conformation of the ligand molecule simultaneously with the search has been developed. Successful. That is, the present invention
  • (1) Combinedly covers the association between a dummy atom set at the position of a heteroatom that can be a hydrogen bond partner of a hydrogen-bonding functional group in a biopolymer and a hydrogen-bonding heteroatom in a ligand molecule By doing so, the first step covering the hydrogen bonding modes between the biopolymer and the ligand molecule,
  • the hydrogen bonding mode between the biopolymer and the ligand molecule and the arrangement of the hydrogen bonding portion of the ligand molecule can be determined.
  • An object of the present invention is to provide a method for searching for a structure of a stable biopolymer-ligand molecule complex including a third step of obtaining a biopolymer-ligand molecule complex by replacing the molecule coordinate system.
  • the hydrogen bonding pattern between the biopolymer and the ligand molecule and the arrangement of the hydrogen-bonding portion of the ligand molecule can be determined.
  • the coordinates of all the atoms of the ligand molecule are determined based on the correspondence between the hydrogen bonding heteroatoms and the dummy atoms in the ligand molecule. 6th step to obtain the complex structure of biopolymer-ligand molecule by replacing the coordinate system
  • the hydrogen bonding mode between the biopolymer and the ligand molecule and the arrangement of the hydrogen-bonding portion of the ligand molecule can be determined.
  • An object of the present invention is to provide a method for searching for a structure of a polymer of a biopolymer-ligand molecule, including a seventh step of optimizing the structure of a complex structure. By this method, an appropriate complex structure can be selected even if the number of conformations to be generated is reduced, and a stable complex with high accuracy can be obtained.
  • a biopolymer includes not only a polymer found in a living body but also a molecule simulating a polymer found in a living body.
  • Hydrogen-bonding functional groups include functional groups and atoms that are considered to be involved in 7J bond.
  • Elementary bond heteroatom refers to a heteroatom constituting a hydrogen bondable functional group present in the ligand molecule.
  • hydrophilicity refers to the structural part of the ligand molecule that contains a 7j elementary heteroatom that is associated with a single atom. Other structural parts.
  • FIG. 1 schematically shows the main steps in the method of the present invention.
  • FIG. 2 shows a flowchart of the method of the present invention. In the figure, S indicates each step You.
  • FIG. 3 shows the molecular structure of methotrexate (MTX) and dihydrofolate (DHF).
  • MTX methotrexate
  • DHF dihydrofolate
  • FIG. 4 shows the structure of the most stable model of the dihydrofolate reductase-methotrexate complex obtained by the method of the present invention.
  • the bold line shows the molecular structure of methotrexet
  • the thin line shows a part of the molecular structure of dihydrofolate reductase.
  • FIG. 5 shows the conformation (a) of methotrexate in the crystal structure used alone as the input structure, and the dihydrofolate reductase-methotrexet complex obtained by the method of the present invention.
  • the methotrexate conformation (b) in the stable model and the methotrexate conformation (c) in the crystal structure of the dihydrofolate reductase-methotrexate complex are shown.
  • FIG. 6 shows the stereospecificity of the dihydrofolate reductase reaction.
  • FIG. 7 shows the structure of the most stable model of the dihydrofolate reductase dihydrofolate complex obtained by the method of the present invention.
  • the bold line shows the molecular structure of dihydrofolate
  • the dotted line shows a part of the molecular structure of dihydrofolate reductase.
  • Fig. 8 shows a schematic diagram of the mode of binding of methotrexate to dihydrofolate reductase in the crystal structure of the dihydrofolate reductase-methotrexate complex (a), and the reaction product of dihydrofolate reductase.
  • (B) shows a schematic diagram of the binding mode of dihydrofolate to dihydrofolate reductase inferred from the stereospecificity of E. coli.
  • S indicates each step.
  • the number and atomic coordinates (excluding the atomic coordinates of the arsenic atom) of the biopolymer are entered (S 1).
  • the atomic coordinates of biopolymers can be calculated from the three-dimensional structure obtained by X-ray crystallography or NMR analysis, or can be obtained using a protein crystal database, etc., or constructed based on such information.
  • the atomic coordinates of the biopolymer model can be used. This atomic coordinate is preferably represented by a three-dimensional coordinate system.
  • biopolymers for biopolymers
  • a cofactor that plays an important role both structurally and functionally by binding is regarded as a biopolymer, and the atomic coordinates of the biopolymer with the cofactor bound are input, Less than
  • the above cofactors include coenzymes, water molecules, iron
  • the position of hydrogen atoms in biopolymers can be determined by experiments such as X-ray crystal
  • Hydrogen bond numbers can be added according to Table 1 below.
  • a region including an arbitrary site of the biopolymer can be selected.
  • a region containing a ligand binding pocket, a site of a biopolymer surrounding the site, and, if necessary, a site of a biopolymer to which another molecule such as an effector binds may be used, for example.
  • Fig. 1 (a) it can be specified as a rectangular You.
  • the ligand binding pocket is located on the concave molecular surface of a biopolymer and has an inner hole to which a ligand molecule such as a substrate or an inhibitor binds.
  • a three-dimensional grid point is generated in the area specified in S5, and numbering and grid point calculation are performed for each three-dimensional grid point (S6).
  • the three-dimensional lattice points are points on the three-dimensional lattice generated at regular intervals in the ligand binding region of the biopolymer.
  • Lattice point information refers to van der Waals and electrostatic interaction energies acting between the biopolymer and the probe atoms, calculated assuming that atoms serving as probes exist on each three-dimensional lattice point, and hydrogen bonding properties.
  • ⁇ ⁇ including the local physicochemical ⁇ f ⁇ of the ligand binding region of.
  • the three lattice points may be generated in the region designated by S5 at regular intervals of 0.3 to 2.0 angstroms, preferably 0.3 to 0.5 angstroms.
  • the probe atom it is preferable to adopt all the atomic species contained in the compound that may become a ligand.
  • the van der Waals interaction energy acting between each probe atom arranged at each three-dimensional favorable point and the biopolymer can be calculated by an ordinary atomic pair calculation using an experimental potential function.
  • an experimental potential function a Lemiard-Jones type function represented by the following equation can be used.
  • i represents the number indicating the position of the probe atom
  • j represents the number of the atom of the biopolymer.
  • a and B represent the parameters that determine the position and magnitude of the minimal potential.
  • R represents i Between the probe atom placed at the jth position and the jth atom of the biopolymer Represents the distance between.
  • the van der Waals interaction energy between the ligand molecule and the biopolymer when the ligand molecule is placed on this three-dimensional lattice point can be calculated from the following equation.
  • the parameters of A and B include the values of Weiner et al. (Weiner, SJ, Kollman, PA, Case, DA, Singh, U.C, Ghio, C., Alagona, G., Profeta, S., Jr. and Weiner, P., J. Am. Chem. Soc., 106 (1984) 765-784) can be used.
  • the electrostatic interaction energy acting between each probe atom arranged at each three-dimensional lattice point and the biopolymer can be calculated from the following equation.
  • a constant value may be used as the dielectric constant, but a value depending on as proposed by Warshel et al. (Warshel, A., J. Phys. Chem., 83 (1979) 1640-1652) Is preferred.
  • the electrostatic interaction between the ligand molecule and the biopolymer when the ligand molecule is placed on the three-dimensional lattice point can be calculated from the following equation.
  • Hydrogen bondability means that a hydrogen bond can be formed with a hydrogen bondable functional group of a biopolymer if a hydrogen donor atom or a hydrogen acceptor atom is located at the three-dimensional lattice point. Information on whether or not any of the atoms cannot form a hydrogen bond with the hydrogen-bonding functional group of the biopolymer.
  • the hydrogen bonding property of a three-dimensional lattice point can be determined as follows.
  • a certain tertiary The distance DP between the child point P and a hydrogen-donating atom D present in the biopolymer is a distance capable of forming a hydrogen bond (for example, 2.5 to 3.1 angstroms), and P If the angle ZDHP formed by H, D, and 7K can form a hydrogen bond (for example, 30 ° or more), this three-dimensional lattice point may be regarded as hydrogen-accepting.
  • the distance DA between a certain three-dimensional lattice point P and a certain hydrogen-accepting atom A present in a biopolymer is a distance at which a hydrogen bond can be formed, and p, i a child pair L, As long as ZAL P is an angle at which a hydrogen bond can be formed, this three-dimensional lattice point may be regarded as hydrogen-donating. If a three-dimensional lattice point is neither hydrogen-accepting nor hydrogen-donating, it may be considered to have no hydrogen bonding.
  • a dummy atom is set for each hydrogen bonding functional group selected in S7 (S8).
  • a region where a hydrogen bond can be formed with each hydrogen bonding functional group selected in S7 ⁇ (hereinafter, “hydrogen bonding property” Region), and then within the hydrogen-bonding region and the van der Waals half of another atom, a hydrogen bond with an appropriate number, for example, 5 to 20 three-dimensional lattice points.
  • the Ti element bonding region is a region having the same hydrogen bonding property and composed of a group of three-dimensional lattice points adjacent to each other.
  • a single atom has the same hydrogen bonding property as the three-dimensional lattice point where the dummy atom is located at the center of the atom.
  • Two or more dummy atoms are set from one hydrogen-bonding functional group, and one dummy atom is not set.
  • the atoms that make up the ligand molecule enter the number, atom name, atom type number, atomic coordinates, charge, and if the atom is a hydrogen-bonding heteroatom, enter the hydrogen-bonding number (S 9).
  • the atomic coordinates of the ligand molecule can be calculated from a structural analysis of a single crystal, a three-dimensional structure obtained from a crystal database or model building based on energy calculation, and the like.
  • the conformation does not matter at all, as long as the geometrical amount such as the bond distance between atoms and the bond angle is accurate.
  • the charge of each atom constituting the ligand molecule can be calculated by molecular orbital calculation using the MD0 method or AMI method in the M0PAC program.
  • the hydrogen bond number of the hydrogen bondable hetero atom present in the ligand molecule can be added according to Table 1 described above.
  • any value may be set as these values, it is preferable to specify values before and after the value expected from the number of hydrogen bonds formed between the biopolymer and the known ligand molecule.
