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CN115671038A - 一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法 - Google Patents

一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法 Download PDF

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CN115671038A CN202211460591.1A CN202211460591A CN115671038A CN 115671038 A CN115671038 A CN 115671038A CN 202211460591 A CN202211460591 A CN 202211460591A CN 115671038 A CN115671038 A CN 115671038A
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崔朋飞
李洁
吴诗瑞
沈耀艳
代开俊
王程
蒋鹏举
王建浩
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Abstract

本发明属于药物制剂技术领域,涉及一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,包括如下步骤:将白垩(chalk)吸附DOX的悬浮液与果胶钙充分混合,得到具有结肠定位功能的口服递送阿霉素。本发明利用白垩的多孔结构,吸附阿霉素,果胶和Ca2+形成果胶凝胶,将吸附阿霉素的白垩加入果胶凝胶中,最终得到白垩‑果胶口服给药体系。果胶能被结肠中的酶特异性酶解,白垩能够减少在中性pH条件下药物的释放,从而达到结肠定位的效果。通过体内外药物释放实验,可以验证阿霉素在结肠部位靶向释放。

Description

一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法
技术领域
本发明属于药物制剂技术领域,涉及一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,具体是一种白垩-果胶凝胶为载体通过口服给药达到结肠定位目的的方法。
背景技术
结肠癌是世界三大癌症之一,其发病率仅低于乳腺癌和肺癌。目前主要治疗手段有手术切除和化疗。手术切除会给机体带来直接损失,还会引发并发症;各种文献表明,在不同给药途径的评估中,口服给药的依从性最高。但只有少数化疗药物被证明并用于临床。这些药物需要克服以下限制。首先,药物在恶劣的胃部条件下稳定性差。其次,肝脏的首过效应导致药物的生物利用度低。最后,粘液屏障阻止药物的渗透和随后的吸收。克服这些局限性可以提高口服制剂对结直肠癌的治疗效果。
盐酸多柔比星(DOX)是一种水溶性抗癌药,属于第一代蒽环类药物。它用于治疗不同类型的癌症。DOX插入DNA并停止复制过程,导致细胞死亡。虽然阿霉素是有效的,但其给药可能会引起一些不良副作用,包括快速清除、肝脏蓄积、蓄积和不可逆的心肌病。为了消除或减少这些副作用,已经提出了不同的给药方法,包括使用不同的药物输送系统(DDS)。DDS的应用还可以促进DOX的延长释放,从而减少过量的可能性。
果胶作为一种植物来源的多糖,已被应用于结肠特异性给药。果胶不能被哺乳动物的胃和小肠消化,但结肠细菌可以分泌果胶酶,当药物包被的果胶经口转运到结肠时,可以被果胶酶降解,释放药物,使结肠靶向药物递送。
但是口服药物到达结肠前需要克服胃肠道两重屏障。因此,迫切需要一种新的药物制剂形式,用于抵抗胃肠道的药物损失,使其能够在口服递送的情况下达到结肠部位,并且释放大量药物,达到治疗效果。
发明内容
为了克服现有技术中的不足,本发明提供了一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,该方法可以口服递送DOX,克服胃肠道的屏障,达到结肠部位,并且能够在结肠部位释放药物,从而提高治疗效果。
为了实现本发明目的,本发明的技术方案为:
一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,包括如下步骤:将白垩(chalk)吸附DOX的悬浮液与果胶钙充分混合,得到具有结肠定位功能的口服递送阿霉素。
进一步的,果胶钙的制备方法包括:将果胶按体积比加入Ca2+溶液,搅拌混匀成胶,将C-DOX加入果胶凝胶中,搅拌混匀,得到PC-DOX。
更进一步的,果胶浓度为0.1-8%(w:v),Ca2+浓度为0.1-80%(w:v)。果胶与Ca2+体积比为2.5:1。