  • torsionally rotatable connection is a single bond
  • the number of combinations (combinations) that form i hydrogen bonds N (i) is m P i X n C i (where P represents a permutation and C represents a combination). It is preferred to select all possible combinations of dummy atoms and hydrogen bonding heteroatoms in the ligand molecule.
  • the combination should not be selected.
  • a ligand molecule, 7 is divided into elementary binding moiety and a non-hydrogen-bonding moieties (S 1 5) c
  • S 1 5) For example, non-hydrogen bonding and hydrogen bonding moiety ligand molecules as in the FIG. 1 (b) Divide into sex parts.
  • n is the number of hydrogen bonds
  • r di is the distance between the i-th dummy atoms
  • rii is the distance between the i-th hydrogen-bonded heteroatoms in the ligand molecule
  • ka is the F Represents the lower limit
  • k a the upper limit of F.
  • the conformation other than the conformation is removed.
  • Examples of the k a, is then 0. 6 to 0. 8, k a, and, from 1.2 to 1.4 are preferred.
  • the conformation of the hydrogen bonding portion of the ligand molecule is optimized so that the value of F is minimized (S20). This step modifies the conformation of the ligand molecule so that the biopolymer and the ligand molecule form stable hydrogen bonds.
  • the value of the above function F is calculated by the Fletcher-Powell method (R. Fletcher, MJD Powell, Computer J., _6, 163 (1968)) can be used to optimize the conformation of the hydrogen-bonding part of the ligand molecule.
  • the intramolecular energy of the hydrogen bonding portion of the ligand molecule optimized in the step of S20 is calculated, and the conformation in which the value of the intramolecular enezoregi is more than a certain value is removed (S21).
  • the intramolecular energy of the hydrogen bonding portion of the ligand molecule is calculated using the molecular force field of AMBER 4.0, the conformation in which the intramolecular energy is 100 Kcal / mol or more may be removed.
  • the atomic coordinates of the ligand molecule are adjusted so that the coordinates of the hydrogen-bonding heteroatom of the ligand molecule having the conformation obtained in the step up to S 21 and the coordinates of the corresponding dummy atom match. Replace with the biopolymer coordinate system (S22).
  • Kabsh's least squares method W. Kabsh, Acta Cryst., A32, 922 (1976), W. Kabsh, Acta Cryst., A34, 827 (1978)
  • W. Kabsh, Acta Cryst., A34, 827 (1978) can be used.
  • the possible hydrogen bonding modes and conformations of the hydrogen bonding portion of the ligand molecule can be roughly estimated at the same time.
  • the intermolecular interaction energy (the sum of van der Waals interaction energy and electrostatic interaction energy) between the living body ⁇ and the hydrogen bonding part of the ligand molecule, and the hydrogen bonding part of the ligand molecule Calculate the intramolecular energy (S23).
  • the intermolecular interaction energy E inter between the biopolymer and the hydrogen-bonding part of the ligand molecule is expressed by the Van der Waals interaction energy of the three-dimensional lattice point closest to each atom k in the ligand molecule G Tdw ( k) and the electrostatic interaction energy G elc (k) can be calculated from the following equation.
  • the intramolecular energy E intra of the hydrogen bonding portion of the ligand molecule can be calculated using a known force field published by a known method.
  • Eintra can be calculated by the following equation using a publicly known force field such as AMBER4.0.
  • V n is a constant given to the arrangement of the atom types of the four atoms constituting the torsion angle
  • n is a constant representing the symmetry of the potential with respect to the torsion angle rotation
  • is the torsion angle
  • y is the phase of the potential for torsion angle rotation (given for the sequence of the atom types of the four atoms that make up the torsion angle)
  • B i are the atoms of the ith and jth atoms in the liquid molecule
  • the constants set for the type pairs are the distance between the ith and jth atoms
  • q ⁇ is the charge of the ith atom in the ligand molecule
  • Q i is the jth
  • the charge of the atom and £ represent the permittivity.
  • the structure of the hydrogen bonding part of the ligand molecule can be optimized.
  • the total energy E t calculated from the following equation.
  • the structure of the hydrogen-bonding portion of the ligand molecule can be optimized by the Simplex method (HITACHI. Library Program, S0FSM) or the like so that tel is minimized.
  • E totai E int er + E i electt ra + Whb-Nhb-Chb
  • hb is the weight
  • Nhb is the number of hydrogen bonds
  • Chb is the stabilization energy due to one hydrogen bond (for example, 2.5 kcal / mo 1)- Is shown.)
  • the conformation of the ligand molecule is sequentially generated by rotating the bond capable of torsional rotation of the non-hydrogen bond portion of the ligand molecule according to the rotation mode specified in S11 (S26). The following steps S27 to S30 are repeated for each generated conformation.
  • intermolecular interaction energy and intramolecular energy can be calculated in the same manner as in S23. However, in S 23, the calculation is performed only for the hydrogen bonding portion of the second molecule, but in S 27, the calculation is performed for the entire second molecule.
  • the upper limit of the sum of the above energies is preferably 1500 kcal / mol.
  • This step results in a stabilized complex of the biopolymer and the ligand molecule, and an active conformation of the ligand molecule.
  • the structure of the ligand molecule can be optimized.
  • optimization is performed only for the structure of the hydrogen bonding portion of the liquid molecule, but in S29, the structure is optimized for the entire liquid molecule.
  • the structure of the complex obtained in the steps up to S29 is referred to as an initial complex model.
  • the composite cage of the biopolymer-ligand molecule is optimized (S30).
  • the biopolymer was treated as rigid, but in S30, the conformation of the biopolymer was changed to minimize the energy of the initial complex model.
  • the structure of the initial complex model can be optimized by minimizing this energy using a publicly known energy minimization calculation program AMBER. In this step, it is preferable to optimize the composite structure by arranging all water molecules and other molecules found in the crystal structure of the composite in the composite structure.
  • the structure of the complex obtained by the step S30 is referred to as a final complex model.
  • the energy of the complex of the biopolymer-ligand molecule obtained in the steps up to S30 is calculated, and the complex structures are ranked in ascending order of the energy. (S31).
  • a large number of Dami atoms are expected to be produced from a biopolymer, and that the ligand molecule has a considerably large conformational freedom.
  • step S9 after inputting the information on the ligand molecule in step S9, specify the partial structure of the ligand molecule, and specify S10 to S24 for the determined partial structure.
  • Perform a step to combine a Dami atom with a hydrogen bonding heteroatom in the ligand molecule that gives an impossible hydrogen bonding mode in the partial structure, and a ligand molecule that cannot form a hydrogen bond with the Dami atom Stores information on hydrogen-bonded heteroatoms in the cell.
  • the structure of the ligand molecule can be determined arbitrarily without any structural restrictions, but a structure containing three or more hydrogen-bonding functional groups is preferable. It doesn't matter.
  • the steps of S10 to S31 are performed on the entire structure of the ligand molecule, and the combination including the conserved hydrogen bonding heteroatom and the conserved dummy atom and hydrogen bonding are performed. Terror atom combinations are excluded from the correspondence combinations created in step S12. As a result, the number of combinations and conformations to be tested is reduced, and the time required for searching for the structure of a stable complex of a biopolymer-ligand molecule is significantly reduced.
  • a Pre-Pruning method hereinafter, referred to as a “PP method”.
  • the PP method is based on the presumption that hydrogen bonding modes and ligand conformations that are impossible in the partial structure of the ligand molecule are not possible even in the entire structure of the ligand molecule.
  • the search method can greatly reduce the search time without affecting the accuracy or reliability of the resulting complex structure of the biopolymer-ligand molecule at all.
  • the method of the present invention was applied to the structure search of a complex of dihydrofolate reductase and its inhibitor or its substrate.
  • Dihydrofolate reductase is one of the enzymes that has been widely studied as a target for clinical drugs, and the crystal structures of complexes with various inhibitor molecules have been analyzed.
  • the methotrexate complex a dihydrofolate reductase-inhibitor inhibitor
  • has been experimentally analyzed for its crystal structure and has been widely used worldwide as a model for methodology research for the stable rise of complex cages. I have.
  • the atomic coordinates of dihydrofolate reductase are the values obtained from the atomic coordinates of the binary complex of DHF R-methotrexate of Escherichia coli available from Protein Data Bank 4 DFR. Was used. Based on the crystal structure of the ternary complex of DHFR-folate-NADP +, the atomic coordinates of the cofactor NADP + molecule were added to the atomic coordinates of the binary complex. Also, all water molecules were removed from the atomic coordinates of the binary complex with the exception of the two water molecules, which bind very strongly to DHFR and cannot be removed chemically.
  • the atomic coordinates of the hydrogen atom constituting the amino acid residue present in DHFR were calculated by PDBFIL, which is one of the programs constituting GRE EN. Weiner et al.'S ab initio calculation results (Weiner, SJ, Kollman, PA, Case, DA, Singh, UC, Ghio, C., Alagona, G., Prof eta, S., Jr. and Weiner, P , J. Am. Cheni. Soc., 106, (1984) 765-784), and charged the atoms constituting the amino acid residue present in DHF R. However, it was assumed that the power of aspartic acid at position 27 was ionic to carboxylate anion.
  • a hydrogen bond number was added to the heteroatom constituting the hydrogen bondable functional group present in DHFR by PDBFIL.
  • Three-dimensional grid points were generated at 0.4 A intervals in the rectangular parallelepiped area, and grid point information was calculated for each three-dimensional grid point. Hydrogen, carbon, nitrogen, and oxygen atoms present in the methotrexate molecule were used as probe atoms.
  • the inhibitor methotrexate hereinafter referred to as “MTX”
  • DHF substrate dihydrofolate
  • the following treatment was performed by removing the acetic acid group at the terminal of the MTX molecule.
  • the atomic coordinates of MTX As the atomic coordinates of MTX, the atomic coordinates of the single crystal structure obtained from the Cambridge Crystallographic Database were input. The charge of each atom of MTX was calculated using the DO method in the M0PAC program. Since it is known that the nitrogen at the 1-position of the pteridine ring of MTX is susceptible to protonation, the charge was calculated on the assumption that it was protonated. In the structural formula in Figure 3, the heteroatoms circled were designated as hydrogen-bonding heteroatoms, and hydrogen-bonding numbers were added. For the bonds a to d with arrows in the MTX molecular structure shown in Fig.
  • the torsion angle is rotated by 60 ° in the range of 0 to 360 ° for bond a, and 0 to 180 for bond b. Rotate by 60 ° in the range of 0 °, 0 ° or 180 ° for bond c and 180 for bond d. As a result, the conformation of the MTX molecule was generated.
  • the number of hydrogen bond combinations N (i) when i hydrogen bonds are formed is an enormous number as shown below.
  • the time required for the (PP method) was shorter (the time required from the input of the atomic coordinates of the MTX molecule to the optimization of the complex structure was about 30 minutes). Also, when a stable complex structure is searched by docking the entire structure of the MTX molecule to DHFR at a stretch, the partial structure of the molecule is docked to DHFR, and based on the result, the entire structure of the molecule is considered. The same stable complex sperm was obtained when the search for Angogo was made. From the obtained 11 initial complex models, 5 models were selected in ascending order of enezoregi, and for each model, the enenoreggie was minimized using a flat ER program to obtain the maximum composite model. .
  • the energy minimization of the AMBER program improved both the energy value and the number of hydrogen bonds in each model, and changed the ranking for some models. These facts suggest that the local modification of the biopolymer structure is not negligible.
  • Table 2 shows the number of hydrogen bonds and the total enezoregi of the higher-order stable complex model finally obtained.
  • Fig. 4 shows the model with the lowest energy (-176.71 Kcal / mol).
  • the bold line shows the molecular structure of MTX
  • the dotted line shows a part of the molecular structure of DHF R.
  • the binding mode of the DHFR-MTX complex in this complex model improved the binding mode of the DHFR-MTX complex in the crystal structure of the complex obtained by X-ray crystal Wf.
  • the binding mode between DHFR and its substrate, DHF has been elucidated by X-ray analysis, but not L, but from the stereospecificity of tetrahydrofolate, the product of the enzymatic reaction, a binding mode different from MTX was estimated. I have.
  • the structure of the stable DHFR-DHF complex was searched in the same manner as in Example 1 without any such prejudice.
  • the atomic coordinates of DHF the atomic coordinates created by performing atom substitution based on the atomic coordinates of the crystal structure of MTX alone were used.
  • the charge of each atom of DHF was calculated in the same manner as in Example 1.
  • a heteroatom surrounded by a circle is designated as a hydrogen-bonding heteroatom, and a hydrogen bond number is added.
  • Table 2 shows the number of hydrogen bonds and the total energy of the higher-order stable complex model finally obtained.
  • Fig. 7 shows the most stable complex model showing the minimum energy (-173.46 Kcal / mol).
  • the bold line shows the molecular structure of DHF
  • the dotted line shows a part of the molecular structure of DHF R.
  • the conformation of DHF in the most stable complex model was different from that of MTX in the crystal structure of the DHFR-MTX complex, and the face of the pteridin ring was inverted.
  • the binding mode of DHF to DHFR in the most stable complex model was in good agreement with the binding mode of DHF to DHFR (FIG. 8, (b)) estimated from the stereospecificity of the DHFR enzyme reaction product.
  • the method of the present invention has made it possible to reliably select a small number of composite structures including a highly stable structure from all possible composite structures of biopolymer-ligand molecules.
  • the method of Yoshiaki of the present invention has made it possible to search for a stable complex of a biomolecule-ligand molecule without human intervention.
  • the method of the present invention has made it possible to search for a highly reliable and stable biopolymer-ligand molecule stable complex structure.
  • the search for the polymer structure of the biopolymer-ligand molecule which takes into account the degree of freedom of the conformation of the ligand molecule and sufficiently performs the quantitative evaluation of the intermolecular interaction, was carried out. Now it is possible to do. Furthermore, the method of the present invention makes it possible to search for a stable complex structure even when the number of hydrogen bonds between biomolecule-ligand molecules is small, for example, when there is only one hydrogen bond. Industrial applicability
  • a novel lead compound can be searched for by applying the method of the present invention to a large number of ligand candidate compounds for a certain target biopolymer.

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Description

明 細 書 生体高分子一リガンド分子の安定複合体構造の探索方法
技術分野
本発明は、 医薬、 農薬、 その他の生理活性化合物の構造設計に利用できる生体 高分子一リガンド分子の安定複合体構造の探索方法に関する。 背景技術
薬物や生体内活性物質が生理活性を発現するには、 標的となる生体高分子 (細 胞間のシグナル伝達に関与する薬理学的受容体だけでなく、 酵素、 サイトカイン 蛋白その他の蛋白質、 およびそれらを主成分とする複合体、 核酸を含む) に強く 結合することが必要である。 1 9 6 0年以降、 数多くの生体高分子の立体構造が X線結晶構造解析によって原子レベルで明らかにされ、 その成果はプロティンデ 一夕バンクに収められて公開されている。
これら生体高分子に結合する低分子量の化合物分子 (薬物分子、 酵素の基質. 阻害剤 ·補酵素分子、 その他) をリガンド分子と呼ぶ。 リガンド分子としては、 薬物分子の候補、 例えばこれから合成しょうとする薬物分子も含む。
こうした生体高分子とリガンド分子の安定な結合には、 生体高分子の立体構造 中にあるリガンドを結合する溝や窪み (リガンド結合部位と呼ぶ) の形状とリガ ンド分子の表面の形状がカギ穴とカギのように相補的になっていること、 及び、 両分子の間に特別な親和力をもたらす相互作用カ斕くことが必要である。 これら の分子間相互作用の中で水素結合、 静電相互作用、 疎水相互作用などが特に重要 なことが、 生体高分子とリガンド分子の複合体の結晶解析によって知られている。 ある任意の化合物分子が、 標的の生体高分子と安定な複合体を形成できるかどう か、 できるとしたらどのような結合様式 (生体高分子のリガンド結合部位のどの 官能基が、 リガンド分子のどの官能基とどのような相互作用しているか) の複合 体なのか、 それがどの程度安定な複合体かを知ることは、 薬物設計や構造活性相 関において極めて重要である。安定な結合様式を探ることは、 配座変化の自由度 のあるリガンド分子にあっては、標的生体高分子に結合した時の分子配座 (活性 配座) を同時に決定することを意味し、 これもまた薬物設計に重要である。 複合体として自由エネルギー的に最も安定な構造をとる際には、 リガンド分子 の構造は、 リガンド分子単独での結晶構造、 溶液中での構造、 各種エネノレギ一計 算で得られるエネノレギー最安定(または極小) 構造とは異なることが多いことが 知られている。