进一步的,白垩吸附DOX的悬浮液(简称C-DOX)通过如下方法获得:向Chalk悬浮液中加入DOX溶液,搅拌至DOX被Chalk充分吸附(优选连续搅拌8-48h,更优选连续搅拌12h),得到C-DOX。
更进一步的,白垩与DOX质量比为0.1-20:1。
本发明利用白垩的多孔结构,吸附阿霉素,果胶和Ca2+形成果胶凝胶,将吸附阿霉素的白垩加入果胶凝胶中,最终得到白垩-果胶口服给药体系。果胶能被结肠中的酶特异性酶解,白垩能够减少在中性pH条件下药物的释放,从而达到结肠定位的效果。通过体内外药物释放实验,可以验证阿霉素在结肠部位靶向释放。与现有技术相比,本发明可以在口服给药后,有效地抵御胃肠道屏障,使药物靶向定位至结肠;同时在结肠中被酶特异性酶解,释放DOX,从而达到治疗结肠癌的目的。
附图说明
图1本发明实施例1中PC-DOX的制备及表征:(A)C-DOX(B)Chalk和C-DOX的SEM图;(C)不同浓度果胶-Ca2+凝胶图;(D)果胶和果胶-Ca2+凝胶的SEM图;(E)PC-DOX的实验组和对照组;(F)PC-DOX的SEM图。
图2本发明实施例2中模拟各组样品在胃和小肠中的药物释放:(A)模拟胃(pH1.2)中药物释放图;(B)模拟小肠(pH 6.8)中药物释放图。
图3本发明实施例3中果胶酶解后药物释放图。(A)PC-DOX实验组及对照组加入果胶酶后,药物释放图;(B)PC-DOX加入果胶酶酶解后的SEM图。
图4本发明实施例4中果胶酶解PC-DOX实验组及DOX对照组CT26细胞摄取图和流式细胞仪荧光定量图。
具体实施方式
本发明不局限于下列具体实施方式,本领域一般技术人员根据本发明公开的内容,可以采用其他多种具体实施方式实施本发明的,或者凡是采用本发明的设计结构和思路,做简单变化或更改的,都落入本发明的保护范围。需要说明的是,在不冲突的情况下,本发明中的实施例及实施例中的特征可以相互组合。
本发明下面结合实施例作进一步详述:
本发明是通过以下的技术方案实现的,具体步骤如下:
PC-DOX制备方案具体如下:取一定量的果胶,按体积比加入Ca2+,搅拌混匀成胶,将C-DOX加入果胶凝胶中,搅拌混匀,得到PC-DOX。
C-DOX通过如下方法获得:取一定质量的Chalk悬浮液,加入DOX溶液,连续搅拌12h,得到C-DOX。
PC-DOX实验组及对照组模拟在胃和小肠中药物释放。
果胶酶解PC-DOX实验组及对照组药物释放实验。
果胶酶解PC-DOX实验组及DOX对照组CT26细胞摄取实验。
实施例1
PC-DOX的制备及表征。
500μL 1mg/mL DOX溶液加入5mg/mL Chalk悬浮液中,DOX与Chalk的质量比分别调整为1:1,1:2,1:5,1:10,1:15和1:20(w:w)。再加入蒸馏水共5mL(CDOX=100μg/mL),将混合物搅拌12h,混合后8000rpm离心3min。取离心后上清液测荧光强度,测定上清液中残留DOX的浓度,计算包封率。
Figure BDA0003955269060000041
由图1(A)可知,当DOX和Chalk质量比为1:10时,包封率为96%。
利用扫描电子显微镜(SEM)对白垩进行表征。图1(B)表明,Chalk吸附DOX后形态无明显变化。
制备不同浓度(1%、2%、3%、5%和6%)的果胶,在果胶中加入10% CaCl2溶液成胶(果胶:10% CaCl2=2.5:1,v:v),观察凝胶现象,筛选最适果胶凝胶浓度。
由图1(C)可知,1%和2%果胶凝胶效果较差,5%和6%果胶凝胶成色不均匀。因此,3%果胶凝胶较好。
利用扫描电子显微镜(SEM)对果胶进行表征。图1(D)表明,果胶未成胶前,是疏松的网状结构;当果胶与Ca2+结合后,形成致密的结构。
在已经制备好的3%果胶中加入10% CaCl2溶液成凝胶(果胶:10%CaCl2=2.5:1,v:v),在凝胶中加入之前上述方法制备的10mg/mL的C-DOX悬浮液,搅拌混匀。最终,如图1(E)所示,制备完成PC-DOX实验组及对照组。
利用扫描电子显微镜(SEM)对PC-DOX进行表征。图1(F)表明,吸附了DOX的Chalk在果胶凝胶中均匀分布。
实施例2
体外药物释放实验。
pH=1.2的人工胃液的配制:在9mL的浓盐酸,加约800mL蒸馏水及胃蛋白酶10g,pH值约为1.2。透皮扩散仪设置参数37℃,100rpm进行模拟释放。将2.2中制备好的样品装进透析袋(3.5kDa)中,将透析袋放入装有10mL人工胃液的西林瓶中,在第0、5、10、15、30、45、60、90和120分钟时分别取1mL释放液,再加入1mL预热的人工胃液补足取出的释放液体积,将各时间点取出的释放液稀释后测量荧光强度。计算药物累计释放率Qn