すべての興味あるリガンド分子について、 X線結晶解析など実験的な手法で生 体高分子との結合様式を決定することは不可能である。 1つ 1つのリガンド分子 にっ 、て生体高分子との結合様式を実験的な手法で解析することは多大の労力と 時間を とすることが第 1の理由である力 リガンド分子が酵素基質である場 合には、 酵素反応が進んでしまうために安定複合籠造が実験で検出できない場 合もあるし、 リガンド分子である化合物が実在はしても入手が困難なこともある からである。 さらに架空のリガンド分子化合物につ t、て生体高分子との結合様式 と複合体の安定性を予測し、 実際に合成してみる価値があるかどうかを判断する ことが要求されることもある。 このような予測は、 特に、 分子設計によって、 新 し 、薬物や活性物質を考案する場合にお t、て極めて有用性が高 tゝ。
立 ^造が の生体高分子に対する、 任意の構造のリガンド分子 p安定な結 合様式をシミュレートする研究や作業をドッキングスタディと呼ぶ。従来、 ドッ キングスタディは、分子模型を使って行なわれてきたが、 分子模型を組み立てる 時間や労力がかかること、 模型の精度や結果の再現性が低いこと、及び定量性が ないといった問題点があった。 このような問題点を解決する方法として、最近で はコンピュータとコンピュータグラフィックスを用いたシミュレーション手法が ^^に用いられている。
コンピュータとコンピュータグラフィックスを用いたシミュレーション手法に おいては、 コンピュータグラフィックス画面上で対話的に、視覚的な判断によつ て大まかな初期複合体構造を設定したのちに、 計算科学的に精密化、定量化する ことが最も一般的に行なわれている。 しかし、 このやり方では、 結合様式や分子 配座について作業者の先入観が入り易く、 客観的に膨大な可能性の中から正しい 解に到達することが極めて難しい上に、 時間と労力がかかる。 また、 作業者によ つて結果が異なるなど、 結果の信頼性や再現性にも欠ける。
このような問題点を解決するために、 作業者の主観が介入しな 、ですむ方法に ついて 2、 3の研究がなされている。 Kuntzらは、 リガンド分子を数個の球で近 似的に表現し、 分子配座の自由度の代わりに複数の球の相対的関係を変化させつ つ、 受容体のリガンド結合部位にフィッ卜するかどうかを判定するプログラムを 発表している (Docking Flexible Li ands to Macromolecular Receptors by Mo lecular Shape, R. L. Des Julais, R. P. Sheridan, J. Scott Dixon, L D. Kuntz 、 及び R. Venkataraghavan: J. Med Chem. (1986) 29 , 2149-2153) 。 しかし、 この方 法は水素結合をはじめとする特異的な分子間相互作用を扱うことができないので、 安定な複合体を形成する結合様式や配座を確実に決定するには有効でない。
また、 F. Jiang らは、 Kuntz らの注目した形状の相補性の他に水素結合性、 静 電相互作用などの分子間相互作用を定性的に考慮した自動ドッキング法を考案し た (F. Jiang, S. Kim, J. ol. Biol. 219_, 79 ( 1991))。 しかし、 この方法は、 リガンド分子の配座の自由度を考慮していない上に、 分子間相互作用に関する定 量的な評価が不十分である。
他の方法も研究されているが、 いずれも、 分子間の特異的相互作用が考慮され てなかったり、 リガンド分子の配座の自由度が考慮されず、 はじめに与えた配座 (単独での結晶構造など) でしかドッキング状態が探索出来な ゝなどの欠点を有 し、 有効な方法にはなっていない。一般に、 生体高分子に対するリガンド分子の 結合様式とリガンド分子の活性配座は完全に力ップルしているの ?、 その両方を 考慮しないと意味がない。結合様式と活性配座は、 それぞれに膨大な数の可能性 があり得、 その全ての組合せを考慮しないと、 可能な複合体構造を網羅したこと にならないが、 結合様式と活性配座の全ての組合せを考慮した複合^^造の探索 方法は今だに歡されて 、な L、。
従って、 本発明は、 上記の問題点を解決した、 生体高分子一リガンド分子の安 定複合体構造の探索方法を提供することを目的とする。
また、 本発明は、 生体高分子に対するリガンド分子の結合様式とリガンド分子 の活性配座を同時に探索することができる方法を提供することを目的とする。 発明の開示
本発明者らは、 鋭意努力した結果、 生体高分子一リガンド分子間の相互作用と して、 7i素結合、 静電相互作用、 及びファンデルワールス力を考慮して安定複合 体の結合様式を探索すると同時にリガンド分子の活性配座を探索することによつ て、 任意のリガンド分子を生体高分子のリガンド結合領域に自動的にドッキング させる方法を開発して、上記の課題を解決することに成功した。すなわち、 本発 明は、
( 1 ) 生体高分子中の水素結合性官能基の水素結合の相手となり得るヘテロ原子 の位置に設定したダミ一原子とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子との対応 づけを組合せ的に網羅することにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合 様式を網羅する第 1工程、
( 2 )前記のダミ一原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド分子 の水素結合性部分の配座を同時に推定する第 2工程、 及び
( 3 ) 第 2工程で得られた水素結合様式と配座毎に、 リガンド分子中の水素結合 性へテロ原子とダミ一原子との対応関係に基づいてリガンド分子の全原子の座標 を生体高分子の座標系に置き換えることにより生体高分子一リガンド分子の複合 造を得る第 3工程 ― を含む生体高分子一リガンド分子の安定複合体の構造を探索する方法を提供する ものである。
また、本発明は、
( 1 ) 生体高分子中の水素結合性官能基の水素結合の相手となり得るヘテロ原子 の位置に設定したダミ一原子とリガンド分子の部分構造中の水素結合性へテロ原 子との対応づけを組合せ的に網羅することにより、生体高分子一リガンド分子間 の水素結合様式を網羅する第 1工程、
( 2 ) 前記のダミ一原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド分子 の部分構造の配座を同時に推定する第 2工程、
( 3 ) 第 2工程で得られた水素結合様式と配座に基づ 、て、前記のリガンド分子 の部分構造中で不可能な水素結合様式を与えるダミ一原子と水素結合性へテロ原 子の組合せ、 及びダミー原子と水素結合を形成し得ない水素結合性へテロ原子を 保存する第 3工程、
( 4 ) 第 3工程で保存された水素結合性へテロ原子を含む組合せ、 及び第 3工程 で保存されたダミ一原子と水素結合性へテロ原子の組合せを除 ヽて、 ダミ一原子 とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子との対応づけを組合せ的に網羅するこ とにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式を網羅する第 4工程、
( 5 ) 前記のダミ一原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド分子 の水素結合性部分の配座を同時に推定する第 5工程、 及び
( 6 ) 第 5工程で得られた水素結合様式と配座毎に、 リガンド分子中の水素結合 性へテロ原子とダミー原子との対応関係に基づいてリガンド分子の全原子の座標 を生体高分子の座標系に置き換えることにより生体高分子一リガンド分子の複合 体構造を得る第 6工程
を含む生体高分子一リガンド分子の安定複合体の構造を探索する方法を提供する ものである。 この方法により、 生体高分子一リガンド分子の安定複合体構造の探 索の高速化が図れ、 また、 生体高分子及び Z又はリガンド分子が複雑な構造を有 する場合にも、 安定な複合体の構造を短時間に探索することが可能となる。
さらにまた、 本発明は、
( 1 ) 生体高分子中の水素結合性官能基の水素結合の相手となり得るヘテロ原子 の位置に設定したダミー原子とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子との対応 づけを組合せ的に網羅することにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合 様式を網羅する第 1工程、
( 2 ) 前記のダミ一原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド分子 の水素結合性部分の配座を同時に推定する第 2工程、
( 3 ) 第 2工程で得られた水素結合様式を保持しつつ、 ダミー原子とリガンド分 子中の水素結合性へテロ原子の位置が一致するようにリガンド分子の配座を最適 化し、 次いで、 分子内エネルギーの高いリガンド分子の配座を除去する第 3工程、 ( 4 ) 第 3工程で除去されなかった配座毎に、 リガンド分子中の水素結合性へテ 口原子とダミ一原子との対応関係に基づ 、てリガンド分子の全原子の座標を生体 高分子の座標系に置き換えることにより生体高分子一リガンド分子の複合体構造 を得る第 4工程、
( 5 ) 第 4工程で得られた複合^ ^造から、 リガンド分子中の水素結合性部分の 分子内エネルギー及び生体高分子一該リガンド分子中の水素結合性部分の分子間 相互作用エネルギーの高い複合体構造を除去し、 次いで、 残った複合体構造につ 、て構造の最適化を行う第 5工程、
( 6 ) 第 5工程で得られた複合體造毎に、 リガンド分子の非水素結合性部分の 配座を発生させて新たな複合体構造を得る第 6工程、 及び
( 7 ) 第 6工程で得られた複合^ ^造から、 リガンド分子全体の分子内エネルギ 一及び生体高分子一リガンド分子の分子間相互作用エネルギーの高い複合腿造 を除去し、 次いで、残った複合赚造について構造の最適化を行う第 7工程 を含む生体高分子一リガンド分子の安^合体の構造を探索する方法を提供する ものである。 この方法により、 生成させる配座の数を少なくしても適切な複合体 構造の選択が可能となり、 精度のよい安定複合体が得られる。
本発明において、 生体高分子とは、生体に見出される高分子の他、 ,生体に見出 される高分子を模擬した分子をも含む である。
水素結合性官能基とは、 7J素結合に関与すると考えられる官能基及び原子を含
¾J* ^ί§"、こあ Ο
7]素結合性へテロ原子とは、 リガンド分子中に存在する水素結合性官能基を構 成するへテロ原子をいうものとする。
水素結合性部分とは、 リガンド分子の構造のうち、 ダミ一原子と対応づけられる 7j素結合性へテロ原子を含む構造部分をいうものとし、 非水素結合性部分とは、 7J素結合性部分以外の構造部分をいうものとする。 図面の簡単な説明
第 1図は、 本発明の方法における主要なステップを模式的に示したものである。 第 2図は、 本発明の方法のフローチャートを示す。 図中、 Sは各ステップを示 す。
第 3図は、 メ トトレキセート (MTX) 及びジヒドロ葉酸 (D HF) の分子構 造を示す。 図中、 丸で囲った原子は水素結合性へテロ原子であり、 a〜dは、 系 統的に回転させる結合を示す。
第 4図は、 本発明の方法により得られた、 ジヒドロ葉酸還元酵素ーメ トトレキ セート複合体の最安定モデルの構造を示す。 図中、 太線はメ トトレキセ一卜の分 子構造を、 細線はジヒドロ葉酸還元酵素の分子構造の一部を示す。
第 5図は、 入力構造として用いた単独時の結晶構造中のメ トトレキセ一トの配 座 (a ) 、 本発明の方法により得られた、 ジヒドロ葉酸還元酵素ーメ トトレキセ 一ト複合体の最安定モデル中のメトトレキセ一トの配座 (b) 、 及びジヒドロ葉 酸還元酵素一メ トトレキセ一ト複合体の結晶構造中のメ トトレキセ一トの配座 (c ) を示す。
第 6図は、 ジヒドロ葉酸還元酵素反応の立体特異性を示す。
第 7図は、 本発明の方法により得られた、 ジヒドロ葉酸還元酵素ージヒドロ葉 酸複合体の最安定モデルの構造を示す。 図中、 太線はジヒドロ葉酸の分子構造を、 点線はジヒドロ葉酸還元酵素の分子構造の一部を示す。
第 8図は、 ジヒドロ葉酸還元酵素一メ トトレキセ一ト複合体の結晶構造中のメ トトレキセ一トのジヒドロ葉酸還元酵素への結合様式の模式図 (a ) と、 ジヒド 口葉酸還元酵素反応生成物の立体特異性から推定されるジヒドロ葉酸のジヒドロ 葉酸還元酵素への結合様式の模式図 (b) を示す。 発明を実施するための最良の形態
第 2図のフローチヤ一トを参照して、 本発明の好ましい実施態様について説明 する。 なお、 第 2図において、 Sは各ステップを示す。
まず、 生体高分子を構成する原子の番号と原子座標 (但し、 7素原子の原子座 標は除く。 ) を入力する (S 1 )。
生体高分子の原子座標は、 X線結晶解析や NMR解析により得られた立体構造 から算出するか、 蛋白質結晶データベース等を利用して入手する力、、 またはこれ らの情報をもとに構築された生体高分子モデルの原子座標を用いることができる。 この原子座標は、三次元座標系で表されることが好ましい。 また、生体高分子に
結合して構造的にも機能的にも重要な役割を果たす補因子を生体高分子の と して見做して、該補因子を結合した状態の生体高分子の原子座標を入力して、以
後のステップを行ってもよい。上記の補因子としては、補酵素、水分子、鉄ィォ
ン等を挙げることができる。
次に、前記の生体高分子中に存在するァミノ酸残基を構成する水素原子の原子 ¾ 座標を算出する (S 2 ) 。
一般に、生体高分子の水素原子の位置は、 X線結晶簾や NMR解斤等の実験
的手法では求められず、 また、 蛋白質結晶データベース等からも水素原子に関す
る情報は入手できないので、生体高分子中に存在するァミノ酸残基の構造に基づ
いて、該アミノ酸残基を構成する水素原子の原子座標を算出する。回転可能なァ ミノ酸残基に結合しているために、 その原子座標を一義的に決定できない水素原
子は、 トランス位に存在すると仮定して原子座標を算出することが好まし 、。
次に、生体高分子中に存在するアミノ酸残基を構成する原子に電荷を付加する
(S 3 ) o
この電荷の値としては、各アミノ酸について算出されている文献値、例えば、
Weinerの値 (Weiner, S. J. , Kollman, P. A. , Case, D. A. , Singh, U. C. , Ghio,
, Alagona, G., Prof eta, S., Jr. and Weiner, P. , J. Am. Chem. Soc. , 106
(1984)765-784)を用いることができる。
次に、生体高分子中に存在する水素結合性官能基を構成するへテロ原子につ 、 て、水素結合番号を付加する (S 4 ) 。
水素結合番号は、以下の表 1に従って、付加することができる。
表 1 . 水素結合性官能基を構成する原子の種類と水素結合番号 水素結合番号 水素結合性官能基を構成する原子の種類
1 第一アミンの s p 2 の N
2 第一アミンの s p 3 の N
3 アンモニゥムイオンの s p 3 の N
4 アミ ドの s p 2 の N
5 第二アミンの s p 3 の N
6 芳香族の N
7 プロトン化した芳香族の N
8 第三アミンの N
9 プロトン化した第三アミンの N
1 0 C一 O結合の回転可能なヒドロキシルの 0
1 1 エーテルの 0
1 2 カルボニルの 0
1 3 カルボシキレートァニオンの 0
1 4 カルボン酸の 0
1 5 ホスフヱ一卜の 0
1 6 水分子の 0
1 7 メルカプトの S
1 8 チォエーテルの S
1 9 水素の位置が固定したヒドロキシの 0 次に、 リガンド結合領域を指定する (S 5 ) 。
上記の領域としては、 生体高分子の任意の部位を含む領域を選択することがで きる。 目的に応じて、 リガンド結合ポケット、 その周辺の生体高分子の部位、 及 び、 必要に応じて、 エフヱクタ一等の他の分子の結合する生体高分子の部位を含 む領域を、 例えば、 第 1図の (a)に示すように、 直方体として指定することができ る。 リガンド結合ポケットとは、 生体高分子の凹んだ分子表面にあり、基質や阻 害剤などのリガンド分子が結合する内孔を 、う o
リガンド結合領域の範囲の指定には、 プログラム GR E E N (Journal of Com puter Ages Molecular Design, vol. 1, p. 197-210 (1987), Nobuo Tomioka, Ak iko Itai, and Yoichi Iitaka)の機能の を利用することができる。
S 5で指定した領域内に三次元格子点を発生させ、 各三次元格子点につき、 番 号付けと格子点 の算出を行う (S 6 )。
三次元格子点とは、 生体高分子のリガンド結合領域内の一定間隔毎に発生させ る三次元格子上の点をいうものとする。格子点情報とは、 各三次元格子点上にプ ローブとなる原子があるとして算出した生体高分子とプローブ原子の間に働くフ ァンデルワールス相互作用エネルギー及び静電相互作用エネルギー、並びに水素 結合性等のリガンド結合領域の局所的な物理化学的†f¾を含む ¾ :である。
この三次元格子点の格子点情報を利用することにより、 以後のステップで行う 生体高分子とリガンド分子の分子間相互作用エネルギーの近似計算の高速化が可 能となり、 また、 以後のステップで設定するダミー原子の位置を合理的に決定す ることが可能となる。 その結果、 生体高分子とリガンド分子のドッキングモデル を短時間に網羅的に探索できるようになる。
三^格子点は、 0. 3〜2. 0オンングストローム、 好ましくは、 0. 3〜0. 5ォ ングストロームの一定間隔で S 5で指定した領域内に発生させてよい。
プローブ原子としては、 リガンドとなる可能性のある化合物に含まれるすべて の原子種を採用することが好ましい。
各三次元好点に配置した各プローブ原子と生体高分子との間に働くファンデ ルワールス相互作用エネルギーは、 実験的なポテンシャル関数を用 、て常法の原 子対計算により算出することができる。 実験的なポテンシャル関数としては、 以 下の式で表されるような Lemiard-Jones type関数を用いることができる。
GT . i =∑ (Α/ Γ ϋ 12-Β/ Γ π 6 )
(式中、 iはプローブ原子の位置を示す番号を、 jは生体高分子の原子の番号を 表す。 A及び Bは極小のポテンシャルの位置と大きさを決定するパラメーターを 表す。 r は、 i番目に配置したプローブ原子と生体高分子の j番目の原子との 間の距離を表す。 )
リガンド分子をこの三次元格子点上に置 L、た時の、 リガンド分子—生体高分子 間のファンデルワールス相互作用エネルギーは、 以下の式から算出することがで o
N
L v d w = OT v d w, m0
(式中、 mはリガンド分子中の原子の番号であり、 Nはリガンド分子中の原子の 数であり、 m。 は m番目の原子に最も近い三次元格子点の番号である。 ) 上記の A及び Bのパラメータ一としては、 Weinerらの値 (Weiner, S. J. , Kol lman, P. A. , Case, D. A. , Singh, U. C , Ghio, C., Alagona, G., Prof eta, S., Jr. and Weiner, P. , J. Am. Chem. Soc. , 106(1984)765-784) を用いることが できる。
各三次元格子点に配置した各プローブ原子と生体高分子との間に働く静電相互 作用エネルギーは、 以下の式から算出することができる。
Gc i c. i / ε r ϋ
Figure imgf000013_0001
(式中、 i 、 j、 及び r uは、 前に定義した通りであり、 は生体高分子の j 番目の原子の電荷を、 Kはエネルギー単位を変換するための定数を、 £は誘電率 を表す。 )
上記の誘電率として、 一定の値を用いてもよいが、 Warshel らが提案している ような に依存した値 (Warshel, A. , J. Phys. Chem. , 83 ( 1979) 1640-1652) を用いること力好ましい。
リガンド分子をこの三次元格子点上に置いた時の、 リガンド分子一生体高分子 間の静電相互作用エネゾレギ一は、 以下の式から算出することができる。
N
£ e 1 c =∑ ¾ m J e 1 c, mO
m= 1
(式中、 m、 N、 及び m。 は上で定義した通りである。 )
水素結合性とは、 その三次元格子点に水素供与性の原子又は水素受容性の原子 のどちらの原子が配置されれば、 生体高分子の水素結合性官能基と水素結合を形 成し得るカヽ、 あるいは、 どちらの原子が配置されても生体高分子の水素結合性官 能基と水素結合を形成し得ないことに関する情報を 、う。
三次元格子点の水素結合性は以下のようにして求めることができる。 ある三次 子点 Pと、生体高分子中に存在するある水素供与性原子 Dとの間の距離 D P が水素結合を形成し得る距離(例えば、 2. 5〜3. 1オングストローム) であり、 かつ、 P、 7K素 H、及び Dがなす角度 ZDHPが水素結合を形成し得る角度(例 えば、 3 0 °以上)であれば、 この三次元格子点は水素受容性であると見做して よい。同様に、 ある三次元格子点 Pと、生体高分子中に存在するある水素受容性 原子 Aとの間の距離 D Aが水素結合を形成し得る距離であり、かつ、 p、 i 子対 L、及び Aがなす角度 ZAL Pが水素結合を形成し得る角度であれば、 この 三次元格子点は水素供与性であると見做してよい。ある三次元格子点が、水素受 容性でも、水素供与性でもない場合は、水素結合性は無いと見做してよい。 7J素 受容性である三次元格子点に 1、水素^ 性である三 格子点に 2、水素結合 性のない三 子点に 0の番号を付加することにより、三次元格子点の水素結 合性を表すことができる。
生体高分子中に存在する水素結合性官能基であって、 S 5で指定した領域内に 存在するものの中から、 リガンド分子と水素結合を形成することが予想されるも のを選択する (S 7 ) 。
複数の水素結合性官能基が存在する場合には、 その重要度に応じて選択する。
S 6で算出した三次元格子点の格子点情報に基つ 、て、 S 7で選択した各水素 結合性官能基に対してダミー原子を設定する (S 8 ) 。
このステップは、 まず、 S 6で算出した三次元格子点の水素結合性に基づいて、 S 7で選択した各水素結合性官能基と水素結合を形成し得る領域^ (以下、 「水素 結合性領域」 という。) を決定し、次いで、水素結合性領域内でかつ、他の原子 のファンデルワールス半^ こ、適当な数、例えば 5〜2 0個の三次元格子点が 存在する水素結合性領域を構成する三次元格子点の中心にダミ一原子を配置する ことにより行うことができる。 Ti素結合性領域は、 同じ水素結合性を有し、互い に隣接する一群の三次元格子点から構成される領域である。
ダミ一原子には、その中心に該ダミー原子を配置した三次元格子点と同じ水素 結合性を与えておく o
1個の水素結合性官能基から 2個以上のダミ一原子が設定されたり、 1個のダ ミ一原子も設定されなかったりする。 次に、 リガンド分子を構成する原子について、 番号、 原子名、 原子タイプ番号、 原子座標、 電荷、 及び、 その原子が水素結合性へテロ原子である場合には水素結 合番号を入力する (S 9 ) 。
リガンド分子を構成する原子の原子タイプ番号は、 Weinerら (Weiner, S. J., Kol lman, P. A. , Case, D. A. , Singh, U. C , Ghio, C , Alagona, G., Prof eta, S., Jr. and Weiner, P. , J. Am. Chem. Soc , 106( 1984)765-784) の行った番号付 けに従うことが好ましい。
リガンド分子の原子座標は、 単独の結晶の構造解析、 結晶データベースやエネ ルギー計算を基にしたモデルビィルディングより得られた立体構造等から算出す ることができる。 リガンド分子の原子座標が表す立体構造は、 基本的には、 原子 間の結合距離、 結合角等の幾何学的な量さえ正確であれば、 配座は全く問題とし ない。 しかし、 リガンド分子を構成する各原子の電荷をできるだけ正確に算出す るためには、 ある程度単独で安定な立体構造を与える原子座標を入力することが 好ましい。
リガンド分子を構成する各原子の電荷は、 M0PAC プログラム中の M D0法や AMI 法用いて分子軌道法計算により算出することができる。
リガンド分子中に存在する水素結合性へテロ原子の水素結合番号は、前記の表 1に従って、 付加することができる。
リガンド分子の種類を変えて、 S 9〜S 3 1のステップを繰り返すことにより、 同じ生体高分子に対する種々のリガンド分子の結合様式を探索することができる。 生体高分子とリガンド分子との間に形成される水素結合の数の最小値 1 m i n と 最大値し を指定する (S 1 0 ) 。
これらの値としては任意の値を設定してよいが、 生体高分子と既知のリガンド 分子が形成する水素結合の数から予想される値の前後の値を指定することが好ま しい。
リガンド分子について、 ねじれ回転が可能な結合とその回転の様式を指定する (S 1 1 )
ねじれ回転可能な結合が単結合の場合は、 1 0 °〜1 2 0 ° の一定の回転角で 系統的に回転させる回転様式を指定することが好ましい。 ねじれ回転可能な結合 が環構造内にある場合には、 可能な種々の環構造を順次ファイルから入力してい く方法を指定することが好まし 、。
ダミ一原子と、 リガンド分子中の水素結合性へテロ原子との間に対応関係をつ ける (S 1 2 ) 。
ダミ一原子の数を m個、 リガンド分子中に存在する水素結合性へテロ原子の数 を n個とすると、 i個の水素結合を形成する対応関係 (組合せ) の数 N(i ) は、 m P i X n C i (式中、 Pは順列、 Cは組合せを表す。) 個となる。 ダミー原子 と、 リガンド分子中の水素結合性へテロ原子の可能な組合せをすベて選択するこ とが好ましい。
1 mi n ≤ i≤ \ mar の関係を満たすすべての iについて、 S 1 2〜S 3 0のス テツプを繰り返す。 その結果、 ダミー原子と、 リガンド分子中に存在する水素結
1 ma. x
合性へテロ原子との∑ N(i)個の組合せがすべて選択されることとなる。 これに
= I m n
よって、 生体高分子とリガンド分子が形成する水素結合の全組合せが選択される ことになり、 生体高分子とリガンド分子の結合様式を系統的に、 また効率的に探 索できるようになる。
S 1 2で対応関係をつけた、 ダミー原子とリガンド分子中の水素結合性へテロ 原子との組合せの一つを選択する (S 1 3 ) 。 .