pH=6.8的人工肠液的配制:称取6.8g磷酸二氢钾,加水至500mL使其溶解,用0.1mol/L NaOH溶液调节pH至6.8。另称取10g胰蛋白酶加水溶解,两液混合后,加水定容至1000mL。透皮扩散仪设置参数37℃,100rpm进行模拟释放。将2.2中制备好的样品装进透析袋(3.5kDa)中,将透析袋放入装有15mL人工肠液的西林瓶中,在第0、0.5、1、2、4、6h时分别取1mL释放液,再加入1mL预热的人工肠液补足取出的释放液体积,将各时间点取出的释放液稀释后测量荧光强度。计算药物累计释放率Qn
Figure BDA0003955269060000051
Qn:第n次药物累计释放率;Cn:第n次取出的释放液浓度,μg/mL;V:总体积,mL;Ci:第i次取出的释放液浓度,μg/mL;Vi:第i次取出的释放液体积,mL;W:药物总质量,μg。
图2(A)和(B)分别表示药物在胃和小肠中的释放。由图可知,PC-DOX组在胃和小肠中仅有10%-20%的药物释放,其他对照组药物释放都较高。
通过胃和小肠中的药物累计释放,可以计算出药物结肠靶向效率。
结肠靶向效率%=(100-QG)×(100-QI)×100
QG:在胃中药物释放率;QI:小肠中药物释放率。
表1结肠靶向效率表
Figure BDA0003955269060000061
实施例3
果胶酶解药物释放实验。
样品制备:取280μL 3%果胶,加入112μL 10% CaCl2溶液成胶(果胶:10%CaCl2=2.5:1,v:v),在凝胶中加入10mg/mL的C-DOX悬浮液,搅拌混匀。加入56μL 2%果胶酶(果胶:果胶酶=5:1,v:v),放入摇床中孵育8h,低速离心后取上清,稀释后测量其荧光值。
图3(A)表明,PC-DOX在果胶酶的作用下,酶解释放40%。
利用扫描电子显微镜(SEM)对酶解后的PC-DOX进行表征。由图3(B)可知,PC-DOX在酶解后,形成了2-3μm的白色小球。
实施例4
细胞摄取实验
CT26细胞(小鼠结肠癌细胞)用含10%FBS和1%双抗的DMEM高糖培养基培养,在37℃,5% CO2培养箱中孵育。
当CT26细胞处于对数生长期时用DMEM冲洗,用胰酶消化,然后离心1500rpm,3min使细胞成球。用细胞计数板计数,然后以15w细胞/mL的密度接种到24孔板中。最后,细胞在37℃,5% CO2培养箱中培养16-18h。
取280μL 3%果胶,加入112μL 10% CaCl2溶液成胶(果胶:10% CaCl2=2.5:1,v:v),在凝胶中加入10mg/mL的C-DOX悬浮液,搅拌混匀。加入56μL 2%果胶酶(果胶:果胶酶=5:1,v:v),放入摇床中孵育8h,取酶解后样品进行用DMEM--稀释(DOX含量2.5μg/mL),取1mL稀释后的样品和CT26细胞共孵育4h,使用荧光倒置显微镜拍照。
最后,细胞被胰酶消化,然后1500rpm离心3min成球,用DMEM培养基重悬细胞,使用流式细胞仪对细胞中荧光进行定量。
图4中DOX组和PC-DOX酶解后样品组的CT26细胞摄取暗场亮度几乎一致。通过流式细胞仪可以确定,PC-DOX组中77%的细胞具有荧光强度。
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (6)

1.一种口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,其特征在于,包括如下步骤:将白垩吸附DOX的悬浮液与果胶钙充分混合,得到具有结肠定位功能的口服递送阿霉素。
2.根据权利要求1所述的口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,其特征在于:果胶钙的制备方法包括:果胶钙的制备方法包括:将果胶按体积比加入Ca2+溶液,搅拌混匀成胶,将白垩吸附DOX的悬浮液加入果胶凝胶中,搅拌混匀,得到PC-DOX。
3.根据权利要求2所述的口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,其特征在于:果胶质量浓度为0.1-8%,Ca2+溶液质量浓度为0.1-80%,果胶与Ca2+溶液体积比为2.5:1。
4.根据权利要求1所述的口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,其特征在于:白垩吸附DOX的悬浮液通过如下方法获得:向Chalk悬浮液中加入DOX溶液,搅拌至DOX被白垩充分吸附。
5.根据权利要求4所述的口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,其特征在于:白垩与DOX质量比为0.1-20:1;和/或,所述搅拌为连续搅拌8-48h。
6.据权利要求4所述的口服递送阿霉素用于结肠定位的方法,其特征在于:所述搅拌为连续搅拌12h。
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