この時、 ダミー原子の Tf 素結合性とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子の 水素結合性が一致しな 、組合せは選択しな 、。
S 1 2で対応関係をつけたすベての組合せについて、 S 1 3〜S 3 0のステツ プを繰り返す。
次に、 S 1 3で選択した組合せに含まれるダミー原子について、 各ダミー原子 間の距離を算出する (S 1 4 )。
ダミ一原子の数及びリガンド分子中の水素結合性へテロ原子の数の両方が 1個 の場合は、 S 1 4〜S 2 1のステップを行わずに、 S 2 2のステップへ飛び、 次 いで、 S 2 3〜S 2 5のステップを行わずに、 S 2 6のステップへ飛ぶ。 また、 ダミ一原子の数又はリガンド分子中に存在する水素結合性へテロ原子の数のどち らか一方が 1個の場合は、 S 1 4〜S 2 1のステップを行わずに、 S 2 2のステ ップへ飛ぶ。 次に、リガンド分子を、 7素結合性部分と非水素結合性部分に分割する(S 1 5 )c 例えば、 第 1図の (b) のようにリガンド分子を水素結合性部分と非水素結合性 部分に分割する。
S 1 5で分割したリガンド分子の水素結合性部分について、 ねじれ回転が可能 な結合とその回転の様式を選択する (S 1 6 ) 。
S 1 6で選択した結合を、 S 1 1で指定したその回転様式に従って回転させる ことによって、 リガンド分子の配座を順次生成させる (S 1 7 ) 。
生成した配座毎に、 以後の S 1 8〜S 3 0のステップを繰り返す。
S 1 7で生成した配座について、 S 1 3で選択した組合せに含まれるリガンド 分子中の各水素結合性へテロ原子の原子間距離を算出する (S 1 8 ) 。
S 1 4で得られたダミー原子の原子間距離と、 S 1 8で得られた、 対応するリ ガンド分子中の水素結合性へテロ原子の原子間距離との差の 2乗の和である Fの 値が一定の範囲以上となるリガンド分子の配座を除去する (S 1 9 ) 。
このステップにより、 生体高分子とリガンド分子の水素結合様式及びリガンド 分子の配座の可能性を効率的に網羅することができる。
Figure imgf000017_0001
とすると、
Figure imgf000017_0002
(式中、 nは水素結合の数を、 r d iは i番目のダミー原子間距離を、 r i iはリガ ンド分子中の水素結合性へテロ原子の i番目の原子間距離を、 k a は Fの下限値 を、 k a , は Fの上限値を表す。 )
である配座以外の配座を除去する。 上記の k a としては、 0. 6〜0. 8、 k a , と しては、 1. 2〜1. 4が好ましい。
S 1 9で除去されなかったリガンド分子の配座について、 前記の Fの値が最小 になるように、 リガンド分子の水素結合性部分の配座を最適化する (S 2 0 ) 。 このステップにより、 生体高分子とリガンド分子が安定な水素結合を形成する ように、 リガンド分子の配座が修正される。
リガンド分子の水素結合性部分に存在するねじれ回転可能な結合のねじれ角を 変数として、 前記の関数 Fの値を Fletcher- Powell法 (R. Fletcher, M. J. D. Powell, Computer J., _6, 163 (1968) ) を用いて最小化することにより、 リガンド分子の 水素結合性部分の配座を最適化することができる。
次いで、 S 2 0のステップで最適化したリガンド分子の水素結合性部分の分子 内エネルギーを算出して、 該分子内エネゾレギ一の値が一定値以上の配座を除去す る (S 2 1) o
例えば、 AMBER 4.0 の分子力場を用いてリガンド分子の水素結合性部分の分子 内エネルギーを算出した場合、 該分子内エネゾレギ一が 100 Kcal/mol以上となった 配座を除去してよい。
上記の S 2 1までのステップで得られた配座を有するリガンド分子の水素結合 性へテロ原子の座標と、 対応するダミー原子の座標とがー致するように、 リガン ド分子の原子座標を生体高分子の座標系に置き換える (S 2 2)。
それには、 Kabshの最小二乗法 (W.Kabsh, Acta Cryst., A32, 922(1976), W. Kabsh, Acta Cryst. , A34, 827(1978))を用いることができる。 このようにして、 可能な水素結合様式とリガンド分子の水素結合性部分の配座を同時に粗く推定す ることができる。
次いで、生体高^^とリガンド分子の水素結合性部分との分子間相互作用エネ ルギー (ファンデルワールス相互作用エネルギー及び静電相互作用エネノレギ一の 和) 、 及びリガンド分子の水素結合性部分についての分子内エネゾレギ一を算出す る (S 23)。
生体高分子とリガンド分子の水素結合性部分との分子間相互作用エネルギー E inter は、 リガンド分子中の各原子 kに最も近い三次元格子点の格子点情報のフ アンデルワールス相互作用エネルギー GTdw (k)及び静電相互作用エネルギー G elc (k)を用いて、以下の式から算出することができる。
Binter =∑ {G.dw (k) +Gelc 00 - Qfc }
(式中、 qk は原子 kの電荷を表す。 )
また、 リガンド分子の水素結合性部分の分子内エネルギー Eintra は、 既知の 方法で公開された既知の力場を用いて算出することができる。例えば、 Eintra は、 AMBER4.0等の公開された既知の力場を用いて、 以下の式により算出できる。
Eintra = ∑ ∑Va /2 { 1 +C0S( Π Φ—
Di hedra l s n ァ) } +∑ (Aij/Ru12— BijZR 6 ) +∑ (Qi Qj /eRii) i< i i < j
(式中、 Vn はねじれ角を構成する 4つの原子の原子タイプの並びに対して与え られている定数を、 nはねじれ角回転に対するポテンシャルの対称性を表す定数 を、 Φはねじれ角を、 yはねじれ角回転に対するポテンシャルの位相 (ねじれ角 を構成する 4つの原子の原子タイプの並びに対して与えられている。 ) を、 と B i はリカンド分子中の i番目と j番目の原子の原子タイプの対に対して設定 された定数を、 は i番目と j番目の原子間の距離を、 q< はリガンド分子中 の i番目の原子の電荷を、 Q i はリガンド分子中の j番目の原子の電荷を、 £は 誘電率を表す。 )
S 23で算出された分子間相互作用エネルギーと分子内エネルギーとの和が一 定値以上となったリガンド分子の配座を除去する (S 24) 。
例えば、 上記のエネルギーの和が 1500 kcal/mol 以上となった配座を除去する ことが好ましい。
S 2 で除去されなかった配座を有するリガンド分子の水素結合性部分の構造 を最適化する (S 25) 。
構造最適化計算により、 リガンド分子の水素結合性部分のねじれ角、 並びに、 リガンド分子の位置と方向を最適化することにより、 リガンド分子の水素結合性 部分の構造を最適化することができる。例えば、 以下の式から算出される全エネ ルギー Ettel が最小となるように、 Simplex法 (HITACHI.ライブラリープログ ラム, S0FSM ) 等によって、 リガンド分子の水素結合性部分の構造を最適ィ匕する ことができる。
E totai =Ei n ter + E i„t ra +Whb - Nhb - Chb
(式中、 Einter 及び Eintra は前記の通りであり、 hbは重み、 Nhbは水素結 合の数、 及び Chb は 1個の水素結合による安定化エネルギー (例えば、 2.5 kcal /mo 1) -を示す。 )
リガンド分子の非水素結合性部分のねじれ回転が可能な結合を、 S 1 1で指定 した回転様式に従って回転させることによって、 リガンド分子の配座を順次生成 させる (S 26) 。 生成した配座毎に、以後の S 2 7〜S 3 0のステップを繰り返す。
次いで、 生体高分子とリガンド分子との分子間相互作用エネルギー、 及びリガ ンド分子の分子内エネルギーを算出する (S 2 7 )。
上記の分子間相互作用エネルギー及び分子内エネルギーは、 S 2 3と同様の方 法で算出できる。但し、 S 2 3では、 リカンド分子の水素結合性部分についての み計算を行うが、 S 2 7では、 リカンド分子全体について計算を行う。
S 2 7で算出された分子間相互作用エネゾレギ一と分子内エネルギーの和が一定 値以上となったリガンド分子の配座を除去する (S 2 8 )。
上記のエネルギーの和の上限値としては、 1500kcal/molが好まし 、。
S 2 8で除去されなった配座を有するリガンド分子全体の構造を最適化する (S 2 9 )。
このステップにより、 生体高分子とリガンド分子の安定化された複合体、 及び リガンド分子の活性配座が得られる。
S 2 5のステップと同様の方法で、 リガンド分子の構造を最適化することがで きる。但し、 S 2 5では、 リカンド分子の水素結合性部分の構造のみ最適化を行 うが、 S 2 9では、 リカンド分子全体について構造の最適化を行う。 S 2 9まで のステップで得られた複合体の構造を初期複合体モデルということとする。 生体高分子の配座を変化させて、 生体高分子一リガンド分子の複合籠造を最 適化する (S 3 0 )。
S 2 9のステップまでは、 生体高分子を rigid なものとして扱ってきたが、 S 3 0においては、生体高分子の配座を変化させて、初期複合体モデルのェネル ギ一を極小化させる。 公開されている既知のエネルギー極小化計算プログラム AMBERを用いてこのエネゾレギ一を極小化することにより、初期複合体モデルの構 造を最適化することができる。 また、 このステップにおいては、 複合体の結晶構 造中に見られる全水分子やその他の分子を複合体構造中に配置して、複合 造 を最適化することが好ましい。 S 3 0のステップにより得られた複合体の構造を 最終複合体モデルということとする。
S 3 0までのステツプで得られた生体高分子一リガンド分子の複合 造のェ ネルギーを算出し、 該エネルギーの小さい順に複合体構造をランク付けする (S 3 1 ) 。
最終複合体モデルの構造のうち、 最小のエネルギーを与える構造力、 多くの場 合、 既に実験的に得られている複合体構造とよく一致する。 従って、 エネルギー が最小の構造を正しい複合体構造と考えるのが妥当である。 しかし、 用いた力場 の精度、 生体高分子の原子座標の精度、 その他の要因によって、 複合体のエネル ギ一の大きさの順位は多少変動するので、 エネルギー値の低い順に上位数個の複 合 造を考慮することが好まし 、0
また、 本発明のより好ましい実施態様においては、 生体高分子から非常に多く のダミ一原子が作成されることが予想される場合、 並びに、 リガンド分子がかな り大きな配座の自由度を有するか又は多くのへテロ原子を有する場合には、 S 9 のステップでリガンド分子に関する情報を入力した後、 リガンド分子の部分構造 を指定し、 この措定した部分構造について S 1 0〜S 2 4までのステップを行つ て、 その部分構造中で不可能な水素結合様式を与えるダミ一原子とリガンド分子 中の水素結合性へテロ原子の組合せ、 及びダミ一原子と水素結合を形成し得ない リガンド分子中の水素結合性へテロ原子の情報を保存する。 リガンド分子の部分 構造は、 いかなる構造的な制約を受けることなく任意に決めることができるが、 3個以上の水素結合性官能基を含む構造部分が好ましく、 その構造部分の配座の 自由度の有無は問わない。 次に、 リガンド分子の全体構造について S 1 0〜 S 3 1のステップをおこなうが、 前記の保存された水素結合性へテロ原子を含む 組合せ、 及び前記の保存されたダミー原子と水素結合性へテロ原子の組合せは S 1 2のステップで作成される対応関係の組合せから除かれる。 その結果、 試行 する組合せ及び配座の数が減り、 生体高分子一リガンド分子の安定複合体の構造 探索に要する時間が大幅に短縮される。 このような方法を Pre-Pruning法 (以下、 「P P法」 と記す。 ) と呼ぶこととする。
P P法は、 リガンド分子の部分構造中で不可能な水素結合様式やリガンド配座 は、 リガンド分子の全 ί¾造中でも不可能であるという推定に基づくものである。
Ρ Ρ法によって、 得られる生体高分子一リガンド分子の複合体構造の精度や信頼 性に全く影響を与えることなく、 探索時間を大幅に短縮することができるように
7よった 0 〔例〕
本発明の方法の有効性を示すために、 ジヒドロ葉酸還元酵素とその阻害剤また はその基質との複合体の構造探索に本発明の方法を適用してみた。 ジヒドロ葉酸 還元酵素は、 臨床薬の標的として広く研究されている酵素の一つであり、 種々の 阻害剤分子との複合体の結晶構造が解析されている。例えば、 ジヒドロ葉酸還元 酵素一阻害剤メトトレキセート複合体は結晶構造が実験的に解析されていること から、安定な複合籠造の騰のための方法論研究のモデルとして世界的にもよ く用いられている。
ジヒドロ葉酸還元酵素(以下、 「DHF R」 と記す。 ) の原子座標としては、 プロティンデータバンクェントリー 4 D F Rから入手できる大腸菌の DHF R— メトトレキセー卜の二元複合体の原子座標から得られる値を用いた。 DHFR— 葉酸一 NAD P +の三元複合体の結晶構造に基づき、 補因子 NAD P +分子の原 子座標を前記の二元複合体の原子座標に付加した。 また、 非常に強く DH F Rに 結合して化学的に除去できない 2個の水分子以外の全ての水分子は、前記の二元 複合体の原子座標から除去した。除去しなかった 2個の水分子のうちの一つは、 DHFRの 2 1位のトリブトファン及び 2 6位のァスパラギン酸に、 他の一つは 1 1 4位の口イシン及び 1 1 6位のトレオニンに水素結合している (第 8図を参 照のこと) 。
D H F R中に存在するァミノ酸残基を構成する水素原子の原子座標は、 GRE ENを構成するプログラムの一つである P D B F I Lにより算出した。 ま た、 Weinerらの ab initio計算の結果 (Weiner, S. J., Kollman, P. A. , Case, D. A., Singh, U. C., Ghio, C., Alagona, G., Prof eta, S., Jr. and Weiner, P. , J. Am. Cheni. Soc. , 106, (1984) 765-784)に基づいて、 DHF R中に存在するアミ ノ酸残基を構成する原子に電荷を付与した。但し、 2 7位のァスパラギン酸の力 ルボン酸側鏆はカルボキシレートァニォンにィォン化されていると仮定した。
DHFR中に存在する水素結合性官能基を構成するへテロ原子について水素結合 番号を P D B F I Lにより付加した。
ジヒドロ葉酸還元酵素一メトトレキセ一トニ元複合体の結晶構造において、 阻 害剤分子であるメ トトレキセ一卜が入っている内孔付近の 1 2. 8 X 1 6. 8 X 11.6 A3 の大きさの直方体の領域をリガンド結合領域として指定した。
三次元格子点を上記の直方体領域内に 0.4 A間隔で発生させ、 三次元格子点毎 に格子点情報を算出した。 プローブ原子としては、 メ トトレキセート分子に存在 する水素、 炭素、 窒素、 及び酸素原子を採用した。
上記の直方体領域に突き出した D H F Rのァミノ酸側鎖及び主鎖の水素結合性 官能基を選択したところ、 合計 10個の水素結合性官能基が選択された。該水素 結合性官能基に対して 13個のダミ一原子が設定された。
リガンド分子としては、 阻害剤メ トトレキセ一ト(以下、 「MTX」 と記す。 ) と基質ジヒドロ葉酸 (以下、 「DHF」 と記す。 ) を選択した。
〔例 1〕
メ トトレキセ一ト分子
MT X分子の末端の酢酸基を除 、て以下の処理を行った。
MTXの原子座標としては、 ゲンプリッジ結晶グラフィックスデータベース (Cambridge Crystal lographic Database)から入手できる単独時の結晶構造の原 子座標を入力した。 MTXの各原子の電荷は、 M0PACプログラム中の顧 DO法を用 いて算出した。 尚、 MTXのプテリジン環の 1位の窒素はプロトン化を受けやす いことが知られているので、 プロトン化しているものとして電荷を算出した。第 3図の構造式中、 丸で囲んだヘテロ原子を水素結合性へテロ原子として指定して、 水素結合番号を付加した。 また、 第 3図に示した MTX分子構造における矢印の ついた結合 a〜dについては、 ねじれ角を結合 aについては 0〜360 ° の範囲 で 60°ずつ回転させ、 結合 bについては 0〜180°の範囲で 60°ずつ回転 させ、 結合 cについては 0°又は 180° とし、 結合 dについては 180。 とし て MTX分子の配座を生成させた。
この方法では、 i個の水素結合を形成させる場合の水素結合の組合せ数 N( i ) は以下に示すように膨大な数となる。
N (7)
Figure imgf000023_0001
7X 10C7 = 1 9 9 , 584 , 0 0 0通り
N (6) =uP 6XioC6 = 69, 854, 400通り
N (5)
Figure imgf000023_0002
1 3, 9 7 0, 88 0通り
N (4) =nP 4X 10C4 = 207 , 900通り 一気に MTX分子の全構造を D H F Rにドッキングさせることも可能であるが
(Iris4D/25ワークステーションで、 MTX分子の原子座標入力から複合体の構 造の 化までの処理の所用時間約 3 0時間) 、 プテリジン環からベンゼン環ま での MT X分子の部分構造を D H F Rにドッキングさせた後 (所要時間約 4分強)、 その結果に基づ L、て MT X分子の全構造を考慮して安定複合体構造を探索する
(P P法) 方が所要時間が短縮された (MTX分子の原子座標入力から複合 造の最適化までの処理の所要時間約 3 0分) 。 また、 一気に MTX分子の全構造 を DHFRにドッキングさせて安定複合 ί«造を探索した場合も、 ΜΤΧ分子の 部分構造を DHFRにドッキングさせ、 その結果に基づいて ΜΤΧ分子の全構造 を考慮して安^合^^造を探索した場合も、 同じ安定複合体精造が得られた。 得られた 1 1個の初期複合体モデルのうち、 エネゾレギ一が低い順に 5個のモデ ルを選択し、 各モデルについて扁 ERプログラムを用いてエネノレギーを極小化し て最^ Μ合体モデルを得た。 AMBERプログラムによるエネルギーの極小化により、 各モデルのエネルギー値も水素結合数も改良され、 また、 いくつかのモデルにつ いてランク付けが変化した。 これらの事実は、 生体高分子構造の局所的な修正の が無視できない程大きいことを示唆している。最終的に得られた安定複合体 モデルのうち上位のものの水素結合数と総エネゾレギ一を表 2に示す。 また、最小 のエネルギー (- 1 76. 7 1 Kcal/mol) を示す最安^合体モデルを第 4図に示 す。第 4図中、 太線は MTXの分子構造を示し、 点線は DHF Rの分子構造の一 部を示す。 この複合体モデルにおける DHFR— MTX複合体の結合様式は、 X 線結晶 Wfにより得られた複合体の結晶構造における DHFR— MT X複合体の 結合様式をよく していた。 また、 最安 ^合体モデルにおける MTX分子の 配座(第 5図の (b) ) を、単独時の結晶構造における MTX分子の配座(第 5 図の (a) ) 及び DHF R— MTX複合体の結晶構造における MTX分子の配座
(第 5図の (c) ) とともに第 5図に示す。第 5図から明らかなように、 MTX 分子の C 5 -C 6 -C 9 - C 1 0のねじれ角は、 単独時の結晶構造においては一
1 3 9. 1 ° であるのに対し、最安定複合体モデルにおいては 2 5. 3 °、 DHF R —MTX複合体の結晶構造においては 28. 4。 であり、最安定複合体モデルにお ける MTX分子の配座は初期構造からは大きく変わり、 複合体の結晶構造中のも のと非常によい一致を示した。
〔例 2〕
ジヒドロ葉酸分子
DHFRとその基質である D H Fとの結合様式は X線解析では解明されて L、な いが、 酵素反応の生成物であるテトラヒドロ葉酸の立体特異性から、 MTXとは 異なる結合様式が推定されている。 すなわち、 DHFRの還元作用によって生成 するテトラヒドロ葉酸の C 6位の水素は、 補酵素 NADPHからハイドライドィ オンとして来るものであることがわかっているが、 X線解析された DHFR— MTX— NAD PHの三元複合体の結晶構造における MTXの DHFRへの結合 様式と同じ結合様式を DHFR— DHF複合体がとると仮定すると、逆の立碰 造をもつテトラヒドロ葉酸が生成されることとなり、 DHFR酵素反応の立体特 異性を説明できなくなる (第 6図を参照のこと) 。
ここでは、 こうした先入観を全く入れずに、 例 1と同様のやり方で DHFR— DHFの安定複合体の構造を探索した。 但し、 DHFの原子座標としては、 MT Xの単独時の結晶構造の原子座標を基に、 原子の置換を行って作成した原子 座標を用いた。 DHFの各原子の電荷は、 例 1と同様の方法により算出した。 ま た、 第 3図の構造式中、 丸で囲んだヘテロ原子を水素結合性へテロ原子として指 定して、 水素結合番号を付加した。
最終的に得られた安定複合体モデルのうち上位のものの水素結合数と総エネル ギーを表 2に示す。最小のエネルギー (- 173.46Kcal/mol)を示す最安定複 合体モデルを第 7図に示す。第 7図中、 太線は DHFの分子構造を示し、 点線は DHF Rの分子構造の一部を示す。最安定複合体モデルにおける D H Fの配座は、 DHFR— MTX複合体の結晶構造における MTXの配座とは異なり、 プテリジ ン環の面が裏返ったものであつた。最安定複合体モデルにおける D H Fの D H F Rへの結合様式は、 D H F R酵素反応生成物の立体特異性から推定される D H F の DHFRへの結合様式 (第 8図の(b)) とよく一致した。 DHFの DHFRへ のこの結合様式は、 DHFR酵素反応の立体特異性 (第 6図を参照のこと) をう まく説明できるものである。 また、 最安定複合体モデルにおける DHFの配座は、 基質類似化合物である葉酸と D H F Rとの複合体の結晶構造における葉酸の配座 に非常に近 ヽものであつた。
これらの結果は本発明の方法の有効性を示すものである。
表 2. ジヒドロ葉酸還元酵素一リガンド複合体モデル
Figure imgf000026_0001
本発明の方法により、生体高分子一リガンド分子の安定複合体構造の探索を短 時間で行うことが可能になつた。
また、本発明の方法により、すべての可能な生体高分子一リガンド分子の複合 ί«造の中から、 «安定な構造を含む少数の複合 造を確実に選択できるよう になった。
さら 、本義明の方法により、 者の主観が介入することなしに、生体高分 子一リガンド分子の安定複合 造の探索を行うことが可能になつた。
また、本発明の方法により、信頼性が高く 性のある生体高分子一リガンド 分子の安定複合 ^^造の探索が可能になつた。
さらに、本発明の方法により、 リガンド分子の配座の自由度を考慮し、かつ、 分子間相互作用に関する定量的な評価を十分に行った生体高分子一リガンド分子 の安 ^合体構造の探索を行うことが可能になつた。 さらにまた、 本発明の方法により、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合数 が少ない場合、 例えば、 水素結合が 1個の場合にも安定複合体構造の探索を行う ことが可能になった。 産業上の利用可能性
本発明の方法を用いて、 新規に設計したリガンド分子が標的生体高分子とどん な結合様式の複合体を形成しゃす t、か、 その安定性はどの程度かを予測すること ができ、 薬物や活性化合物の設計研究を効率的に行うことができる。
また、 本発明の方法を、 ある標的生体高分子に対する多数のリガンド候補化合 物群に適用することにより、 新規リード化合物を探索することができる。

Claims

請 求 の 範 囲
1. (1)生体高分子中の水素結合性官能基の水素結合の相手となり得るヘテロ原子 の位置に設定したダミ一原子とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子との 対応づけを組合せ的に網羅することにより、生体高分子一リガンド分子間の
7素結合様式を網羅する第 1工程、
(2)前記のダミー原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド 分子の水素結合性部分の配座を同時に推定する第 2工程、及び
(3)第 2工程で得られた水素結合様式と配座毎に、 リガンド分子中の水素結合 性へテロ原子とダミー原子との対応関係に基づいてリガンド分子の全原子の 座標を生体高分子の座標系に置き換えることにより生体高分子一リカンド分 子の複合 «造を得る第 3工程
を含む生体高分子一リガンド分子の安定複合体の構造を探索する方法。
2. (1)生体高分子中の水素結合性官能基の水素結合の相手となり得るヘテロ原子 の位置に設定したダミー原子とリガンド分子の部分構造中の水素結合性へテ 口原子との対応づけを組合せ的に網羅することにより、生体高分子一リガン ド分子間の水素結合様式を網羅する第 1工程、
(2)前記のダミ一原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド 分子の部分構造の配座を同時に推定する第 2工程、
(3)第 2工程で得られた水素結合様式と配座に基づいて、前記のリガンド分子 の部分構造中で不可能な水素結合様式を与えるダミ一原子と水素結合性へテ 口原子の組合せ、及びダミー原子と水素結合を形成し得ない水素結合性へテ 口原子を保存する第 3工程、
(4)第 3工程で保存された水素結合性へテロ原子を含む組合せ、及び第 3工程 で保存されたダミ一原子と水素結合性へテロ原子の組合せを除いて、 ダミー 原子とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子との対応づけを組合せ的に網 羅することにより、生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式を網羅する 第 4工程、
(5)前記のダミー原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド 分子の水素結合性部分の配座を同時に推定する第 5工程、 及び
(6)第 5工程で得られた水素結合様式と配座毎に、 リガンド分子中の水素結合 性へテロ原子とダミ一原子との対応関係に基づいてリガンド分子の全原子の 座標を生体高分子の座標系に置き換えることにより生体高分子一リ力ンド分 子の複合 ί«造を得る第 6工程
を含む生体高分子一リガンド分子の安定複合体の構造を探索する方法。
3. ( 1 )生体高分子中の水素結合性官能基の水素結合の相手となり得るヘテロ原子 の位置に設定したダミー原子とリガンド分子中の水素結合性へテロ原子との 対応づけを組合せ的に網羅することにより、 生体高分子一リガンド分子間の 水素結合様式を網羅する第 1工程、
(2)前記のダミー原子間の距離と前記の水素結合性へテロ原子間の距離を比較 することにより、 生体高分子一リガンド分子間の水素結合様式及びリガンド 分子の水素結合性部分の配座を同時に推定する第 2工程、
(3)第 2工程で得られた水素結合様式を保持しつつ、 ダミ一原子とリガンド分 子中の水素結合性へテロ原子の位置が一致するようにリガンド分子の配座を 最適化し、 次いで、 分子内エネノレギ一の高いリガンド分子の配座を除去する 第 3 _ i½、
(4)第 3工程で除去されなかった配座毎に、 リガンド分子中の水素結合性へテ 口原子とダミー原子との対応関係に基づいてリガンド分子の全原子の座標を 生体高分子の座標系に置き換えることにより生体高分子一リカンド分子の複 合體造を得る第 4工程、
(5)第 4工程で得られた複合体構造から、 リガンド分子中の水素結合性部分の 分子内エネルギー及び生体高分子一該リガンド分子中の水素結合性部分の分 子間相互作用エネルギーの高い複合^ f造を除去し、 次いで、 残った複合体 構造について構造の最適化を行う第 5工程、
(6)第 5工程で得られた複合体構造毎に、 リガンド分子の非水素結合性部分の 配座を発生させて新たな複合体構造を得る第 6工程、 及び
(7)第 6工程で得られた複合 «造から、 リガンド分子全体の分子内エネルギ 一及び生体高分子一リガンド分子の分子間相互作用エネルギーの高い複合体 構造を除去し、次いで、残った複合赚造について構造の最適化を行う第 7 工程
を含む生体高分子一リガンド分子の安定複合体の構造を探索する方法。
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